ISO 7366:1987

ISO
NORME INTERNATIONALE
Première édition
1987-06-O 1
INTERNATIONAL ORGANIZATION FOR STANDARDIZATION
ORGANISATION INTERNATIONALE DE NORMALISATION
MEXfiYHAPO~HAR OPrAHM3A~Mfl Il0 CTAH~APTM3A~Wl
Corps gras d’origines animale et végétale - Dosage
des mono-l glycérides et du glycérol libre
Animal and vegetable fats and oils - Determination of I-monoglycerides and free glycerol
contents
Numéro de référence
Avant-propos
L’ISO (Organisation internationale de normalisation) est une fédération mondiale
d’organismes nationaux de normalisation (comités membres de I’ISO). L’élaboration
des Normes internationales est normalement confiée aux comités techniques de I’ISO.
Chaque comité membre intéressé par une étude a le droit de faire partie du comité
technique créé à cet effet. Les organisations internationales, gouvernementales et non
gouvernementales, en liaison avec I’ISO participent également aux travaux.
Les projets de Normes internationales adoptés par les comités techniques sont soumis
aux comités membres pour approbation, avant leur acceptation comme Normes inter-
nationales par le Conseil de I’ISO. Les Normes internationales sont approuvées confor-
mément aux procédures de I’ISO qui requièrent l’approbation de 75 % au moins des
comités membres votants.
La Norme internationale ISO 7366 a été élaborée par le comité technique ISO/TC 34,
Produits agricoles alimentaires.
L’attention des utilisateurs est attirée sur le fait que toutes les Normes internationales
sont de temps en temps soumises à révision et que toute référence faite à une autre
Norme internationale dans le présent document implique qu’il s’agit, sauf indication
contraire, de la dernière édition.
0 Organisation internationale de normalisation, 1987
Imprimé en Suisse
ISO 7366 : 1987 (F)
NORME INTERNATIONALE
Corps gras d’origines animale et végétale - Dosage
des mono-l glycérides et du glycérol libre
5 Réactifs
1 Objet
Tous les réactifs doivent être de qualité analytique et l’eau utili-
La présente Norme internationale spécifie une méthode de
sec doit être de l’eau distillée ou de pureté au moins équiva-
dosage des mono-l glycérides et du glycérol libre, consécutive-
lente.
ment sur la même prise d’essai.
5.1 Chloroforme.
2 Domaine d’application
5.2 Acide acdtique, solution à 5 % ( W y).
Elle est applicable aux corps gras d’origines animale et végétale,
et a des produits provenant d’une interestérification de corps
5.3 Acide periodique, solution à 2,7 g/l.
gras et d’acides gras avec le glycérol.
Peser 2,7 g d’acide periodique (H5)Oe) dans une fiole jaugee de
La méthode est également applicable à des produits provenant
1 000 ml et les dissoudre dans 50 ml d’eau. Compléter au trait
d’une inter-estérification de corps gras et d’acides gras avec le
repère avec de l’acide acétique cristallisable et mélanger soi-
glycérol.
gneusement. Conserver à I’obscuritk
Elle n’est pas applicable lorsque l’échantillon contient
5.4 Iodure de potassium, solution à 150 g/l, ne contenant
ni iode libre, ni iodates.
a) en plus des mono-l glycérides : des substances polyhy-
driques solubles dans le chloroforme, présentant au moins
deux groupes hydroxyles voisins;
5.5 Thiosulfate de sodium, solution titrde,
c( Na&031 = 0,l mol/l.
b) en plus du glycérol libre : des substances polyhydriques
solubles dans l’eau, présentant au moins deux groupes
5.6 Amidon, solution d’indicateur à 10 g/l.
hydroxyles voisins.
Dissoudre par chauffage et agitation 1 g d’amidon soluble dans
100 ml d’eau. Ajouter 0,l g d’acide salicylique destiné à conser-
ver la solution d’indicateur, et poursuivre l’ébullition pendant
Référence
3 min. Refroidir a température ambiante.
1.
ISO 5555, Corps gras d’origines animale et vt!g&ale - Échan-
tillonnage.
6 Appareillage
Matériel courant de laboratoire, et notamment
4 Principe
Dissolution d’une prise d’essai dans le chloroforme. Extraction
6.1 Fioles coniques, de 500 ml de capacité, avec bouchons
du glycérol libre de la solution ainsi obtenue, par une solution
en verre rodé.
d’acide acétique. Oxydation des mono-l glycérides dans la
solution de chloroforme par un excés d’une solution d’acide
periodique. Addition d’iodure de potassium et titrage de l’iode
6.2 Agitateur magnétique.
libéré par une solution titrée de thiosulfate de sodium.
Oxydation du glycérol libre dans la solution aqueuse par un
7 Échantillonnage
excès de solution d’acide periodique. Addition d’iodure de
potassium et titrage de l’iode libéré par une solution titrée de
Voir ISO 5555.
thiosulfate de sodium.
ISO 7366 : 1987 (FI
Prendre deux fioles jaugées de 100 ml et les étiqueter en les
8 Mode opératoire
désignant par A et B. Utiliser la fiole A pour la solution chloro-
formique de mono-l glycérides, et la fiole B pour la solution
8.1 Préparation de l’échantillon pour essai
aqueuse de glycérol.
8.1.1 Échantillons solides, sous forme de paillettes ou
8.3.2 Dissoudre la prise d’essai (8.2) dans le chloroforme (5.1)
sous forme pulvérulente
en dispersant tout le glycérol libre. Verser la solution quantitati-
vement dans l’ampoule à décanter 1, en utilisant successive-
Homogénéiser l’échantillon soigneusement sans le faire fondre.
ment de petites quantités de chloroforme pour faciliter le trans-
vasement, jusqu’à l’obtention d’un volume de 45 à 50 ml.
8.1.2 Autres échantillons solides ou semi-solides
8.3.3 Rincer le bécher de 50 ml utilisé avec environ 25 ml de
Faire fondre l’échantillon à une température ne dépassant pas
solution d’acide acétique (5.21, de manière à dissoudre le glycé-
de plus de 10 OC son point de fusion. Homogénéiser soigneu-
rol restant. Transvaser les liquides de rincage dans l’ampoule à
sement.
décanter 1. Boucher, secouer et laisser décanter. Soutirer la
couche (inférieure) de chloroforme en la recueillant dans
AVERTISSEMENT 1 L’échantillon ne doit pas être sou-
l’ampoule à décanter 2.
mis à des températures excessives. À des températures
supérieures à 80 OC, la teneur en mono-l glycérides peut
Laver le bécher de 50 ml avec 25 ml de solution d’acide acéti-
décroître à la suite d’une interestérification et/ou d’une
que et verser dans l’ampoule à décanter 2. Boucher, secouer et
intra-estérification.
laisser décanter. Soutirer la couche de chloroforme en la
recueillant dans l’ampoule à décanter 3, et la solution aqueuse,
8.1.3 Échantillons liquides
en la recueillant dans l’ampoule à décanter 1.
Homogénéiser soigneusement l’échantillon.
8.3.4 Laver le bécher et l’ampoule à décanter 2 avec encore
25 ml de solution d’acide acétique et soutirer la solution en la
8.2 Prise d’essai recueillant dans l’ampoule à décanter 3. Boucher, secouer et
laisser décanter. Soutirer la couche de chloroforme en la
Peser avec précision, dans un bécher de 50 ml, la masse appro-
recueillant dans la fiole jaugée de 100 ml A. Recueillir la couche
priée de la prise d’essai, comme indiqué dans le tableau.
aqueuse dans l’ampoule à décanter 1.
Tableau
Rincer les ampoules à décanter 2 et 3 deux fois avec, à chaque
fois, 20 ml de chloroforme, et recueillir le chloroforme dans
Teneur estimée en Masse
Précision de
l’ampoule à décanter 1. Boucher, secouer et laisser décanter.
mono-l giycérides approximative de
la pesée
ou en glycérol la prise d’essai
% bnlm) cl
g
8.3.5 Soutirer la couche de chloroforme en la recueillant dans
la fiole ja
...

ISO
NORME INTERNATIONALE
Première édition
1987-06-O 1
INTERNATIONAL ORGANIZATION FOR STANDARDIZATION
ORGANISATION INTERNATIONALE DE NORMALISATION
MEXfiYHAPO~HAR OPrAHM3A~Mfl Il0 CTAH~APTM3A~Wl
Corps gras d’origines animale et végétale - Dosage
des mono-l glycérides et du glycérol libre
Animal and vegetable fats and oils - Determination of I-monoglycerides and free glycerol
contents
Numéro de référence
Avant-propos
L’ISO (Organisation internationale de normalisation) est une fédération mondiale
d’organismes nationaux de normalisation (comités membres de I’ISO). L’élaboration
des Normes internationales est normalement confiée aux comités techniques de I’ISO.
Chaque comité membre intéressé par une étude a le droit de faire partie du comité
technique créé à cet effet. Les organisations internationales, gouvernementales et non
gouvernementales, en liaison avec I’ISO participent également aux travaux.
Les projets de Normes internationales adoptés par les comités techniques sont soumis
aux comités membres pour approbation, avant leur acceptation comme Normes inter-
nationales par le Conseil de I’ISO. Les Normes internationales sont approuvées confor-
mément aux procédures de I’ISO qui requièrent l’approbation de 75 % au moins des
comités membres votants.
La Norme internationale ISO 7366 a été élaborée par le comité technique ISO/TC 34,
Produits agricoles alimentaires.
L’attention des utilisateurs est attirée sur le fait que toutes les Normes internationales
sont de temps en temps soumises à révision et que toute référence faite à une autre
Norme internationale dans le présent document implique qu’il s’agit, sauf indication
contraire, de la dernière édition.
0 Organisation internationale de normalisation, 1987
Imprimé en Suisse
ISO 7366 : 1987 (F)
NORME INTERNATIONALE
Corps gras d’origines animale et végétale - Dosage
des mono-l glycérides et du glycérol libre
5 Réactifs
1 Objet
Tous les réactifs doivent être de qualité analytique et l’eau utili-
La présente Norme internationale spécifie une méthode de
sec doit être de l’eau distillée ou de pureté au moins équiva-
dosage des mono-l glycérides et du glycérol libre, consécutive-
lente.
ment sur la même prise d’essai.
5.1 Chloroforme.
2 Domaine d’application
5.2 Acide acdtique, solution à 5 % ( W y).
Elle est applicable aux corps gras d’origines animale et végétale,
et a des produits provenant d’une interestérification de corps
5.3 Acide periodique, solution à 2,7 g/l.
gras et d’acides gras avec le glycérol.
Peser 2,7 g d’acide periodique (H5)Oe) dans une fiole jaugee de
La méthode est également applicable à des produits provenant
1 000 ml et les dissoudre dans 50 ml d’eau. Compléter au trait
d’une inter-estérification de corps gras et d’acides gras avec le
repère avec de l’acide acétique cristallisable et mélanger soi-
glycérol.
gneusement. Conserver à I’obscuritk
Elle n’est pas applicable lorsque l’échantillon contient
5.4 Iodure de potassium, solution à 150 g/l, ne contenant
ni iode libre, ni iodates.
a) en plus des mono-l glycérides : des substances polyhy-
driques solubles dans le chloroforme, présentant au moins
deux groupes hydroxyles voisins;
5.5 Thiosulfate de sodium, solution titrde,
c( Na&031 = 0,l mol/l.
b) en plus du glycérol libre : des substances polyhydriques
solubles dans l’eau, présentant au moins deux groupes
5.6 Amidon, solution d’indicateur à 10 g/l.
hydroxyles voisins.
Dissoudre par chauffage et agitation 1 g d’amidon soluble dans
100 ml d’eau. Ajouter 0,l g d’acide salicylique destiné à conser-
ver la solution d’indicateur, et poursuivre l’ébullition pendant
Référence
3 min. Refroidir a température ambiante.
1.
ISO 5555, Corps gras d’origines animale et vt!g&ale - Échan-
tillonnage.
6 Appareillage
Matériel courant de laboratoire, et notamment
4 Principe
Dissolution d’une prise d’essai dans le chloroforme. Extraction
6.1 Fioles coniques, de 500 ml de capacité, avec bouchons
du glycérol libre de la solution ainsi obtenue, par une solution
en verre rodé.
d’acide acétique. Oxydation des mono-l glycérides dans la
solution de chloroforme par un excés d’une solution d’acide
periodique. Addition d’iodure de potassium et titrage de l’iode
6.2 Agitateur magnétique.
libéré par une solution titrée de thiosulfate de sodium.
Oxydation du glycérol libre dans la solution aqueuse par un
7 Échantillonnage
excès de solution d’acide periodique. Addition d’iodure de
potassium et titrage de l’iode libéré par une solution titrée de
Voir ISO 5555.
thiosulfate de sodium.
ISO 7366 : 1987 (FI
Prendre deux fioles jaugées de 100 ml et les étiqueter en les
8 Mode opératoire
désignant par A et B. Utiliser la fiole A pour la solution chloro-
formique de mono-l glycérides, et la fiole B pour la solution
8.1 Préparation de l’échantillon pour essai
aqueuse de glycérol.
8.1.1 Échantillons solides, sous forme de paillettes ou
8.3.2 Dissoudre la prise d’essai (8.2) dans le chloroforme (5.1)
sous forme pulvérulente
en dispersant tout le glycérol libre. Verser la solution quantitati-
vement dans l’ampoule à décanter 1, en utilisant successive-
Homogénéiser l’échantillon soigneusement sans le faire fondre.
ment de petites quantités de chloroforme pour faciliter le trans-
vasement, jusqu’à l’obtention d’un volume de 45 à 50 ml.
8.1.2 Autres échantillons solides ou semi-solides
8.3.3 Rincer le bécher de 50 ml utilisé avec environ 25 ml de
Faire fondre l’échantillon à une température ne dépassant pas
solution d’acide acétique (5.21, de manière à dissoudre le glycé-
de plus de 10 OC son point de fusion. Homogénéiser soigneu-
rol restant. Transvaser les liquides de rincage dans l’ampoule à
sement.
décanter 1. Boucher, secouer et laisser décanter. Soutirer la
couche (inférieure) de chloroforme en la recueillant dans
AVERTISSEMENT 1 L’échantillon ne doit pas être sou-
l’ampoule à décanter 2.
mis à des températures excessives. À des températures
supérieures à 80 OC, la teneur en mono-l glycérides peut
Laver le bécher de 50 ml avec 25 ml de solution d’acide acéti-
décroître à la suite d’une interestérification et/ou d’une
que et verser dans l’ampoule à décanter 2. Boucher, secouer et
intra-estérification.
laisser décanter. Soutirer la couche de chloroforme en la
recueillant dans l’ampoule à décanter 3, et la solution aqueuse,
8.1.3 Échantillons liquides
en la recueillant dans l’ampoule à décanter 1.
Homogénéiser soigneusement l’échantillon.
8.3.4 Laver le bécher et l’ampoule à décanter 2 avec encore
25 ml de solution d’acide acétique et soutirer la solution en la
8.2 Prise d’essai recueillant dans l’ampoule à décanter 3. Boucher, secouer et
laisser décanter. Soutirer la couche de chloroforme en la
Peser avec précision, dans un bécher de 50 ml, la masse appro-
recueillant dans la fiole jaugée de 100 ml A. Recueillir la couche
priée de la prise d’essai, comme indiqué dans le tableau.
aqueuse dans l’ampoule à décanter 1.
Tableau
Rincer les ampoules à décanter 2 et 3 deux fois avec, à chaque
fois, 20 ml de chloroforme, et recueillir le chloroforme dans
Teneur estimée en Masse
Précision de
l’ampoule à décanter 1. Boucher, secouer et laisser décanter.
mono-l giycérides approximative de
la pesée
ou en glycérol la prise d’essai
% bnlm) cl
g
8.3.5 Soutirer la couche de chloroforme en la recueillant dans
la fiole ja
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