Soil quality - Effects of pollutants on earthworms - Part 2: Determination of effects on reproduction of Eisenia fetida/Eisenia andrei

ISO 11268-2:2012 specifies one of the methods for evaluating the habitat function of soils and determining the effects of soil contaminants and chemicals on the reproduction of Eisenia fetida/Eisenia andrei by dermal and alimentary uptake. This chronic test is applicable to soils and soil materials of unknown quality, e.g. from contaminated sites, amended soils, soils after remediation, agricultural or other sites concerned, and waste materials. Effects of substances are assessed using a standard soil, preferably a defined artificial soil substrate. For contaminated soils, the effects are determined in the test soil and in a control soil. According to the objective of the study, the control and dilution substrate (dilution series of contaminated soil) should be either an uncontaminated soil comparable to the soil sample to be tested (reference soil) or a standard soil (e.g. artificial soil). Information is provided on how to use this method for testing chemicals under temperate as well as under tropical conditions. The method is not applicable to volatile substances, i.e. substances for which H (Henry's constant) or the air/water partition coefficient is greater than 1, or for which the vapour pressure exceeds 0,013 3 Pa at 25 °C. This method does not take into account the persistence of the substance during the test.

Qualité du sol — Effets des polluants vis-à-vis des vers de terre — Partie 2: Détermination des effets sur la reproduction de Eisenia fetida/Eisenia andrei

L'ISO 11268-2:2012 spécifie l'une des méthodes permettant d'évaluer la fonction d'habitat des sols et de déterminer les effets de contaminants du sol et de produits chimiques sur la reproduction d'Eisenia fetida/Eisenia andrei par absorption cutanée et ingestion. Cet essai chronique s'applique aux sols et aux matériaux de type sol de qualité inconnue, provenant par exemple de sites contaminés, de sols amendés, de sols après remédiation, de sols agricoles ou autres sites d'intérêt et de déchets. Les effets des substances sont évalués à l'aide d'un sol standard, de préférence un substrat de sol artificiel défini. Pour les sols contaminés, les effets sont déterminés dans le sol soumis à essai et dans un sol témoin. Selon l'objectif de l'étude, le substrat témoin et de dilution (gamme de dilutions d'un sol contaminé) peut être soit un sol non contaminé comparable à l'échantillon de sol à évaluer (sol de référence), soit un sol standard (par exemple un sol artificiel). Des informations sont fournies sur la manière d'utiliser cette méthode pour évaluer des produits chimiques dans des conditions tempérées ainsi que dans des conditions tropicales. La méthode ne s'applique pas aux substances volatiles, c'est-à-dire aux substances pour lesquelles H (constante de Henry) ou le coefficient de partage air/eau est supérieur à 1, ou pour lesquelles la pression de vapeur à 25 °C excède 0,013 3 Pa. Cette méthode ne tient pas compte de la stabilité de la substance pendant l'essai.

General Information

Status
Withdrawn
Publication Date
28-Oct-2012
Current Stage
9599 - Withdrawal of International Standard
Start Date
17-Jan-2023
Completion Date
13-Dec-2025
Ref Project

Relations

Standard
ISO 11268-2:2012 - Soil quality -- Effects of pollutants on earthworms
English language
21 pages
sale 15% off
Preview
sale 15% off
Preview
Standard
ISO 11268-2:2012 - Qualité du sol -- Effets des polluants vis-a-vis des vers de terre
French language
21 pages
sale 15% off
Preview
sale 15% off
Preview

Frequently Asked Questions

ISO 11268-2:2012 is a standard published by the International Organization for Standardization (ISO). Its full title is "Soil quality - Effects of pollutants on earthworms - Part 2: Determination of effects on reproduction of Eisenia fetida/Eisenia andrei". This standard covers: ISO 11268-2:2012 specifies one of the methods for evaluating the habitat function of soils and determining the effects of soil contaminants and chemicals on the reproduction of Eisenia fetida/Eisenia andrei by dermal and alimentary uptake. This chronic test is applicable to soils and soil materials of unknown quality, e.g. from contaminated sites, amended soils, soils after remediation, agricultural or other sites concerned, and waste materials. Effects of substances are assessed using a standard soil, preferably a defined artificial soil substrate. For contaminated soils, the effects are determined in the test soil and in a control soil. According to the objective of the study, the control and dilution substrate (dilution series of contaminated soil) should be either an uncontaminated soil comparable to the soil sample to be tested (reference soil) or a standard soil (e.g. artificial soil). Information is provided on how to use this method for testing chemicals under temperate as well as under tropical conditions. The method is not applicable to volatile substances, i.e. substances for which H (Henry's constant) or the air/water partition coefficient is greater than 1, or for which the vapour pressure exceeds 0,013 3 Pa at 25 °C. This method does not take into account the persistence of the substance during the test.

ISO 11268-2:2012 specifies one of the methods for evaluating the habitat function of soils and determining the effects of soil contaminants and chemicals on the reproduction of Eisenia fetida/Eisenia andrei by dermal and alimentary uptake. This chronic test is applicable to soils and soil materials of unknown quality, e.g. from contaminated sites, amended soils, soils after remediation, agricultural or other sites concerned, and waste materials. Effects of substances are assessed using a standard soil, preferably a defined artificial soil substrate. For contaminated soils, the effects are determined in the test soil and in a control soil. According to the objective of the study, the control and dilution substrate (dilution series of contaminated soil) should be either an uncontaminated soil comparable to the soil sample to be tested (reference soil) or a standard soil (e.g. artificial soil). Information is provided on how to use this method for testing chemicals under temperate as well as under tropical conditions. The method is not applicable to volatile substances, i.e. substances for which H (Henry's constant) or the air/water partition coefficient is greater than 1, or for which the vapour pressure exceeds 0,013 3 Pa at 25 °C. This method does not take into account the persistence of the substance during the test.

ISO 11268-2:2012 is classified under the following ICS (International Classification for Standards) categories: 13.080.30 - Biological properties of soils. The ICS classification helps identify the subject area and facilitates finding related standards.

ISO 11268-2:2012 has the following relationships with other standards: It is inter standard links to ISO 11268-2:2023, ISO 11268-2:1998. Understanding these relationships helps ensure you are using the most current and applicable version of the standard.

You can purchase ISO 11268-2:2012 directly from iTeh Standards. The document is available in PDF format and is delivered instantly after payment. Add the standard to your cart and complete the secure checkout process. iTeh Standards is an authorized distributor of ISO standards.

Standards Content (Sample)


INTERNATIONAL ISO
STANDARD 11268-2
Second edition
2012-11-01
Soil quality — Effects of pollutants on
earthworms —
Part 2:
Determination of effects on reproduction
of Eisenia fetida/Eisenia andrei
Qualité du sol — Effets des polluants vis-à-vis des vers de terre —
Partie 2: Détermination des effets sur la reproduction de Eisenia fetida/
Eisenia andrei
Reference number
©
ISO 2012
All rights reserved. Unless otherwise specified, no part of this publication may be reproduced or utilized in any form or by any means,
electronic or mechanical, including photocopying and microfilm, without permission in writing from either ISO at the address below or ISO’s
member body in the country of the requester.
ISO copyright office
Case postale 56 • CH-1211 Geneva 20
Tel. + 41 22 749 01 11
Fax + 41 22 749 09 47
E-mail copyright@iso.org
Web www.iso.org
Published in Switzerland
ii © ISO 2012 – All rights reserved

Contents Page
Foreword .iv
Introduction . v
1 Scope . 1
2 Normative references . 1
3 Terms and definitions . 2
4 Principle . 3
5 Reagents and material . 4
6 Apparatus . 5
7 Procedure . 6
7.1 Experimental design . 6
7.2 Preparation of test mixture . 7
7.3 Addition of the earthworms . 8
7.4 Test conditions and measurements . 8
7.5 Reference substance . 9
8 Calculation and expression of results . 9
8.1 Calculation . 9
8.2 Expression of results . 9
9 Validity of the test . 9
10 Statistical analysis . 9
10.1 General . 9
10.2 Single-concentration tests .10
10.3 Multi-concentration tests .10
11 Test report . 11
Annex A (informative) Determination of the chronic toxicity of chemicals on earthworms under
tropical conditions .13
Annex B (informative) Culturing of Eisenia fetida and Eisenia andrei .15
Annex C (informative) Determination of water holding capacity of artificial soil .16
Annex D (informative) Techniques for counting juvenile worms hatched from cocoons.17
Annex E (informative) Performance of the method .18
Bibliography .20
Foreword
ISO (the International Organization for Standardization) is a worldwide federation of national standards bodies
(ISO member bodies). The work of preparing International Standards is normally carried out through ISO
technical committees. Each member body interested in a subject for which a technical committee has been
established has the right to be represented on that committee. International organizations, governmental and
non-governmental, in liaison with ISO, also take part in the work. ISO collaborates closely with the International
Electrotechnical Commission (IEC) on all matters of electrotechnical standardization.
International Standards are drafted in accordance with the rules given in the ISO/IEC Directives, Part 2.
The main task of technical committees is to prepare International Standards. Draft International Standards
adopted by the technical committees are circulated to the member bodies for voting. Publication as an
International Standard requires approval by at least 75 % of the member bodies casting a vote.
Attention is drawn to the possibility that some of the elements of this document may be the subject of patent
rights. ISO shall not be held responsible for identifying any or all such patent rights.
ISO 11268-2 was prepared by Technical Committee ISO/TC 190, Soil quality, Subcommittee SC 4,
Biological methods.
This second edition cancels and replaces the first edition (ISO 11268-2:1998), which has been technically revised.
ISO 11268 consists of the following parts, under the general title Soil quality — Effects of pollutants on earthworms:
— Part 1: Determination of acute toxicity to Eisenia fetida/Eisenia andrei
— Part 2: Determination of effects on reproduction of Eisenia fetida/Eisenia andrei
— Part 3: Guidance on the determination of effects in field situations
iv © ISO 2012 – All rights reserved

Introduction
Ecotoxicological test systems are applied to obtain information about the effects of contaminants in soil and are
[34] [35]
proposed to complement conventional chemical analysis (see ISO 15799 and ISO 17616 ). ISO 15799
includes a list and short characterization of recommended and standardized test systems and ISO 17616 gives
guidance on the choice and evaluation of the bioassays. Aquatic test systems with soil eluate are applied to
obtain information about the fraction of contaminants potentially reaching the groundwater by the water path
(retention function of soils), whereas terrestrial test systems are used to assess the habitat function of soils. As
standardized test systems using earthworms as indicator organisms for the habitat function of soil, an acute
test for survival and a chronic test for reproduction are available.
This part of ISO 11268 describes a method that is based on the determination of sublethal effects of contaminated
soils on adult earthworms of the species Eisenia fetida (Savigny 1826) and Eisenia andrei (André 1963).
Optionally, the method can be used for testing chemicals added to standard soils (e.g. artificial soil) for their
sublethal hazard potential to earthworms. Finally, information is provided on how to use this method for testing
chemicals under tropical conditions (see Annex A).
Eisenia fetida and Eisenia andrei are considered to be representatives of soil fauna and earthworms in
particular. Background information on the ecology of earthworms and their use in ecotoxicological testing is
available. Other species, e.g. Aporrectodea caliginosa, Lumbricus rubellus and Lumbricus terrestris, have also
been used as test organisms. These or other species have not been proven to be more sensitive in general,
[16][17]
and the database and experience in testing soils is small .
This part of ISO 11268 has been drawn up taking into consideration test procedures adopted by the Organization
[27][28] [11]
for Economic Cooperation and Development and by the European Union .
INTERNATIONAL STANDARD ISO 11268-2:2012(E)
Soil quality — Effects of pollutants on earthworms —
Part 2:
Determination of effects on reproduction of Eisenia fetida/
Eisenia andrei
WARNING — Contaminated soils may contain unknown mixtures of toxic, mutagenic, or otherwise harmful
chemicals or infectious microorganisms. Occupational health risks may arise from dust or evaporated
chemicals during handling and incubation. Precautions should be taken to avoid skin contact.
1 Scope
This part of ISO 11268 specifies one of the methods for evaluating the habitat function of soils and determining
the effects of soil contaminants and chemicals on the reproduction of Eisenia fetida/Eisenia andrei by dermal and
alimentary uptake. This chronic test is applicable to soils and soil materials of unknown quality, e.g. from contaminated
sites, amended soils, soils after remediation, agricultural or other sites concerned, and waste materials.
Effects of substances are assessed using a standard soil, preferably a defined artificial soil substrate. For
contaminated soils, the effects are determined in the test soil and in a control soil. According to the objective of the
study, the control and dilution substrate (dilution series of contaminated soil) should be either an uncontaminated
soil comparable to the soil sample to be tested (reference soil) or a standard soil (e.g. artificial soil).
Information is provided on how to use this method for testing chemicals under temperate as well as under
tropical conditions.
The method is not applicable to volatile substances, i.e. substances for which H (Henry’s constant) or the
air/water partition coefficient is greater than 1, or for which the vapour pressure exceeds 0,013 3 Pa at 25 °C.
This method does not take into account the persistence of the substance during the test.
2 Normative references
The following referenced documents are indispensable for the application of this document. For dated
references, only the edition cited applies. For undated references, the latest edition of the referenced document
(including any amendments) applies.
ISO 10381-6, Soil quality — Sampling — Part 6: Guidance on the collection, handling and storage of soil under
aerobic conditions for the assessment of microbiological processes, biomass and diversity in the laboratory
ISO 10390, Soil quality — Determination of pH
ISO 10694, Soil quality — Determination of organic and total carbon after dry combustion (elementary analysis)
ISO 11260, Soil quality — Determination of effective cation exchange capacity and base saturation level using
barium chloride solution
ISO 11268-1, Soil quality — Effects of pollutants on earthworms — Part 1: Determination of acute toxicity to
Eisenia fetida/Eisenia andrei
ISO 11277, Soil quality — Determination of particle size distribution in mineral soil material — Method by
sieving and sedimentation
ISO 11465, Soil quality — Determination of dry matter and water content on a mass basis — Gravimetric method
3 Terms and definitions
For the purposes of this document, the following terms and definitions apply.
3.1
contaminant
substance or agent present in the soil as a result of human activity
[ISO 15176:2002]
3.2
growth
increase in biomass (i.e. the fresh mass of organisms)
NOTE It is expressed as a percentage of the fresh mass of organisms at the start of the test.
3.3
reproduction
mean number of offspring per test vessel after eight weeks’ incubation under the specified test conditions
3.4
ER (effective rate) or EC (effective concentration)
x x
x % effect rate or concentration of the test sample or test substance at which reproduction is reduced by x %
compared to the control
3.5
limit test
single concentration test consisting of at least four replicates each, the test sample without any dilution or the
highest concentration of test substance mixed into the control soil and the control
3.6
lowest observed effect rate (LOER) or effect concentration (LOEC)
lowest tested percentage of a test sample in a control soil or concentration of a substance at which a statistically
significant effect is observed
NOTE The LOEC is expressed as a percentage of test-soil dry mass per test-mixture dry mass. All test mixtures
above the LOEC have a harmful effect equal to or greater than that observed at the LOEC. If this condition cannot be
satisfied, an explanation should be given for how the LOEC and NOEC (3.7) have been selected.
3.7
NOER (no observed effective rate) or NOEC (no observed effect concentration)
test soil percentage immediately below the LOER/LOEC or, highest tested concentration of a test substance
which, when compared to the control, has no statistically significant lethal or other effect such as reduced
reproduction or mass alteration (error probability: p < 0,05)
NOTE The NOEC is expressed as a percentage of test-soil dry mass per test-mixture dry mass.
3.8
reference soil
uncontaminated site-specific soil (e.g. collected in the vicinity of a contaminated site) with similar properties
(nutrient concentrations, pH, organic carbon content and texture) to the test soil
3.9
standard soil
field-collected soil or artificial soil whose main properties (e.g. pH, texture, organic matter content) are within
a known range
[11] [27] [23]
EXAMPLE Euro-Soils , artificial soil , LUFA standard soil .
NOTE The properties of standard soils can differ from those of the test soil.
2 © ISO 2012 – All rights reserved

3.10
control soil
reference or standard soil used as a control and as a medium for preparing dilution series with test samples or
a reference substance, which fulfils the validity criteria
NOTE In the case of natural soil, it is advisable to demonstrate its suitability for a test and for achieving the test
validity criteria before using the soil in a definitive test.
3.11
test mixture
mixture of contaminated soil or the test substance with a control soil (3.10)
NOTE Test mixtures are given in percent of contaminated soil based on soil dry mass.
3.12
test mixture ratio
ratio of test soil to control soil in a test mixture
NOTE Different ratios may be applied in a dilution series to establish a dose-response relationship.
4 Principle
The effects on reproduction of adult earthworms (species: Eisenia fetida or Eisenia andrei) exposed to the test
soil are compared to those observed for samples exposed to a control soil. If appropriate, effects based on
exposure to a dilution range of contaminated soil or range of concentrations of a test substance are determined.
In addition, observations on growth and survival of adult earthworms are recorded. Test mixtures are prepared
at the start of the test and are not renewed within the test period.
After four weeks, adult worms are removed from the test containers and effects on mortality and biomass are
measured by counting and weighing. The effect on reproduction as the definitive end point is measured by
counting the number of offspring hatched from the cocoons after an additional period of four weeks. The results
obtained from the tests are compared with a control soil or, if appropriate, are used to determine the dilutions or
concentrations which cause no effects on biomass, mortality and reproduction (NOER/NOEC) and the dilution
(concentration) resulting in x % reduction of juveniles hatched from cocoons compared to the control (ER /EC ,
x x
56 d), respectively.
If testing a dilution or concentration series, all test dilutions/concentrations above the LOER/LOEC shall have a
harmful effect equal to, or greater than, that observed at the LOER/LOEC. Where there is no prior knowledge
of the dilution/concentration of the test soil/test substance likely to have an effect, then it is useful to conduct
the test in two steps:
— a preliminary test carried out, in accordance with ISO 11268-1, to give an indication of the effect
dilution/concentration and of the dilution/concentration giving no mortality (NOER/NOEC).
Dilutions/concentrations to be used in the definitive test can then be selected.
— the definitive test to determine sublethal effects of (dilutions of) contaminated soil or the concentration of
a chemical which, when evenly mixed into the standard soil, causes no significant effects on numbers of
offspring hatched from cocoons compared with the control (NOER/NOEC), and the lowest concentration
causing effects (LOER/LOEC).
NOTE The use of a reference soil is an essential requirement to demonstrate the present status of the test population,
and to avoid misinterpretation of results.
5 Reagents and material
[15], [19],
5.1 Biological material, consists of adult earthworms of the species Eisenia fetida or Eisenia andrei
[20],
which are between two months and one year old, with a clitellum, and a wet mass between 300 mg and
600 mg (E. fetida) and between 250 mg and 600 mg (E. andrei).
Select worms used for the test to form, as far as is practicable, a homogeneous population from the standpoint
of age, size and mass. Worms should preferably be selected from a synchronized culture with a relatively
homogeneous age structure. Before the test, wash them with potable water.
NOTE An example of culturing Eisenia fetida/Eisenia andrei is given in Annex B.
Condition the selected worms for one day to seven days in standard or control soil before use. The food, which
is also used as a food source in the test (see 5.3), shall be given in sufficient amount (see 7.4).
5.2 Test sample, may consist of field-collected soil or control soil amended by the test mixture.
5.2.1 Field-collected soils, soil or waste materials
The sample(s) can be field-collected soil from an industrial, agricultural or other site of concern, or waste
materials (e.g. dredged material, municipal sludge from a wastewater treatment plant, composed material, or
manure) under consideration for possible land disposal.
Test samples shall be sieved by 4 mm mesh and thoroughly mixed. If necessary, soil may be air-dried without
heating before sieving. Storage of test samples should be as short as possible. Store the soil in accordance
with ISO 10381-6 using containers that minimize losses of soil contaminants by volatilization and sorption to
the container walls. Soil pH should not be corrected as it can influence bioavailability of soil contaminants.
For interpretation of test results, the following characteristics shall be determined for each soil sampled from
a field site:
— pH in accordance with ISO 10390,
— texture (sand, loam, silt) in accordance with ISO 11277
— water content in accordance with ISO 11465,
— water holding capacity according to Annex C,
— cationic exchange capacity in accordance with ISO 11260,
— organic carbon in accordance with ISO 10694.
NOTE It is important to measure the water holding capacity of all mixtures used in the test.
5.2.2 Control soil, either a) reference soil (3.8) or b) standard soil (3.9) that allows the presence of earthworms.
a) If reference soils from uncontaminated areas near a contaminated site are available, they should be treated
and characterized like the test samples. If a toxic contamination or unusual soil properties cannot be ruled
out, standard control soils should be preferred.
b) For testing the effects of substances mixed into soil or making dilutions of the test sample, standard soils
shall be used to prepare the test sample. The properties of the field-collected standard soil shall be reported.
4 © ISO 2012 – All rights reserved

The substrate called artificial soil can be used as a standard soil and has the following composition:
Percentage expressed
on a dry-mass basis
— Sphagnum peat finely ground and with no visible plant remains 10 %
— Kaolinite clay containing not less than 30 % kaolinite 20 %
— Industrial quartz sand (dominant fine sand with more 69 %
than 50 % of particle sizes 0,05 mm to 0,2 mm)
Approximately 0,3 % to 1,0 % calcium carbonate (CaCO , pulverized, analytical grade) are necessary to get a
pH of 6,0 ± 0,5.
NOTE 1 Taking the properties of highly non-polar (log K > 2, where K is the octanol/water coefficient) or ionizing
ow ow
substances into account, 5 % of peat have proven to be sufficient for maintaining the desired structure of the artificial soil.
NOTE 2 It has been demonstrated that Eisenia fetida can comply with the validity criteria, even as regards reproduction,
[18]
when tested in field soils with lower organic carbon content (e.g. 2,7 %) , and experience shows that this can be achieved in
artificial soil with 5 % peat. It is therefore not necessary, before using such a soil in a definitive test, to demonstrate the suitability
[28].
of the artificial soil in complying with the validity criteria, unless the peat contents lowered more than specified above
Prepare the artificial soil at least three days prior to starting the test, by mixing the dry constituents listed above
thoroughly in a large-scale laboratory mixer. A portion of the deionized water required is added while mixing is
continued. Allowance should be made for any water that is used for introducing the test mixture into the soil.
The amount of calcium carbonate required can vary, depending on the properties of the individual batch of
sphagnum peat and should be determined by measuring sub-samples immediately before the test. Store the
mixed artificial soil at room temperature for at least two days to equilibrate acidity. To determine pH and the
maximum water holding capacity, the dry artificial soil is pre-moistened one or two days before starting the test
by adding deionized water to obtain approximately half of the required final water content of 40 % to 60 % of
the maximum water holding capacity.
The total water holding capacity is determined according to Annex C; the pH is determined according to ISO 10390.
5.3 Feeding, any food of a quality shown to be suitable for at least maintaining worm mass during the test is
[20]
considered acceptable. Experience has shown that oatmeal, mashed potato powder , cow or horse manure
is a suitable food. Checks should be made to ensure that cows or horses from which manure is obtained are not
subject to medication or treatment with substances, such as growth promoters, nematicides or similar veterinary
products that could adversely affect the worms during the test. Self-collected cow manure is recommended,
since experience has shown that commercially available cow manure used as garden fertilizer can have adverse
effects on the worms. The manure should be air-dried, finely ground and pasteurized before use.
Each fresh batch of food should be fed to a non-test worm culture before use in a test, to ensure that it is of
suitable quality. Growth and cocoon production should not be reduced compared to worms kept in a substrate
[27]
that does not contain the new batch of food (conditions as described in OECD 207 ).
5.4 Boric acid, as a reference substance.
6 Apparatus
Usual laboratory equipment and the following.
6.1 Test containers, made of glass or another chemically inert material, of about one to two litres in capacity,
should be used. The containers should have a cross-sectional area of approximately 200 cm so that a moist
substrate depth of about 5 cm to 6 cm is achieved when 500 g dry mass of substrate are added. Test containers
shall permit gaseous exchange between the medium and the atmosphere and access of light (e.g. by means of
a perforated transparent cover), and shall have provisions to prevent earthworms from escaping (e.g. by using
a tape to fix the cover).
6.2 Apparatus to determine the dry mass of the substrate, in accordance with ISO 11465.
6.3 Large-scale laboratory mixer, for the preparation of the test sample (5.2).
6.4 Precision balance, with an accuracy of at least 1 mg.
6.5 Polyethylene-membrane, perforated with small holes allowing exchanges between the sample and
the atmosphere.
6.6 Test environment.
6.6.1 Enclosure, capable of being controlled at a temperature of (20 ± 2) °C.
6.6.2 Light source (e.g. white fluorescent tubes), capable of delivering a constant light intensity of 400 Ix to
800 Ix on the containers at a controlled light/dark cycle of between 12 h:12 h and 16 h:8 h.
7 Procedure
7.1 Experimental design
7.1.1 General
A sample of field-collected test soil can be tested at a single concentration (typically 100 %) or evaluated for
toxicity in a multi-concentration test, whereby a series of dilutions are prepared by mixing measured quantities
with a control soil (5.2.2). When testing substances, a series of concentrations is prepared by mixing quantities
of the test substance with a standard soil (e.g. artificial soil). The concentrations are expressed in milligrams of
test substance per kilogram of dried control soil.
Depending on the knowledge of relevant response levels, a preliminary test may precede the definitive test. Each
definitive test consists of a series of soil mixtures (treatments). Each treatment is replicated at least four times.
7.1.2 Preliminary test
A preliminary test to find the range of mixture ratios affecting earthworms is optional, e.g. 0 %, 1 %, 5 %, 25 %,
50 %, 75 %, 100 %, or of the test substance, e.g. 0 mg/kg, 1 mg/kg, 10 mg/kg, 100 mg/kg and 1 000 mg/kg.
The preliminary test is conducted without replication.
When no effects are observed, even at 100 % contaminated soil or at concentrations of 1 000 mg test
substance/kg standard soil (dry mass), the definitive test can be designed as a limit test.
7.1.3 Definitive test
The design of the definitive test depends on the test objectives. Typically, the habitat properties of samples of a
field-collected test soil are characterized by comparing the biological effects found in the test soil(s) with those
found in the control soil (3.10) (single-concentration tests). If a reference soil (3.8) to be used as a control is not
available or not appropriate due to toxicity or atypical physicochemical characteristics, effects are compared
to a standard soil instead. If a reference soil is available to be used as a control soil, it is recommended that a
standard soil exhibiting a typical known response be included, and that the results be used to judge the validity
[18]
and acceptability of the test . Results found for the standard soil assist in distinguishing contaminant effects
from non-contaminant effects caused by soil physicochemical properties of the test soil and/or the control soil.
If, for characterization purposes, a test design including a dilution series is required, three designs are possible
(the concentrations shall be spaced by a factor not exceeding 2):
— For the NOEC/NOER approach, at least five concentrations in a geometric series should be used. Four
replicates for each concentration plus eight controls are recommended.
6 © ISO 2012 – All rights reserved

— For the EC approach, 12 concentrations should be used. Two replicates for each concentration plus six
x
controls are recommended. The spacing factor can be variable: smaller at low concentrations and larger
at high concentrations.
— For the mixed approach, six to eight concentrations in a geometric series should be used. Four replicates
for each concentration plus eight controls are recommended. This mixed approach allows a NOEC as well
as an EC evaluation.
x
A limit test can be sufficient if, in the preliminary test, no toxic effect was observed. In the limit test, only the test
soil without any dilution and the control shall be tested with at least four replicates each.
7.2 Preparation of test mixture
7.2.1 Testing of contaminated soil
Mix the test soil with the reference soil or the standard soil thoroughly (either manually or by using a hand
mixer) according to the selected dilution range. Check the homogeneity of the mixture visually. The total mass
of the test soil and the reference soil or the standard soil shall be 500 g to 600 g (dry mass) in each test
container (6.1). Wet the test mixture with deionized water to reach an appropriate water content of usually 40 %
to 60 % of the total water holding capacity determined according to Annex C. In some cases, e.g. when testing
waste materials, higher percentages are required. A rough check of the soil moisture content can be obtained
by gently squeezing the soil in the hand; if the moisture content is correct, small drops of water should appear
between the fingers.
Determine the pH for each test mixture (one container per concentration) according to ISO 10390 at the
beginning and end of the test (when acid or basic substances are tested, do not adjust the pH).
Proceed simultaneously with at least four replicates per concentration and the control(s).
WARNING — Contaminated soils may contain unknown mixtures of toxic, mutagenic, or otherwise
harmful chemicals or infectious microorganisms. Precautions should be taken to avoid skin contact.
Occupational health risks may arise from dust or evaporated chemicals during handling and incubation.
7.2.2 Testing substances added to the control soil
Control soil (5.2.2) is used to prepare the test sample. For each test container (6.1), the mass of the substrate
used shall be 500 g (dry mass). Add substances to the control soil and mix thoroughly.
For the introduction of test substances, use either method a), b) or c), as appropriate:
a) Water-soluble substance
— Immediately before starting the test, dissolve the quantity of the test substance in the water or a portion of
it required to wet the soil substrate for the replicates of one concentration in order to meet the requirements
of 5.2.2. Mix it thoroughly with the soil substrate before introducing it into the test containers.
b) Substances insoluble in water but soluble in organic solvents
— Dissolve the quantity of test substance required to obtain the desired concentration in a volatile solvent
(such as acetone or hexane) and mix it with a portion of the quartz sand required. After evaporating
the solvent by placing the container under a fume hood, add the remainder of the standard soil and
the water and mix it thoroughly before introducing it into the test containers.
Ultrasonic dispersion, organic solvents, emulsifiers or dispersants can be used to disperse substances with low
aqueous solubility. When such auxiliary substances are used, all test concentrations and an additional control
should contain the same minimum amount of auxiliary substance.
WARNING — Take appropriate precautions when dealing with solvent vapour to avoid danger from
inhalation or explosion, and to avoid damage to extraction equipment, pumps, etc.
c) Substances insoluble in water or organic solvents
— For a substance insoluble in a volatile solvent, prepare a mixture of 10 g of finely ground industrial quartz
sand (see 5.2.2) and the quantity of the test substance required to obtain the desired concentration.
Add that mixture to the remainder of the standard soil and the water and mix thoroughly before
introducing it into the test containers.
— Mix the test substance into the standard soil before the earthworms are added.
Base the concentrations selected to provide the LOEC/NOEC on the results of the preliminary test. Space the
concentrations by a factor not exceeding 2. Substances mixed into the substrate do not need to be tested at
concentrations higher than 1 000 mg/kg mass of test sample. Proceed simultaneously with all replicates per
concentration and the control(s) required according to the selected approach.
Determine the pH for each test sample (one container per concentration) according to ISO 10390 at the
beginning and end of the test.
7.2.3 Preparation of control container
The control container contains the control soil (5.2.2) wetted with deionized water to reach 40 % to 60 % of the
total water holding capacity (determined according to Annex C).
Prepare one control container for the preliminary test and at least four control containers for the definitive test.
Prepare the control containers in the same way as the test containers. If the preparation of the test requires
the use of a solvent (see 7.2.2), use an additional control prepared with solvent but without the test substance.
Cover the containers as indicated in 6.1.
7.3 Addition of the earthworms
For each test container and the control container(s), prepare, wash and gently wipe (using absorbent paper) 10
worms (5.1). Determine the homogeneity of the test population by weighing a sample of 20 worms individually, to
avoid systematic errors in distributing the worms to the test containers. Having ensured homogeneity, batches
of 10 worms shall then be selected, weighed and placed in each test container. Assign batches of worms using
a randomization procedure. The range of mean biomass between vessels should not exceed 100 mg.
Cover the containers as indicated in 6.1 and place them in the test enclosure (6.6.1).
7.4 Test conditions and measurements
One day after addition of the worms, spread 5 g per test container of air-dried finely ground food source (5.3)
on the soil surface and moisten with potable water (about 5 ml to 6 ml per container). Feed once a week during
the test period. If food consumption is low, reduce feeding to a minimum to avoid fungal growth or moulding.
Record feeding activity and the quantity of food applied over the test period for each test container.
Maintain the water content of the soil substrate in the test containers during the test period by reweighing
the test containers periodically and, if necessary, by replenishing lost water. At the end of the test, the water
content shall not differ by more than 10 % from that at the beginning of the test.
Keep the adult worms over a period of four weeks in the test sample. At the end of this period, remove the adults
and, for each container, record the total number and mass of living adult worms. Keep the test containers for
another period of four weeks in the test environment (6.6) to allow offspring to develop. At the beginning of this
period, juveniles are fed once with 5 g of food per test container, carefully mixed by hand into the substrate. After
this period, count the number of offspring per test container hatched from the cocoons using a suitable method.
NOTE Annex D gives examples of two suitable methods, including one which allows counting of cocoons.
8 © ISO 2012 – All rights reserved

7.5 Reference substance
The NOEC and/or the EC of a reference substance shall be determined to provide assurance that the laboratory
x
test conditions are adequate and to verify that the response of the test organism does not change statistically
over time. It is advisable to test a reference substance at least twice a year or, when testing is carried out in a
lower frequency, in parallel to the determination of the toxicity of a test substance.
Boric acid is recommended as a reference substance. If the compound is mixed into the substrate, observe the
effects on reproduction (α = 0,05, where α is the level of significance) at concentrations of between 400 mg and
600 mg of boric acid per kilogram dry mass of substrate. The test report on the performance of the reference
compound shall be completed periodically and if the test conditions have changed.
8 Calculation and expression of results
8.1 Calculation
For each dilution or concentration, determine the percent mortality, the percent loss/increase in biomass of the
adults after four weeks, and the number of offspring produced after another period of four weeks.
8.2 Expression of results
A graphical presentation of the mean values of the end points, including standard deviation of the measured
values against the test soil(s), control soil(s) or the selected series of soil mixture ratios, should be prepared.
This comparison or curve gives an impression of the quality of effects and their magnitudes. Express the
mixture ratio as based on soil dry mass.
If dilution or concentration series were performed, indicate:
— in the EC approach, the percent soil mixture based on dry mass or in milligrams per kilogram of dried soil
x
substrate, the median percent dilution of contaminated soil or median concentration of the test substance,
which reduces the number of juvenile worms to 50 % (EC ) compared to the control within the test period, or
— in the NOEC approach, the soil mixture ratio immediately below the LOEC or highest tested concentration
of a test substance which, when compared to the control, has no statistically significant lethal or other
effect such as mass alteration and reduction of reproduction (p < 0,05).
9 Validity of the test
The results are considered to be valid if:
— the rate of production of juveniles is at least 30 per control container;
— the coefficient of variation of reproduction in the control does not exceed 30 %;
— the percent mortality of the adults observed in the control(s) is ≤ 10 %.
See Annex E.
10 Statistical analysis
10.1 General
Most of the test methods with sub-lethal end points, e.g. growth, reproduction, involve quantitative effects,
e.g. measuring the weight of the organisms or counting juvenile worms. Quantal effects may also be measured
in the same test, such as mortality after four weeks exposure.
Guidance given here for statistical evaluation of test results aims to make the investigator aware of problems
that can arise as a consequence of a test design selected. Computer programs do not necessarily guard
against violations of rules that can cause erroneous analyses. It is strongly recommended to look for more
information in specific guidance documents (e.g. as provided by Reference [10]) or contacting a statistician.
10.2 Single-concentration tests
Quantitative single-concentration tests (e.g. effects on reproduction or the biomass development) have different
statistical methods. For sampling at several locations with field replication, ANOVA would be a first step if
results were suitable. If the null hypothesis of no difference was rejected, analysis would proceed to one of
[11]
several multiple-comparison tests .
An example of a single-concentration test for quantitative effects can be counting juvenile worms as the end
point of effects on reproduction or measuring the average biomass of earthworms after exposure to a sample
of undiluted contaminated soil, compared to numbers of juvenile worms or biomass of earthworms exposed
to a reference or standard soil. If there was only one sample tested, and one control sample, without any
replicates, results cannot be compared by any statistical test. In a quantitative test with replication for the test
soil and for the control soil, a standard t-test would be suitable for statistical analysis.
Analysis of variance (ANOVA) involving multiple comparisons of end-point data derived for undiluted test soils,
including field replicates of field-collected soil from more than one sampling location, is commonly used for
statistical interpretation of the significance of quantitative findings (e.g. biomass) from soil toxicity tests. This
[10]
is a hypothesis-testing approach, and is subject to appreciable weaknesses . The parametric analyses
(e.g. ANOVA and multiple comparisons) for such data assume that the data are normally distributed, that the
treatments are independent, and that the variance is homogeneous among the different treatments. These
assumptions shall be tested. If the data satisfy these assumptions, analysis may proceed. If not, data may be
transformed and tested again. As parametric tests are reasonably robust in the face of moderate deviations
from normality and equality of variance, parametric analysis should proceed, even if moderate nonconformity
[10][11]
continues after transformation . Data which fail to satisfy either test might be transformed to meet the
requirements. If the original or transformed data do not satisfy either test for distribution of data, then analysis
by nonparametric methods shall be carried out.
10.3 Multi-concentration tests
10.3.1 Preliminary test
If a clear dose-response is obvious, EC -values can be estimated by using regression techniques like logistic
x
regression function or probit analysis. In other cases, the effect range should be determined by expert knowledge.
10.3.2 Definitive test
A point estimate (ER /EC approach) is recommended as the best quantitative end point. This is usually a
x x
specific degree of reduction in performance compared to the control. Linear and nonlinear regression methods
are widely applied for statistical analysis. Operators should be aware of being able to understand the judgements
in selecting appropriate mathematical models.
Hypothesis testing (NOEC approach) is commonly used to identify dilutions (concentrations) with significant
effects compared to the control. As this method has many flaws, it is not recommended for future use.
Therefore, in cases where various dilutions (concentrations) of each sample of field-collected soil with negative
control soil are tested, preference is given to the EC approach or, if required by legislation, the NOEC approach
x
for data analysis:
a) ER /EC (effect concentration) approach
x x
The ER /EC approach can only be used if a clear dose-response relationship is found. Wherever possible,
x x
the R (where R is the regression coefficient) should be 0,7 or higher and the test mixtures used should
encompass 20 % to 80 % effects. If these requirements are not fulfilled, expert knowledge is necessary for the
interpretation of the test results.
To compute an ER /EC value, the treatment means are used for regression analysis after an appropriate
x x
dose-response function has been found (e.g. probit or logistic function). A desired ER /EC is obtained by
x x
10 © ISO 2012 – All rights reserved

inserting a value corresponding to x % of t
...


NORME ISO
INTERNATIONALE 11268-2
Deuxième édition
2012-11-01
Qualité du sol — Effets des polluants vis-
à-vis des vers de terre —
Partie 2:
Détermination des effets sur la
reproduction de Eisenia fetida/Eisenia
andrei
Soil quality — Effects of pollutants on earthworms —
Part 2: Determination of effects on reproduction of Eisenia fetida/
Eisenia andrei
Numéro de référence
©
ISO 2012
DOCUMENT PROTÉGÉ PAR COPYRIGHT
Droits de reproduction réservés. Sauf prescription différente, aucune partie de cette publication ne peut être reproduite ni utilisée sous
quelque forme que ce soit et par aucun procédé, électronique ou mécanique, y compris la photocopie et les microfilms, sans l’accord écrit
de l’ISO à l’adresse ci-après ou du comité membre de l’ISO dans le pays du demandeur.
ISO copyright office
Case postale 56 • CH-1211 Geneva 20
Tel. + 41 22 749 01 11
Fax + 41 22 749 09 47
E-mail copyright@iso.org
Web www.iso.org
Publié en Suisse
ii © ISO 2012 – Tous droits réservés

Sommaire Page
Avant-propos .iv
Introduction . v
1 Domaine d’application . 1
2 Références normatives . 1
3 Termes et définitions . 2
4 Principe . 3
5 Réactifs et matériaux . 4
6 Appareillage . 6
7 Mode opératoire . 6
7.1 Plan d’expérimentation . 6
7.2 Préparation des mélanges d’essai . 7
7.3 Introduction des vers de terre . 9
7.4 Conditions d’essai et mesurages . 9
7.5 Substance de référence . 9
8 Calcul et expression des résultats . 9
8.1 Calcul . 9
8.2 Expression des résultats . 9
9 Validité de l’essai .10
10 Analyse statistique .10
10.1 Généralités .10
10.2 Essais à une seule concentration .10
10.3 Essais à plusieurs concentrations . 11
11 Rapport d’essai .12
Annexe A (informative) Détermination de la toxicité chronique des substances chimiques pour les vers
de terre dans des conditions tropicales .13
Annexe B (informative) Élevage d’Eisenia fetida et d’Eisenia andrei .15
Annexe C (informative) Détermination de la capacité de rétention d’eau d’un sol artificiel .16
Annexe D (informative) Techniques de comptage des vers juvéniles éclos des cocons .17
Annexe E (informative) Performance de la méthode .18
Bibliographie .20
Avant-propos
L’ISO (Organisation internationale de normalisation) est une fédération mondiale d’organismes nationaux de
normalisation (comités membres de l’ISO). L’élaboration des Normes internationales est en général confiée aux
comités techniques de l’ISO. Chaque comité membre intéressé par une étude a le droit de faire partie du comité
technique créé à cet effet. Les organisations internationales, gouvernementales et non gouvernementales,
en liaison avec l’ISO participent également aux travaux. L’ISO collabore étroitement avec la Commission
électrotechnique internationale (CEI) en ce qui concerne la normalisation électrotechnique.
Les Normes internationales sont rédigées conformément aux règles données dans les Directives ISO/CEI, Partie 2.
La tâche principale des comités techniques est d’élaborer les Normes internationales. Les projets de Normes
internationales adoptés par les comités techniques sont soumis aux comités membres pour vote. Leur publication
comme Normes internationales requiert l’approbation de 75 % au moins des comités membres votants.
L’attention est appelée sur le fait que certains des éléments du présent document peuvent faire l’objet de droits
de propriété intellectuelle ou de droits analogues. L’ISO ne saurait être tenue pour responsable de ne pas avoir
identifié de tels droits de propriété et averti de leur existence.
L’ISO 11268-2 a été élaborée par le comité technique ISO/TC 190, Qualité du sol, sous-comité SC 4,
Méthodes biologiques.
Cette deuxième édition annule et remplace la première édition (ISO 11268-2:1998), qui a fait l’objet d’une
révision technique.
L’ISO 11268 comprend les parties suivantes, présentées sous le titre général Qualité du sol — Effets des
polluants vis-à-vis des vers de terre:
— Partie 1: Détermination de la toxicité aiguë vis-à-vis de Eisenia fetida/Eisenia andrei
— Partie 2: Détermination des effets sur la reproduction de Eisenia fetida/Eisenia andrei
— Partie 3: Lignes directrices relatives à la détermination des effets sur site
iv © ISO 2012 – Tous droits réservés

Introduction
Des systèmes d’essais écotoxicologiques sont mis en œuvre pour obtenir des informations sur les effets des
contaminants présents dans le sol et sont proposés en complément d’une analyse chimique conventionnelle
[34] [35]
(voir l’ISO 15799 et l’ISO 17616 ). L’ISO 15799 comprend une liste et une brève caractérisation des
systèmes d’essai recommandés et normalisés et l’ISO 17616 donne des lignes directrices pour le choix et
l’évaluation des essais biologiques. Les systèmes d’essais aquatiques sur éluat de sol sont mis en œuvre pour
obtenir des informations sur la fraction des contaminants susceptibles d’atteindre les eaux souterraines par le
mouvement de l’eau (fonction de rétention des sols), alors que les systèmes d’essais terrestres sont utilisés
pour évaluer la fonction d’habitat des sols. En tant que systèmes d’essais normalisés utilisant des vers de terre
comme organismes indicateurs pour la fonction d’habitat du sol, un essai de toxicité aiguë pour la survie et un
essai de toxicité chronique pour la reproduction sont disponibles.
La présente partie de l’ISO 11268 décrit une méthode basée sur la détermination des effets sublétaux des sols
contaminés pour des vers de terre adultes des espèces Eisenia fetida (Savigny 1826) et Eisenia andrei (André
1963). La méthode peut éventuellement être utilisée pour évaluer le potentiel toxique aigu pour les vers de terre
de produits chimiques ajoutés à un sol standard (par exemple un sol artificiel). En dernier lieu, des informations
sont fournies sur la manière d’utiliser cette méthode pour évaluer des produits chimiques dans des conditions
tropicales (voir l’Annexe A).
Eisenia fetida et Eisenia andrei sont considérés comme étant représentatifs de la faune du sol et des vers de
terre en particulier. Des informations de base sur l’écologie des vers de terre et leur utilisation en écotoxicologie
sont disponibles. D’autres espèces, par exemple Aporrectodea caliginosa, Lumbricus rubellus et Lumbricus
terrestris, ont également été utilisés comme organismes d’essai. En général, ces espèces ou d’autres ne se
sont pas avérées être plus sensibles, et les bases de données et l’expérience dans l’évaluation des sols sont
[16][17]
également réduites .
La présente partie de l’ISO 11268 a été élaborée en tenant compte des modes opératoires d’essai adoptés par
[27][28] [11]
l’Organisation de coopération et de développement économiques et par l’Union européenne .
NORME INTERNATIONALE ISO 11268-2:2012(F)
Qualité du sol — Effets des polluants vis-à-vis des vers de terre —
Partie 2:
Détermination des effets sur la reproduction de Eisenia fetida/
Eisenia andrei
AVERTISSEMENT — Les sols contaminés peuvent contenir des mélanges inconnus de produits
chimiques toxiques, mutagènes ou nocifs d’une autre manière ou des micro-organismes infectieux.
Des risques pour la santé au travail peuvent survenir en raison de la poussière ou de l’évaporation de
produits chimiques pendant la manipulation et l’incubation. Il convient de prendre des mesures pour
éviter tout contact avec la peau.
1 Domaine d’application
La présente partie de l’ISO 11268 spécifie l’une des méthodes permettant d’évaluer la fonction d’habitat des
sols et de déterminer les effets de contaminants du sol et de produits chimiques sur la reproduction d’Eisenia
fetida/Eisenia andrei par absorption cutanée et ingestion. Cet essai chronique s’applique aux sols et aux
matériaux de type sol de qualité inconnue, provenant par exemple de sites contaminés, de sols amendés, de
sols après remédiation, de sols agricoles ou autres sites d’intérêt et de déchets.
Les effets des substances sont évalués à l’aide d’un sol standard, de préférence un substrat de sol artificiel
défini. Pour les sols contaminés, les effets sont déterminés dans le sol soumis à essai et dans un sol témoin.
Selon l’objectif de l’étude, le substrat témoin et de dilution (gamme de dilutions d’un sol contaminé) peut être
soit un sol non contaminé comparable à l’échantillon de sol à évaluer (sol de référence), soit un sol standard
(par exemple un sol artificiel).
Des informations sont fournies sur la manière d’utiliser cette méthode pour évaluer des produits chimiques
dans des conditions tempérées ainsi que dans des conditions tropicales.
La méthode ne s’applique pas aux substances volatiles, c’est-à-dire aux substances pour lesquelles H
(constante de Henry) ou le coefficient de partage air/eau est supérieur à 1, ou pour lesquelles la pression de
vapeur à 25 °C excède 0,013 3 Pa.
Cette méthode ne tient pas compte de la stabilité de la substance pendant l’essai.
2 Références normatives
Les documents de référence suivants sont indispensables pour l’application du présent document. Pour les
références datées, seule l’édition citée s’applique. Pour les références non datées, la dernière édition du
document de référence s’applique (y compris les éventuels amendements).
ISO 10381-6, Qualité du sol — Échantillonnage — Partie 6: Lignes directrices pour la collecte, la manipulation
et la conservation, dans des conditions aérobies, de sols destinés à l’évaluation en laboratoire des processus,
de la biomasse et de la diversité microbiens
ISO 10390, Qualité du sol — Détermination du pH
ISO 10694, Qualité du sol — Dosage du carbone organique et du carbone total après combustion sèche
(analyse élémentaire)
ISO 11260, Qualité du sol — Détermination de la capacité d’échange cationique effective et du taux de
saturation en bases échangeables à l’aide d’une solution de chlorure de baryum
ISO 11268-1, Qualité du sol — Effets des polluants vis-à-vis des vers de terre — Partie 1: Détermination de la
toxicité aiguë vis-à-vis de Eisenia fetida/Eisenia andrei
ISO 11277, Qualité du sol — Détermination de la répartition granulométrique de la matière minérale des sols —
Méthode par tamisage et sédimentation
ISO 11465, Qualité du sol — Détermination de la teneur pondérale en matière sèche et en eau — Méthode
gravimétrique
3 Termes et définitions
Pour les besoins du présent document, les termes et définitions suivants s’appliquent.
3.1
contaminant
substance ou agent présent(e) dans le sol et résultant de l’activité humaine
[ISO 15176:2002]
3.2
croissance
augmentation de la biomasse (c’est-à-dire la masse fraîche des organismes)
NOTE Elle est exprimée en pourcentage de la masse fraîche des organismes au début de l’essai.
3.3
reproduction
nombre moyen de jeunes produits par récipient d’essai après huit semaines d’incubation dans des conditions
d’essai spécifiées
3.4
RE (taux efficace) ou CE (concentration efficace)
x x
taux ou concentration de l’échantillon pour essai ou de la substance d’essai auquel ou à laquelle la reproduction
est réduite de x % par rapport au témoin
3.5
essai limite
essai à une seule concentration comprenant au moins quatre réplicats pour chacun, l’échantillon pour essai
sans dilution ou la plus forte concentration de substances d’essai mélangées dans le sol témoin et le témoin
3.6
plus faible taux (RMEO) ou concentration ayant un effet observé (CMEO)
pourcentage le plus faible d’un échantillon pour essai dans un sol témoin, ou concentration la plus faible d’une
substance, pour lequel (laquelle) un effet statistiquement significatif est observé
NOTE La CMEO est exprimée en pourcentage de masse sèche de sol d’essai par masse sèche de mélange d’essai.
Tous les mélanges d’essai supérieurs à la CMEO ont un effet dommageable supérieur ou égal à celui observé à la CMEO.
Si cette condition ne peut pas être satisfaite, il convient d’expliquer comment la CMEO et la CSEO (3.7) ont été choisies.
3.7
RSEO (taux sans effet observé) ou CSEO (concentration sans effet observé)
pourcentage de sol d’essai immédiatement inférieur à la RMEO/CMEO ou concentration d’essai la plus élevée
d’une substance soumise à essai qui, comparée au témoin, n’a aucun effet létal ou autre effet statistiquement
significatif, tel qu’une réduction de la reproduction ou une modification de la masse (probabilité d’erreur p < 0,05)
NOTE La CSEO est exprimée en pourcentage de masse sèche du sol d’essai par masse sèche du mélange d’essai.
3.8
sol de référence
sol non contaminé spécifique au site (par exemple prélevé au voisinage d’un site contaminé) ayant des
propriétés similaires (concentrations d’éléments nutritifs, pH, teneur en carbone organique et texture) à celles
du sol soumis à essai
2 © ISO 2012 – Tous droits réservés

3.9
sol standard
sol prélevé sur le terrain ou sol artificiel dont les principales propriétés (par exemple pH, texture, teneur en
matières organiques) se situent dans une gamme connue
[11] [27] [23]
EXEMPLE Euro-Soils , sol artificiel , sol standard LUFA .
NOTE Les propriétés des sols standards peuvent différer de celles du sol d’essai.
3.10
sol témoin
sol de référence ou sol standard utilisé comme témoin et comme milieu pour préparer une gamme de dilutions
avec les échantillons pour essai ou une substance de référence qui satisfait les critères de validité
NOTE Pour un sol naturel, il est recommandé de démontrer sa capacité à être utilisé pour un essai et à atteindre les
critères de validité de l’essai avant de l’utiliser dans un essai définitif.
3.11
mélange d’essai
mélange d’un sol contaminé ou de la substance soumise à essai avec un sol témoin (3.10)
NOTE Les mélanges d’essai sont donnés en pourcentage de sol contaminé sur la base de la masse sèche du sol.
3.12
ratio de mélange d’essai
rapport entre le sol soumis à essai et le sol témoin dans un mélange d’essai
NOTE Différents ratios peuvent être appliqués dans une gamme de dilutions afin de déterminer une relation dose-réponse.
4 Principe
Les effets sur la reproduction de vers de terre adultes (espèce Eisenia fetida ou Eisenia andrei) exposés au
sol soumis à essai sont comparés à ceux observés pour des échantillons exposés à un sol témoin. Le cas
échéant, les effets sont déterminés sur la base de l’exposition à une gamme de dilutions du sol contaminé
ou à une gamme de concentrations de la substance soumise à essai. De plus, les observations relatives à la
croissance et à la survie des vers de terre adultes sont consignées. Les mélanges d’essai sont préparés au
début de l’essai et ne sont pas renouvelés au cours de la période d’essai.
Au bout de quatre semaines, les vers adultes sont retirés des récipients d’essai et les effets sur la mortalité et
la biomasse sont mesurés par comptage et pesée. L’effet sur la reproduction, qui constitue le critère d’effet final,
est mesuré en comptant le nombre de jeunes éclos des cocons après une période supplémentaire de quatre
semaines. Les résultats obtenus lors des essais sont comparés à ceux obtenus avec un sol témoin ou, le cas
échéant, sont utilisés pour déterminer respectivement les dilutions ou les concentrations qui ne provoquent pas
d’effet sur la biomasse, la mortalité et la reproduction (RMEO/CMEO) ainsi que la dilution (concentration) entraînant
une réduction de x % du nombre de juvéniles éclos des cocons par rapport au témoin (RE /CE , 56 jours).
x x
Lorsqu’une gamme de dilutions ou de concentrations est soumise à essai, toutes les dilutions/concentrations
d’essai supérieures à la RMEO/CMEO) doivent avoir un effet dommageable supérieur ou égal à celui observé
à la RMEO/CMEO. Lorsqu’on ne connaît pas la dilution/concentration à laquelle le sol soumis à essai/la
substance d’essai est susceptible de produire un effet, il est utile de conduire l’essai en deux étapes.
— Un essai préliminaire est réalisé conformément à l’ISO 11268-1 pour obtenir une indication de la
dilution/concentration produisant un effet et de la dilution/concentration ne provoquant pas de mortalité
(RSEO/CSEO). Les dilutions/concentrations à utiliser au cours de l’essai définitif peuvent ensuite être choisies.
— Un essai définitif pour déterminer les effets sublétaux du (des dilutions de) sol contaminé ou la concentration
de la substance chimique qui, lorsqu’il (elle) est uniformément réparti(e) dans le sol standard, n’a pas
d’effet significatif sur le nombre de jeunes éclos des cocons comparé au témoin (RSEO/CSEO) et la plus
faible concentration produisant un effet (RMEO/CMEO).
NOTE L’utilisation d’un sol de référence est une exigence essentielle pour démontrer l’état actuel de la population
soumise à essai et éviter toute mauvaise interprétation des résultats.
5 Réactifs et matériaux
[15][19]
5.1 Réactif biologique, constitué de vers de terre adultes de l’espèce Eisenia fetida ou Eisenia andrei
[20]
, âgés de deux mois à un an, possédant un clitellum et dont la masse humide est comprise entre 300 mg et
600 mg (E. fetida) ou entre 250 mg et 600 mg (E. andrei).
Sélectionner les vers à utiliser pour l’essai de manière à obtenir, dans la mesure du possible, une population
homogène du point de vue de l’âge, de la taille et de la masse. Il convient de préférence de sélectionner les
vers dans un élevage synchrone ayant une structure d’âge relativement homogène. Laver les vers à l’eau
potable avant l’essai.
NOTE Un exemple de technique d’élevage d’Eisenia fetida/Eisenia andrei est donné dans l’Annexe B.
Avant l’utilisation, conditionner les vers sélectionnés pendant 1 jour à 7 jours dans un sol standard ou un
sol témoin. La nourriture, qui est également utilisée comme source d’alimentation dans le cadre de l’essai
(voir 5.3), doit être dispensée en quantité suffisante (voir 7.4).
5.2 Échantillon soumis à essai, qui peut être constitué d’un sol prélevé sur le terrain ou d’un sol témoin
amendé par le mélange d’essai.
5.2.1 Sols prélevés sur le terrain, sol ou déchets
Le ou les échantillons peuvent être un sol prélevé sur un site industriel, agricole ou autre site d’intérêt, ou des
déchets (par exemple matériau de dragage, boues provenant d’une station d’épuration des eaux urbaines,
matériau composite ou fumier) pour lesquels une éventuelle mise en dépôt terrestre est envisagée.
Les échantillons pour essai doivent être tamisés à 4 mm et soigneusement mélangés. Si nécessaire, le sol
peut être séché à l’air sans chauffage avant le tamisage. Il convient que la conservation des échantillons pour
essai soit aussi courte que possible. Conserver le sol conformément à l’ISO 10381-6 en utilisant des récipients
qui réduisent au minimum les pertes de contaminants du sol par volatilisation et sorption sur les parois des
récipients. Il convient de ne pas corriger le pH du sol car il peut avoir une incidence sur la biodisponibilité des
contaminants du sol.
Pour l’interprétation des résultats d’essai, les caractéristiques suivantes doivent être déterminées pour chaque
échantillon de sol prélevé sur le terrain:
— pH conformément à l’ISO 10390;
— texture (sable, limon, vase) conformément à l’ISO 11277;
— teneur en eau conformément à l’ISO 11465;
— capacité de rétention d’eau conformément à l’Annexe C;
— capacité d’échange cationique conformément à l’ISO 11260;
— carbone organique conformément à l’ISO 10694.
NOTE Il est important de mesurer la capacité de rétention d’eau de tous les mélanges utilisés dans l’essai.
5.2.2 Sol témoin, soit a) sol de référence (3.8) soit b) sol standard (3.9) permettant la présence de vers de terre.
a) Si des sols de référence provenant de zones non contaminées voisines d’un site contaminé sont disponibles,
il convient de les traiter et de les caractériser de la même manière que les échantillons soumis à essai. S’il
est impossible d’exclure une contamination toxique ou des propriétés inhabituelles du sol, il convient de
préférer des sols témoins standards.
4 © ISO 2012 – Tous droits réservés

b) Pour évaluer les effets de substances mélangées au sol ou pour préparer les dilutions de l’échantillon
soumis à essai, des sols standards doivent être utilisés pour préparer l’échantillon pour essai. Les
propriétés du sol standard prélevé sur le terrain doivent être consignées dans le rapport.
Le substrat appelé «sol artificiel» peut être utilisé comme un sol standard et a la composition suivante:
Pourcentage exprimé
en masse sèche
— Tourbe de sphaignes, finement moulue, exempte de tout résidu 10 %
végétal visible
— Argile kaolinique contenant au moins 30 % de kaolinite 20 %
— Sable de quartz industriel (contenant en majorité du sable fin, 69 %
constitué à plus de 50 % de grains de granulométrie comprise entre
0,05 mm et 0,2 mm)
Environ 0,3 % à 1,0 % de carbonate de calcium (CaCO , pulvérisé, de qualité analytique) sont nécessaires
pour obtenir un pH de 6,0 ± 0,5.
NOTE 1 Afin de prendre en compte les propriétés des substances fortement non polaires [log K > 2, où K est le
ow ow
coefficient de partage (octanol/eau)] ou ionisantes, 5 % de tourbe se sont avérés suffisants pour maintenir la structure
souhaitée du sol artificiel.
NOTE 2 Il a été démontré qu’Eisenia fetida peut respecter les critères de validité, même en ce qui concerne la reproduction,
[18]
lorsqu’il est soumis à essai dans des sols ayant une plus faible teneur en carbone organique (par exemple 2,7 %) , et des
expériences prouvent que cette teneur peut être obtenue dans un sol artificiel avec 5 % de tourbe. Par conséquent, avant
d’utiliser un tel sol dans un essai définitif, il n’est pas nécessaire de démontrer que le sol artificiel permet de respecter les
[28]
critères de validité, sauf si la teneur en tourbe est inférieure à la valeur spécifiée ci-dessus .
Préparer le sol artificiel au moins trois jours avant le début de l’essai, en mélangeant soigneusement les
constituants secs indiqués ci-dessus dans un mélangeur de laboratoire de grandes dimensions. Une partie
de l’eau déionisée nécessaire est ajoutée pendant le mélange. Il convient de tenir compte de l’eau qui est
utilisée pour introduire le mélange d’essai dans le sol. La quantité de carbonate de calcium nécessaire peut
varier selon les propriétés du lot particulier de tourbe de sphaignes et il convient qu’elle soit déterminée par
des mesurages effectués sur des sous-échantillons immédiatement avant l’essai. Conserver le sol artificiel
mélangé à température ambiante pendant au moins deux jours pour équilibrer l’acidité. Pour déterminer le pH
et la capacité maximale de rétention d’eau, le sol artificiel sec est pré-humidifié un jour ou deux jours avant le
début de l’essai en ajoutant de l’eau déionisée de manière à atteindre approximativement la moitié de la teneur
finale en eau requise correspondant de 40 % à 60 % de la capacité maximale de rétention d’eau.
La capacité totale de rétention d’eau est déterminée conformément à l’Annexe C; le pH est déterminé
conformément à l’ISO 10390.
5.3 Alimentation. Est considéré comme acceptable tout aliment dont la qualité s’est avérée appropriée pour
le maintien, au minimum, de la masse des vers pendant l’essai. L’expérience a montré que la farine d’avoine, la
[20]
poudre de pomme de terre écrasée , la bouse de vache ou le crottin de cheval constitue un aliment adéquat.
Il convient de procéder à des contrôles afin de s’assurer que les vaches ou les chevaux produisant ce fumier
ne sont pas traités par des médicaments ou d’autres substances, tels que des activateurs de croissance,
des nématicides ou des produits vétérinaires comparables pouvant avoir un effet nocif sur les vers pendant
l’essai. Le fumier recueilli en milieu naturel est recommandé, car l’expérience a montré que la bouse de vache
disponible dans le commerce, utilisée comme engrais dans les jardins, peut avoir des effets nocifs sur les vers.
Il convient que le fumier soit séché à l’air, finement broyé et pasteurisé avant l’emploi.
Avant utilisation, il convient de contrôler la qualité de chaque lot de nourriture fraîche en le donnant à un
élevage de vers non soumis à essai. Il convient que la croissance et la production de cocons ne diminuent pas
par rapport à celles de vers élevés dans un substrat ne contenant pas le nouveau lot de nourriture (conditions
[27]
telles que décrites dans l’OCDE 207 ).
5.4 Acide borique, utilisé comme substance de référence.
6 Appareillage
Matériel courant de laboratoire, et ce qui suit.
6.1 Récipients d’essai, en verre ou autre matériau chimiquement inerte, de capacité comprise environ entre
1 l et 2 l. Il convient que les récipients aient une section transversale d’environ 200 cm de manière à atteindre
une hauteur de substrat humide d’environ 5 cm à 6 cm lorsque 500 g de substrat équivalent sec sont ajoutés. Les
récipients d’essai doivent permettre les échanges gazeux entre le milieu et l’atmosphère ainsi que le passage
de la lumière (par exemple au moyen d’un couvercle transparent perforé). Ils doivent être conçus de manière à
empêcher les vers de terre de s’échapper (par exemple en fixant le couvercle à l’aide de ruban adhésif).
6.2 Appareillage permettant de déterminer la masse sèche du substrat, conformément à l’ISO 11465.
6.3 Mélangeur de laboratoire de grandes dimensions, pour la préparation de l’échantillon soumis à essai (5.2).
6.4 Balance, ayant une précision d’au moins 1 mg.
6.5 Membrane de polyéthylène, perforée de petits trous pour permettre les échanges entre l’échantillon et
l’atmosphère.
6.6 Environnement d’essai.
6.6.1 Enceinte, thermostatée à (20 ± 2) °C.
6.6.2 Source lumineuse (par exemple tubes fluorescents blancs), permettant de soumettre les récipients à
une intensité lumineuse constante de 400 Ix à 800 Ix, selon un cycle contrôlé lumière/obscurité compris entre
12 h:12 h et 16 h:8 h.
7 Mode opératoire
7.1 Plan d’expérimentation
7.1.1 Généralités
Un échantillon de sol d’essai prélevé sur le terrain peut être testé à une seule concentration (généralement
100 %) ou faire l’objet d’une évaluation de sa toxicité lors d’essai à plusieurs concentrations pour lequel une
gamme de dilutions est préparée en mélangeant des quantités calculées avec un sol témoin (5.2.2). Lorsque des
substances sont soumises à essai, une gamme de concentrations est préparée en mélangeant des quantités
de la substance soumise à essai avec un sol standard (par exemple le sol artificiel). Les concentrations sont
exprimées en milligrammes de substance d’essai par kilogramme de sol témoin équivalent sec.
Selon la connaissance des niveaux de réponse pertinents, un essai préliminaire peut précéder l’essai définitif.
Chaque essai définitif comprend une gamme de mélanges de sols (traitements). Chaque traitement est répété
au moins quatre fois.
7.1.2 Essai préliminaire
L’essai préliminaire permettant de déterminer la gamme de mélanges ou de concentrations de substance
d’essai affectant les vers de terre est facultatif, par exemple ratios de mélange de 0 %, 1 %, 5 %, 25 %,
50 %, 75 % et 100 %, ou concentrations de substance d’essai de 0 mg/kg, 1 mg/kg, 10 mg/kg, 100 mg/kg et
1 000 mg/kg. L’essai préliminaire est effectué sans répétition.
Lorsqu’aucun effet n’est observé, même à 100 % de sol contaminé ou à une concentration de substance d’essai
de 1 000 mg par kg de sol standard (équivalent sec), l’essai définitif peut être conçu comme un essai limite.
6 © ISO 2012 – Tous droits réservés

7.1.3 Essai définitif
La conception de l’essai définitif dépend des objectifs de l’essai. Les propriétés d’habitat des échantillons
de sol d’essai prélevé sur le terrain sont généralement caractérisées en comparant les effets biologiques
observés dans le(s) sol(s) soumis à essai avec ceux observés dans le sol témoin (3.10) (essais à une seule
concentration). Si un sol de référence (3.8) devant être utilisé comme témoin n’est pas disponible ou n’est
pas approprié en raison de sa toxicité ou de caractéristiques physico-chimiques atypiques, les effets sont
alors comparés à ceux observés dans un sol standard. Si l’on dispose d’un sol de référence à utiliser comme
sol témoin, il est recommandé d’inclure également un sol standard présentant une réponse type connue et
[18]
d’utiliser ces résultats pour évaluer la validité et l’acceptabilité de l’essai . Les résultats obtenus pour le sol
standard aident à faire la distinction entre les effets liés aux contaminants et ceux non liés aux contaminants
provoqués par les propriétés physico-chimiques du sol d’essai et/ou du sol témoin.
Si, à des fins de caractérisation, une conception d’essai incluant une gamme de dilutions est nécessaire, trois
conceptions sont possibles (les concentrations doivent être espacées par un facteur inférieur ou égal à 2).
— Pour l’approche CSEO/RSEO, il convient d’utiliser une série géométrique d’au moins cinq concentrations.
Quatre réplicats pour chaque concentration et huit témoins sont recommandés.
— Pour l’approche CE , il convient d’utiliser 12 concentrations. Deux réplicats pour chaque concentration et six
x
témoins sont recommandés. Le facteur de séparation peut être variable; plus petit pour les concentrations
faibles, plus grand pour les concentrations élevées.
— Pour l’approche mixte, il convient d’utiliser une série géométrique de six à huit concentrations. Quatre
réplicats pour chaque concentration et huit témoins sont recommandés. Cette méthode mixte permet
d’évaluer une CSEO ainsi qu’une CE .
x
Un essai limite peut suffire si aucun effet toxique n’a été observé au cours de l’essai préliminaire. Dans l’essai
limite, seul le sol soumis à essai sans dilution et le sol témoin doivent être testés, avec au moins quatre
répétitions pour chacun d’eux.
7.2 Préparation des mélanges d’essai
7.2.1 Essai sur sols contaminés
Mélanger soigneusement le sol soumis à essai avec le sol de référence ou avec le sol standard (manuellement
ou à l’aide d’un mélangeur à main) conformément à la gamme de dilutions choisie. Contrôler visuellement
l’homogénéité du mélange. La masse totale du sol soumis à essai et du sol de référence ou du sol standard doit
être comprise entre 500 g et 600 g (équivalent sec) dans chaque récipient d’essai (6.1). Humidifier le mélange
d’essai avec de l’eau déionisée pour atteindre une teneur en eau appropriée généralement comprise entre
40 % et 60 % de la capacité totale de rétention d’eau déterminée conformément à l’Annexe C. Dans certains
cas, par exemple lorsque l’essai est réalisé sur des déchets, des pourcentages plus élevés sont nécessaires.
Une vérification sommaire de la teneur en eau du sol peut être obtenue en comprimant légèrement le sol dans
la main; si la teneur en eau est correcte, de petites gouttes d’eau apparaissent entre les doigts.
Déterminer le pH de chaque mélange d’essai (un récipient par concentration) conformément à l’ISO 10390 au
début et à la fin de l’essai (lorsque des substances acides ou basiques sont soumises à essai, ne pas ajuster le pH).
Réaliser l’essai simultanément sur au moins quatre réplicats par concentration et sur le(s) témoin(s).
AVERTISSEMENT — Les sols contaminés peuvent contenir des mélanges inconnus de produits
chimiques toxiques, mutagènes ou nocifs d’une autre manière ou des micro-organismes infectieux. Il
convient de prendre des mesures pour éviter tout contact avec la peau. Des risques pour la santé au
travail peuvent survenir en raison de la poussière ou de l’évaporation de produits chimiques pendant
la manipulation et l’incubation.
7.2.2 Essais sur substances ajoutées au sol témoin
Un sol témoin (5.2.2) est utilisé pour préparer l’échantillon pour essai. Pour chaque récipient d’essai (6.1), la
masse du substrat utilisé doit être de 500 g (équivalent sec). Ajouter les substances au sol témoin et mélanger
soigneusement.
Pour l’introduction des substances d’essai, utiliser la méthode a), b) ou c), selon le cas:
a) Substances solubles dans l’eau
— Immédiatement avant le début de l’essai, dissoudre la quantité de substance d’essai dans l’eau, ou
une partie de celle-ci, requise pour humidifier les échantillons de sol correspondant aux réplicats
d’une concentration de façon à satisfaire aux exigences de 5.2.2. Mélanger soigneusement avec le
substrat avant son introduction dans les récipients d’essai.
b) Substances insolubles dans l’eau mais solubles dans les solvants organiques
— Dissoudre dans un solvant volatil (tel que l’acétone ou l’hexane) la quantité de substance d’essai
nécessaire pour obtenir la concentration désirée, et la mélanger avec une partie de la quantité
nécessaire de sable de quartz. Après avoir évaporé le solvant en plaçant le récipient sous une hotte
aspirante, ajouter le reste du sol standard et l’eau et mélanger soigneusement le tout avant son
introduction dans les récipients d’essai.
Pour disperser les substances peu solubles dans l’eau, il est possible d’avoir recours aux ultrasons, à des
solvants organiques, des émulsifiants ou des dispersants. Dans ce cas, il convient que les concentrations
soumises à essai et un témoin supplémentaire contiennent la même quantité minimale de substance auxiliaire.
AVERTISSEMENT — Prendre les précautions appropriées concernant les vapeurs de solvant pour
éviter les risques d’inhalation ou d’explosion et pour éviter d’endommager le matériel d’extraction,
les pompes, etc.
c) Substances insolubles dans l’eau ou dans les solvants organiques
— Pour une substance insoluble dans un solvant volatil, préparer un mélange de 10 g de sable de
quartz industriel finement broyé (voir 5.2.2) et la quantité de substance d’essai nécessaire pour
obtenir la concentration souhaitée. Ajouter ce mélange au reste du sol standard et à l’eau et mélanger
soigneusement avant son introduction dans les récipients d’essai.
Mélanger la substance d’essai au sol standard avant d’introduire les vers de terre.
Les concentrations permettant d’obtenir la CMEO/CSEO doivent être choisies sur la base des résultats de
l’essai préliminaire. Les concentrations doivent être espacées par un facteur inférieur ou égal à 2. Il n’est pas
nécessaire de soumettre à essai les substances mélangées au substrat à des concentrations supérieures à
1 000 mg/kg de l’échantillon d’essai. Réaliser l’essai simultanément avec tous les réplicats par concentration
et pour le(s) témoin(s) nécessaires conformément à l’approche choisie.
Déterminer le pH de chaque échantillon soumis à essai (un récipient par concentration) conformément à
l’ISO 10390 au début et à la fin de l’essai.
7.2.3 Préparation des récipients témoins
Le récipient témoin contient le sol témoin (5.2.2) humidifié avec de l’eau déionisée pour atteindre 40 % à 60 %
de la capacité totale de rétention d’eau (déterminée conformément à l’Annexe C).
Préparer un récipient témoin pour l’essai préliminaire et au moins quatre récipients témoins pour l’essai définitif.
Préparer les récipients témoins de la même manière que les récipients d’essai. Si la préparation de l’essai
nécessite l’utilisation d’un solvant (voir 7.2.2), utiliser un témoin supplémentaire préparé avec le solvant, mais
sans la substance d’essai. Couvrir les récipients comme indiqué en 6.1.
8 © ISO 2012 – Tous droits réservés

7.3 Introduction des vers de terre
Pour chaque récipient d’essai ainsi que pour le(s) récipient(s) témoin(s), préparer, laver et essuyer doucement
(à l’aide de papier absorbant) 10 vers (5.1). Pour éviter les erreurs systématiques dans la répartition des vers
dans les récipients d’essai, déterminer l’homogénéité de la population d’essai en pesant un échantillon de
20 vers individuellement. L’homogénéité ayant été vérifiée, choisir des lots de 10 vers, les peser et les placer
dans chaque récipient d’essai. Placer les lots de vers dans les récipients de façon aléatoire. Il convient que la
plage de biomasse moyenne entre les récipients ne dépasse pas 100 mg.
Couvrir les récipients comme indiqué en 6.1 et les placer dans l’enceinte d’essai (6.6.1).
7.4 Conditions d’essai et mesurages
Un jour après avoir ajouté les vers, répandre 5 g par récipient d’essai de nourriture finement moulue séchée à
l’air (5.3) sur la surface du sol et l’humidifier avec de l’eau potable (environ 5 ml à 6 ml par récipient). Nourrir les
vers une fois par semaine pendant la période d’essai. Si la consommation de nourriture est faible, réduire au
minimum l’apport en nourriture pour éviter la prolifération fongique ou les moisissures. Pour chaque récipient
d’essai, enregistrer le comportement alimentaire et la quantité de nourriture apportée pendant la durée de l’essai.
Maintenir constante la teneur en eau du substrat dans les récipients d’essai pendant toute la durée de l’essai,
en pesant les récipients d’essai à intervalles réguliers, et en rajoutant de l’eau si nécessaire. À la fin de l’essai,
la teneur en eau ne doit pas s’écarter de plus de 10 % de celle mesurée au début de l’essai.
Garder les vers adultes pendant quatre semaines dans l’échantillon pour essai. À la fin de cette période, retirer
les adultes et, pour chaque récipient, noter le nombre total et la masse des vers de terre adultes vivants. Garder
les récipients d’essai pendant quatre autres semaines dans l’environnement d’essai (6.6) pour permettre aux
jeunes de se développer. Au début de cette période, les juvéniles reçoivent une fois 5 g de nourriture par
récipient d’essai soigneusement mélangés à la main avec le substrat. Au terme de cette période, compter, au
moyen d’une méthode appropriée, le nombre de jeunes éclos des cocons, par récipient d’essai.
NOTE L’Annexe D donne des exemples de deux méthodes appropriées, l’une d’elles permettant le comptage des cocons.
7.5 Substance de référence
La CSEO et/ou la CE d’une substance de référence doivent être déterminées afin de s’assurer que les
x
conditions d’essai en laboratoire sont adéquates et de vérifier que la réponse de l’organisme d’essai ne varie
pas statistiquement dans le temps. Il est conseillé de soumettre à essai une substance de référence au moins
deux fois par an ou, lorsque l’essai est effectué à une fréquence plus basse, parallèlement à la détermination
de la toxicité d’une substance d’essai.
L’acide borique est recommandé comme substance de référence. Si le composé est mélangé dans le substrat,
observer les effets sur la reproduction (α = 0,05, où α est le seuil de signification) à des concentrations
comprises entre 400 mg et 600 mg d’acide borique par kilogramme de masse sèche de substrat. Le rapport
d’essai relatif aux résultats sur la substance de référence doit être renseigné périodiquement ainsi qu’en cas
de modifications des conditions d’essai.
8 Calcul et expression des résultats
8.1 Calcul
Déterminer, pour chaque dilution ou concentration, le pourcentage de mortalité, le pourcentage d’augmentation
ou de perte de biomasse des adultes au bout de quatre semaines ainsi que le nombre de jeunes produits au
cours d’une autre période de quatre semaines.
8.2 Expression des résultats
Il convient d’établir une représentation graphique des valeurs moyennes des critères d’effets, incluant l’écart-
type des valeurs mesurées pour le(s) sol(s) soumis à essai, le(s) sol(s) témoin(s) ou les ratios de mélange
d’essai. Cette comparaison ou courbe donne un aperçu de la qualité des effets et de leur amplitude. Le ratio
de mélange est exprimé sur la base de la masse sèche du sol.
Si une gamme de dilutions ou de concentrations a été préparée, indiquer:
— pour l’approche CE , le pourcentage de mélange de sols en équivalent sec ou en milligrammes par
x
kilogramme de substrat de sol sec, la dilution médiane en pourcentage du sol contaminé ou la concentration
médiane de la substance d’essai, qui réduit de 50 % le nombre de jeunes (CE ) par rapport au témoin au
cours de la période d’essai; ou
— pour l’approche CSEO, le ratio de mélange de sols immédiatement inférieur à la CMEO ou la plus forte
concentration soumise à essai d’une substance d’essai qui, comparée au témoin, n’a aucun effet létal
ou autre effet statistiquement significatif, tel qu’une modification de la masse et une diminution de la
reproduction (p < 0,05).
9 Validité de l’essai
Les résultats sont considérés comme valides si:
— le taux de production de jeunes est d’au moins 30 par récipient témo
...

Questions, Comments and Discussion

Ask us and Technical Secretary will try to provide an answer. You can facilitate discussion about the standard in here.

Loading comments...