Microbiology of the food chain — Methods for the detection of Anisakidae L3 larvae in fish and fishery products — Part 2: Artificial digestion method

This document specifies a method for the detection of Anisakidae L3 larvae commonly found in marine and anadromous fishes. The method is applicable to fresh fish and/or frozen fish, as well as lightly processed fish products, such as marinated, salted or smoked. It is also suitable for visceral organs as a confirmatory method for a visual inspection scheme. The artificial digestion method[4][5][6] is applicable to quantifying parasitic infections by estimating the number of parasites in the fish musculature and, when applied to fresh fish or lightly processed fish products (never frozen before processing), determining the viability of Anisakidae L3, which can be present. This method does not apply to determining the species or genotype of detected parasites. Final identification is made by morphological and/or molecular methods.

Microbiologie de la chaîne alimentaire — Méthodes de recherche des larves L3 d'Anisakidae dans les poissons et produits de la pêche — Partie 2: Méthode de digestion artificielle

Le présent document spécifie une méthode de détection des larves L3 d’Anisakidae qui se trouvent fréquemment dans les poissons marins et anadromes. La méthode s’applique aux poissons frais et/ou surgelés, ainsi qu’aux produits à base de poisson légèrement transformés, c’est-à-dire marinés, salés ou fumés. Cette méthode peut également servir de méthode de confirmation dans le cadre d’une inspection visuelle des organes viscéraux. La méthode de digestion artificielle[4][5][6] s’applique à la quantification des infestations parasitaires en estimant le nombre de parasites dans les tissus musculaires des poissons et, en cas d’utilisation sur des poissons frais ou des produits à base de poisson légèrement transformés (jamais congelés avant traitement), à la détermination de la viabilité des larves L3 d’Anisakidae, susceptibles d’être présentes. Cette méthode ne s’applique pas à la détermination des espèces ou du génotype des parasites détectés. Des méthodes morphologiques et/ou moléculaires permettent une identification définitive.

General Information

Status
Published
Publication Date
20-Apr-2021
Current Stage
6060 - International Standard published
Start Date
21-Apr-2021
Due Date
11-Feb-2021
Completion Date
21-Apr-2021
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ISO 23036-2:2021 - Microbiology of the food chain -- Methods for the detection of Anisakidae L3 larvae in fish and fishery products
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ISO 23036-2:2021 - Microbiologie de la chaîne alimentaire -- Méthodes de recherche des larves L3 d'Anisakidae dans les poissons et produits de la pêche
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Standards Content (Sample)

INTERNATIONAL ISO
STANDARD 23036-2
First edition
2021-04
Microbiology of the food chain —
Methods for the detection of
Anisakidae L3 larvae in fish and
fishery products —
Part 2:
Artificial digestion method
Microbiologie de la chaîne alimentaire — Méthodes de recherche des
larves L3 d'Anisakidae dans les poissons et produits de la pêche —
Partie 2: Méthode de digestion artificielle
Reference number
ISO 23036-2:2021(E)
©
ISO 2021

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ISO 23036-2:2021(E)

COPYRIGHT PROTECTED DOCUMENT
© ISO 2021
All rights reserved. Unless otherwise specified, or required in the context of its implementation, no part of this publication may
be reproduced or utilized otherwise in any form or by any means, electronic or mechanical, including photocopying, or posting
on the internet or an intranet, without prior written permission. Permission can be requested from either ISO at the address
below or ISO’s member body in the country of the requester.
ISO copyright office
CP 401 • Ch. de Blandonnet 8
CH-1214 Vernier, Geneva
Phone: +41 22 749 01 11
Email: copyright@iso.org
Website: www.iso.org
Published in Switzerland
ii © ISO 2021 – All rights reserved

---------------------- Page: 2 ----------------------
ISO 23036-2:2021(E)

Contents Page
Foreword .iv
Introduction .v
1 Scope . 1
2 Normative references . 1
3 Terms and definitions . 1
4 Principle . 2
4.1 General . 2
4.2 Sample size . 2
4.3 Sample preparation . 2
4.4 Digestion of the sample . 2
4.5 Filtration of the digest fluid . 2
4.6 V erification of findings . 2
5 Reagents . 3
6 Equipment and consumables . 3
7 Sampling . 4
8 Procedure. 4
8.1 Preparation of the sample . 4
8.2 Preparation of the digest fluid . 4
8.3 Digestion of the sample in the glass beaker . 5
8.4 Filtration of the digest fluid . 5
8.5 Microscopic examination . 5
9 Expression of the results . 5
10 Performance characteristics of the method . 6
11 Test report . 6
12 Quality assurance . 6
Annex A (informative) Sample collection . 7
Annex B (informative) Example of a laboratory worksheet for recording data when testing
fish fillets with the artificial digestion method . 8
Bibliography . 9
© ISO 2021 – All rights reserved iii

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ISO 23036-2:2021(E)

Foreword
ISO (the International Organization for Standardization) is a worldwide federation of national standards
bodies (ISO member bodies). The work of preparing International Standards is normally carried out
through ISO technical committees. Each member body interested in a subject for which a technical
committee has been established has the right to be represented on that committee. International
organizations, governmental and non-governmental, in liaison with ISO, also take part in the work.
ISO collaborates closely with the International Electrotechnical Commission (IEC) on all matters of
electrotechnical standardization.
The procedures used to develop this document and those intended for its further maintenance are
described in the ISO/IEC Directives, Part 1. In particular, the different approval criteria needed for the
different types of ISO documents should be noted. This document was drafted in accordance with the
editorial rules of the ISO/IEC Directives, Part 2 (see www .iso .org/ directives).
Attention is drawn to the possibility that some of the elements of this document may be the subject of
patent rights. ISO shall not be held responsible for identifying any or all such patent rights. Details of
any patent rights identified during the development of the document will be in the Introduction and/or
on the ISO list of patent declarations received (see www .iso .org/ patents).
Any trade name used in this document is information given for the convenience of users and does not
constitute an endorsement.
For an explanation of the voluntary nature of standards, the meaning of ISO specific terms and
expressions related to conformity assessment, as well as information about ISO’s adherence to the
World Trade Organization (WTO) principles in the Technical Barriers to Trade (TBT) see www .iso .org/
iso/ foreword .html.
This document was prepared by Technical Committee ISO/TC 34, Food products, Subcommittee SC 9,
Microbiology, in collaboration with the European Committee for Standardization (CEN) Technical
Committee CEN/TC 275, Food analysis — Horizontal methods, in accordance with the Agreement on
technical cooperation between ISO and CEN (Vienna Agreement).
A list of all parts in the ISO 23036 series can be found on the ISO website.
Any feedback or questions on this document should be directed to the user’s national standards body. A
complete listing of these bodies can be found at www .iso .org/ members .html.
iv © ISO 2021 – All rights reserved

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ISO 23036-2:2021(E)

Introduction
Nematodes of the Anisakidae family have a complex life cycle involving a high number of hosts. Adult
stages of Anisakidae reside in the stomach of marine mammals, where they are embedded in the mucosa.
Unembryonated eggs produced by adult females are released with the faeces of marine mammals and
become embryonated in seawater, where first-stage larvae (L1) develop in the eggs. The larvae moult
to become free-swimming second-stage larvae (L2) and, if ingested by crustaceans, mature into third-
stage larvae (L3). This stage is infective to fish and squid, and larvae are transferred between fishes
through predation, maintaining the L3 stage. Some larvae migrate from the abdominal cavity into
muscle tissues. Humans are incidental hosts and can be infected after ingesting raw or undercooked
infected fish or cephalopods containing viable L3.
Nematodes of the family Anisakidae are the causative agents of human anisakidosis, a disease that is not
only a public health hazard affecting humans, but also represents an economic problem in fishery and
food safety (the term “anisakiasis”, designating the disease caused by members of the genus Anisakis,
is also sometimes used). Worldwide, marine and wild anadromous fishes are intermediate hosts of
Anisakidae, whereas marine mammals are the definitive hosts.
Visual inspection procedures for the detection of Anisakidae larvae in fish are employed to minimize
[1]][2]
the risk that contaminated fish will reach the consumer, thus preventing human anisakidosis.
The UV-press and the artificial digestion of the fish muscular tissue are the methods specifically
designed to detect nematode larvae in fish and to evaluate the infestation level of a batch, and have
[3]
been validated and tested in multicentre collaborative studies (see Clause 10).
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INTERNATIONAL STANDARD ISO 23036-2:2021(E)
Microbiology of the food chain — Methods for the
detection of Anisakidae L3 larvae in fish and fishery
products —
Part 2:
Artificial digestion method
1 Scope
This document specifies a method for the detection of Anisakidae L3 larvae commonly found in marine
and anadromous fishes. The method is applicable to fresh fish and/or frozen fish, as well as lightly
processed fish products, such as marinated, salted or smoked. It is also suitable for visceral organs as a
confirmatory method for a visual inspection scheme.
[4][5][6]
The artificial digestion method is applicable to quantifying parasitic infections by estimating the
number of parasites in the fish musculature and, when applied to fresh fish or lightly processed fish
products (never frozen before processing), determining the viability of Anisakidae L3, which can be
present.
This method does not apply to determining the species or genotype of detected parasites. Final
identification is made by morphological and/or molecular methods.
2 Normative references
The following documents are referred to in the text in such a way that some or all of their content
constitutes requirements of this document. For dated references, only the edition cited applies. For
undated references, the latest edition of the referenced document (including any amendments) applies.
ISO 7218, Microbiology of food and animal feeding stuffs — General requirements and guidance for
microbiological examinations
3 Terms and definitions
For the purposes of this document, the following terms and definitions apply.
ISO and IEC maintain terminological databases for use in standardization at the following addresses:
— ISO Online browsing platform: available at https:// www .iso .org/ obp
— IEC Electropedia: available at http:// www .electropedia .org/
3.1
Anisakidae L3 larvae
third-stage larvae (L3) belonging to the Anisakidae family, in particular to Anisakis, Contracaecum and
Pseudoterranova genera
Note 1 to entry: For practical purposes, the genus Hysterothylacium belonging to Raphidascarididae family and
already classified as Anisakidae, can be also included.
© ISO 2021 – All rights reserved 1

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ISO 23036-2:2021(E)

3.2
artificial digestion method
method to detect Anisakidae larvae in fish muscle tissue by an enzymatic (pepsin-HCl) digestion step
to release larvae from muscle tissues followed by a filtration step and detection of larvae by microscopy
Note 1 to entry: If applied to fresh fish, it allows checking of the viability of larvae.
4 Principle
4.1 General
The artificial digestion method relies on the enzymatic degradation of muscle fibres in a fluid composed
of pepsin and hydrochloric acid followed by filtration and washing steps.
The procedure allows a differentiation between dead and viable anisakid larvae if the temperature of
the digestion solution does not exceed 37 °C (with the exception of Hysterothylacium sp. larvae, which
are killed at 37 °C), and assuming the fish was never frozen.
There are no internal quality controls that can be used while performing the method.
NOTE Alternative methods can be used for analysis, provided their equivalence with the methods described
in this document are demonstrated.
4.2 Sample size
For inspection of fishery produc
...

NORME ISO
INTERNATIONALE 23036-2
Première édition
2021-04
Microbiologie de la chaîne
alimentaire — Méthodes de recherche
des larves L3 d'Anisakidae dans les
poissons et produits de la pêche —
Partie 2:
Méthode de digestion artificielle
Microbiology of the food chain — Methods for the detection of
Anisakidae L3 larvae in fish and fishery products —
Part 2: Artificial digestion method
Numéro de référence
ISO 23036-2:2021(F)
©
ISO 2021

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ISO 23036-2:2021(F)

DOCUMENT PROTÉGÉ PAR COPYRIGHT
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Tous droits réservés. Sauf prescription différente ou nécessité dans le contexte de sa mise en œuvre, aucune partie de cette
publication ne peut être reproduite ni utilisée sous quelque forme que ce soit et par aucun procédé, électronique ou mécanique,
y compris la photocopie, ou la diffusion sur l’internet ou sur un intranet, sans autorisation écrite préalable. Une autorisation peut
être demandée à l’ISO à l’adresse ci-après ou au comité membre de l’ISO dans le pays du demandeur.
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Publié en Suisse
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ISO 23036-2:2021(F)

Sommaire Page
Avant-propos .iv
Introduction .v
1 Domaine d’application . 1
2 Références normatives . 1
3 Termes et définitions . 1
4 Principe . 2
4.1 Généralités . 2
4.2 Taille de l’échantillon . 2
4.3 Préparation de l’échantillon . 2
4.4 Digestion de l’échantillon . 2
4.5 Filtration du liquide de digestion . 2
4.6 Vérification des constatations . 3
5 Réactifs . 3
6 Équipement et consommables . 3
7 Échantillonnage . 4
8 Mode opératoire. 4
8.1 Préparation de l’échantillon . 4
8.2 Préparation du liquide de digestion . 4
8.3 Digestion de l’échantillon dans le bécher en verre . 5
8.4 Filtration du liquide de digestion . 5
8.5 Examen microscopique . 5
9 Expression des résultats. 6
10 Caractéristiques de performance de la méthode . 6
11 Rapport d’essai . 6
12 Assurance qualité . 6
Annexe A (informative) Prélèvement d’échantillons . 7
Annexe B (informative) Exemple de fiche de laboratoire pour la consignation des données
lors de l’examen des filets de poisson à l’aide de la méthode de digestion artificielle .8
Bibliographie . 9
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ISO 23036-2:2021(F)

Avant-propos
L’ISO (Organisation internationale de normalisation) est une fédération mondiale d’organismes
nationaux de normalisation (comités membres de l’ISO). L’élaboration des Normes internationales est
en général confiée aux comités techniques de l’ISO. Chaque comité membre intéressé par une étude
a le droit de faire partie du comité technique créé à cet effet. Les organisations internationales,
gouvernementales et non gouvernementales, en liaison avec l’ISO participent également aux travaux.
L’ISO collabore étroitement avec la Commission électrotechnique internationale (IEC) en ce qui
concerne la normalisation électrotechnique.
Les procédures utilisées pour élaborer le présent document et celles destinées à sa mise à jour sont
décrites dans les Directives ISO/IEC, Partie 1. Il convient, en particulier de prendre note des différents
critères d’approbation requis pour les différents types de documents ISO. Le présent document a été
rédigé conformément aux règles de rédaction données dans les Directives ISO/IEC, Partie 2 (voir www
.iso .org/ directives).
L’attention est attirée sur le fait que certains des éléments du présent document peuvent faire l’objet de
droits de propriété intellectuelle ou de droits analogues. L’ISO ne saurait être tenue pour responsable
de ne pas avoir identifié de tels droits de propriété et averti de leur existence. Les détails concernant
les références aux droits de propriété intellectuelle ou autres droits analogues identifiés lors de
l’élaboration du document sont indiqués dans l’Introduction et/ou dans la liste des déclarations de
brevets reçues par l’ISO (voir www .iso .org/ brevets).
Les appellations commerciales éventuellement mentionnées dans le présent document sont données
pour information, par souci de commodité, à l’intention des utilisateurs et ne sauraient constituer un
engagement.
Pour une explication de la nature volontaire des normes, la signification des termes et expressions
spécifiques de l’ISO liés à l’évaluation de la conformité, ou pour toute information au sujet de l’adhésion
de l’ISO aux principes de l’Organisation mondiale du commerce (OMC) concernant les obstacles
techniques au commerce (OTC), voir le lien suivant: www .iso .org/ iso/ fr/ avant -propos.
Le présent document a été élaboré par le Comité technique ISO/TC 34, Produits alimentaires, sous-
comité SC 9, Microbiologie, en collaboration avec le Comité technique CEN/TC 275, Analyse des produits
alimentaires — Méthodes horizontales, du Comité européen de normalisation (CEN), conformément à
l’Accord sur la coopération technique entre l’ISO et le CEN (Accord de Vienne).
Une liste de toutes les parties de la série ISO 23036 se trouve sur le site web de l’ISO.
Il convient que l’utilisateur adresse tout retour d’information ou toute question concernant le présent
document à l’organisme national de normalisation de son pays. Une liste exhaustive desdits organismes
se trouve à l’adresse www .iso .org/ fr/ members .html.
iv © ISO 2021 – Tous droits réservés

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ISO 23036-2:2021(F)

Introduction
Les nématodes de la famille des Anisakidae présentent un cycle de vie complexe impliquant un nombre
élevé d’hôtes. Au stade adulte, les Anisakidae pénètrent dans la muqueuse de l’estomac des mammifères
marins. Les œufs non embryonnés produits par les femelles adultes sont excrétés avec les fèces des
mammifères marins et sont embryonnés dans le milieu marin, où les larves de premier stade (L1)
se développent dans les œufs. Les larves muent pour se transformer en larves libres de deuxième
stade (L2), puis, si elles sont ingérées par des crustacés, en larves de troisième stade (L3). Ce stade est
infectieux pour les poissons et les calamars et les larves sont transférées d’un poisson à un autre par
le biais de la prédation, en restant au stade L3. Certaines larves migrent de la cavité abdominale vers
les tissus musculaires. Les humains sont des hôtes accidentels, susceptibles d’être infectés après avoir
ingéré du poisson ou des céphalopodes crus ou insuffisamment cuits contenant des larves L3 viables.
Les nématodes de la famille des Anisakidae sont les agents pathogènes de l’anisakidose humaine, une
maladie qui constitue non seulement une menace pour la santé publique, mais aussi un problème d’ordre
économique pour le secteur de la pêche et de sécurité des aliments (le terme anisakiase, qui désigne la
maladie provoquée par les membres du genre Anisakis, est également parfois utilisé). Dans le monde
entier, les poissons marins et anadromes sauvages constituent des hôtes intermédiaires d’Anisakidae,
tandis que les mammifères marins en sont les hôtes définitifs.
Des procédures d’inspection visuelle visant à détecter les larves d’Anisakidae dans les poissons sont
[1][2]
mises en œuvre afin de limiter le risque que des poissons contaminés atteignent le consommateur
et ainsi d’empêcher l’apparition de l’anisakidose humaine.
Le passage sous presse hydraulique suivi de l’observation sous lumière UV, ainsi que la digestion
artificielle des tissus musculaires de poissons sont les méthodes qui ont été spécialement conçues pour
détecter les larves de nématodes dans les poissons et évaluer le niveau d’infestation d’un lot, et qui ont
[3]
été validées et soumises à essai dans des études comparatives interlaboratoires (voir Article 10).
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NORME INTERNATIONALE ISO 23036-2:2021(F)
Microbiologie de la chaîne alimentaire — Méthodes de
recherche des larves L3 d'Anisakidae dans les poissons et
produits de la pêche —
Partie 2:
Méthode de digestion artificielle
1 Domaine d’application
Le présent document spécifie une méthode de détection des larves L3 d’Anisakidae qui se trouvent
fréquemment dans les poissons marins et anadromes. La méthode s’applique aux poissons frais et/ou
surgelés, ainsi qu’aux produits à base de poisson légèrement transformés, c’est-à-dire marinés, salés ou
fumés. Cette méthode peut également servir de méthode de confirmation dans le cadre d’une inspection
visuelle des organes viscéraux.
[4][5][6]
La méthode de digestion artificielle s’applique à la quantification des infestations parasitaires
en estimant le nombre de parasites dans les tissus musculaires des poissons et, en cas d’utilisation sur
des poissons frais ou des produits à base de poisson légèrement transformés (jamais congelés avant
traitement), à la détermination de la viabilité des larves L3 d’Anisakidae, susceptibles d’être présentes.
Cette méthode ne s’applique pas à la détermination des espèces ou du génotype des parasites détectés.
Des méthodes morphologiques et/ou moléculaires permettent une identification définitive.
2 Références normatives
Les documents suivants sont cités dans le texte de sorte qu’ils constituent, pour tout ou partie de leur
contenu, des exigences du présent document. Pour les références datées, seule l’édition citée s’applique.
Pour les références non datées, la dernière édition du document de référence s’applique (y compris les
éventuels amendements).
ISO 7218, Microbiologie des aliments — Exigences générales et recommandations
3 Termes et définitions
Pour les besoins du présent document, les termes et définitions suivants s’appliquent.
L’ISO et l’IEC tiennent à jour des bases de données terminologiques destinées à être utilisées en
normalisation, consultables aux adresses suivantes:
— ISO Online browsing platform: disponible à l’adresse https:// www .iso .org/ obp;
— IEC Electropedia: disponible à l’adresse http:// www .electropedia .org/ .
3.1
larves L3 d’Anisakidae
larves de troisième stade (L3) appartenant à la famille des Anisakidae, et plus particulièrement aux
genres Anisakis, Contracaecum et Pseudoterranova
Note 1 à l'article: Pour des raisons pratiques, le genre Hysterothylacium qui appartient à la famille
des Raphidascarididae et est déjà classé parmi les Anisakidae, peut aussi être inclus.
© ISO 2021 – Tous droits réservés 1

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ISO 23036-2:2021(F)

3.2
méthode de digestion artificielle
méthode de détection des larves d’Anisakidae dans les tissus musculaires des poissons par digestion
enzymatique (pepsine-HCl) permettant de libérer les larves des tissus, suivie d’une filtration et d’une
détection des larves par microscopie
Note 1 à l'article: Si appliquée à du poisson frais, elle permet de vérifier la viabilité des larves.
4 Principe
4.1 Généralités
La méthode de digestion artificielle repose sur la dégradation enzymatique des fibres musculaires dans
un liquide composé de pepsine et d’acide chlorhydrique, suivie par des étapes de filtration et de lavage.
Le mode opératoire permet de différencier les larves d’Anisakidae mortes et viables sous réserve
que la température de la solution de digestion ne dépasse pas 37 °C (à l’exception des larves de
Hysterothylacium sp., qui meurent à 37 °C) et que le poisson n’ait jamais été congelé.
Aucun contrôle qualité interne ne peut être effectué pendant la mise en œuvre de cette méthode.
NOTE D’autres méthodes peuvent être utilisées pour l’analyse, sous réserve que leur équivalence avec les
méthodes décrites dans le présent document soit démontrée.
4.2 Taille de l’échantillon
Dans le cadre de l’inspection de produits de pêche à des fins de santé publique, la taille de l’échantillon
doit être établie en fonction du risque, tel que déterminé par les autorités compétentes.
4.3 Préparation de l’échantillon
Afin d’accroître la surface d’action de la dégradation enzymatique, émietter délicatement les échantillons
en prenant soin de ne pas perturber les larves. Il est également possible d’utiliser un Homogénéiseur/
®1)
Stomacher , qui facilite la digestion, sans endommager les larves de nématodes.
Il convient d’éviter toute opération
...

FINAL
INTERNATIONAL ISO/FDIS
DRAFT
STANDARD 23036-2
ISO/TC 34/SC 9
Microbiology of the food chain —
Secretariat: AFNOR
Methods for the detection of
Voting begins on:
2020-12-29 Anisakidae L3 larvae in fish and
fishery products —
Voting terminates on:
2021-02-23
Part 2:
Artificial digestion method
Microbiologie de la chaîne alimentaire — Méthodes de recherche des
larves L3 d'Anisakidae dans les poissons et produits de la pêche —
Partie 2: Méthode de digestion artificielle
ISO/CEN PARALLEL PROCESSING
RECIPIENTS OF THIS DRAFT ARE INVITED TO
SUBMIT, WITH THEIR COMMENTS, NOTIFICATION
OF ANY RELEVANT PATENT RIGHTS OF WHICH
THEY ARE AWARE AND TO PROVIDE SUPPOR TING
DOCUMENTATION.
IN ADDITION TO THEIR EVALUATION AS
Reference number
BEING ACCEPTABLE FOR INDUSTRIAL, TECHNO-
ISO/FDIS 23036-2:2020(E)
LOGICAL, COMMERCIAL AND USER PURPOSES,
DRAFT INTERNATIONAL STANDARDS MAY ON
OCCASION HAVE TO BE CONSIDERED IN THE
LIGHT OF THEIR POTENTIAL TO BECOME STAN-
DARDS TO WHICH REFERENCE MAY BE MADE IN
©
NATIONAL REGULATIONS. ISO 2020

---------------------- Page: 1 ----------------------
ISO/FDIS 23036-2:2020(E)

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ISO/FDIS 23036-2:2020(E)

Contents Page
Foreword .iv
Introduction .v
1 Scope . 1
2 Normative references . 1
3 Terms and definitions . 1
4 Principle . 2
4.1 General . 2
4.2 Sample size . 2
4.3 Sample preparation . 2
4.4 Digestion of the sample . 2
4.5 Filtration of the digest fluid . 2
4.6 V erification of findings . 2
5 Reagents . 3
6 Equipment and consumables . 3
7 Sampling . 4
8 Procedure. 4
8.1 Preparation of the sample . 4
8.2 Preparation of the digest fluid . 4
8.3 Digestion of the sample in the glass beaker . 5
8.4 Filtration of the digest fluid . 5
8.5 Microscopic examination . 5
9 Expression of the results . 5
10 Performance characteristics of the method . 6
11 Test report . 6
12 Quality assurance . 6
Annex A (informative) Sample collection . 7
Annex B (informative) Example of a laboratory worksheet for recording data when testing
fish fillets with the artificial digestion method . 8
Bibliography . 9
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ISO/FDIS 23036-2:2020(E)

Foreword
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bodies (ISO member bodies). The work of preparing International Standards is normally carried out
through ISO technical committees. Each member body interested in a subject for which a technical
committee has been established has the right to be represented on that committee. International
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ISO collaborates closely with the International Electrotechnical Commission (IEC) on all matters of
electrotechnical standardization.
The procedures used to develop this document and those intended for its further maintenance are
described in the ISO/IEC Directives, Part 1. In particular, the different approval criteria needed for the
different types of ISO documents should be noted. This document was drafted in accordance with the
editorial rules of the ISO/IEC Directives, Part 2 (see www .iso .org/ directives).
Attention is drawn to the possibility that some of the elements of this document may be the subject of
patent rights. ISO shall not be held responsible for identifying any or all such patent rights. Details of
any patent rights identified during the development of the document will be in the Introduction and/or
on the ISO list of patent declarations received (see www .iso .org/ patents).
Any trade name used in this document is information given for the convenience of users and does not
constitute an endorsement.
For an explanation of the voluntary nature of standards, the meaning of ISO specific terms and
expressions related to conformity assessment, as well as information about ISO’s adherence to the
World Trade Organization (WTO) principles in the Technical Barriers to Trade (TBT) see www .iso .org/
iso/ foreword .html.
This document was prepared by Technical Committee ISO/TC 34, Food products, Subcommittee SC 9,
Microbiology, in collaboration with the European Committee for Standardization (CEN) Technical
Committee CEN/TC 275, Food analysis — Horizontal methods, in accordance with the Agreement on
technical cooperation between ISO and CEN (Vienna Agreement).
A list of all parts in the ISO 23036 series can be found on the ISO website.
Any feedback or questions on this document should be directed to the user’s national standards body. A
complete listing of these bodies can be found at www .iso .org/ members .html.
iv © ISO 2020 – All rights reserved

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ISO/FDIS 23036-2:2020(E)

Introduction
Nematodes of the Anisakidae family have a complex life cycle involving a high number of hosts. Adult
stages of Anisakidae reside in the stomach of marine mammals, where they are embedded in the mucosa.
Unembryonated eggs produced by adult females are released with the faeces of marine mammals and
become embryonated in seawater, where first-stage larvae (L1) develop in the eggs. The larvae moult
to become free-swimming second-stage larvae (L2) and, if ingested by crustaceans, mature into third-
stage larvae (L3). This stage is infective to fish and squid, and larvae are transferred between fishes
through predation, maintaining the L3 stage. Some larvae migrate from the abdominal cavity into
muscle tissues. Humans are incidental hosts and can be infected after ingesting raw or undercooked
infected fish or cephalopods containing viable L3.
Nematodes of the family Anisakidae are the causative agents of human anisakidosis, a disease that is not
only a public health hazard affecting humans, but also represents an economic problem in fishery and
food safety (the term “anisakiasis”, designating the disease caused by members of the genus Anisakis,
is also sometimes used). Worldwide, marine and wild anadromous fishes are intermediate hosts of
Anisakidae, whereas marine mammals are the definitive hosts.
Visual inspection procedures for the detection of Anisakidae larvae in fish are employed to minimize
[1],[2]
the risk that contaminated fish will reach the consumer, thus preventing human anisakidosis.
The UV-press and the artificial digestion of the fish muscular tissue are the methods specifically
designed to detect nematode larvae in fish and to evaluate the infestation level of a batch, and have
[3]
been validated and tested in multicentre collaborative studies (see Clause 11).
© ISO 2020 – All rights reserved v

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FINAL DRAFT INTERNATIONAL STANDARD ISO/FDIS 23036-2:2020(E)
Microbiology of the food chain — Methods for the
detection of Anisakidae L3 larvae in fish and fishery
products —
Part 2:
Artificial digestion method
1 Scope
This document specifies a method for the detection of Anisakidae L3 larvae commonly found in marine
and anadromous fishes. The method is applicable to fresh fish and/or frozen fish, as well as lightly
processed fish products, such as marinated, salted or smoked. It is also suitable for visceral organs as a
confirmatory method for a visual inspection scheme.
[4]—[6]
The artificial digestion method is applicable to quantifying parasitic infections by estimating the
number of parasites in the fish musculature and, when applied to fresh fish or lightly processed fish
products (never frozen before processing), determining the viability of Anisakidae L3, which can be
present.
This method does not apply to determining the species or genotype of detected parasites. Final
identification is made by morphological and/or molecular methods.
2 Normative references
The following documents are referred to in the text in such a way that some or all of their content
constitutes requirements of this document. For dated references, only the edition cited applies. For
undated references, the latest edition of the referenced document (including any amendments) applies.
ISO 7218, Microbiology of food and animal feeding stuffs — General requirements and guidance for
microbiological examinations
3 Terms and definitions
For the purposes of this document, the following terms and definitions apply.
ISO and IEC maintain terminological databases for use in standardization at the following addresses:
— ISO Online browsing platform: available at https:// www .iso .org/ obp
— IEC Electropedia: available at http:// www .electropedia .org/
3.1
Anisakidae L3 larvae
third-stage larvae (L3) belonging to the Anisakidae family, in particular to Anisakis, Contracaecum and
Pseudoterranova genera
Note 1 to entry: For practical purposes, the genus Hysterothylacium belonging to Raphidascarididae family and
already classified as Anisakidae, can be also included.
© ISO 2020 – All rights reserved 1

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ISO/FDIS 23036-2:2020(E)

3.2
artificial digestion method
method to detect Anisakidae larvae in fish muscle tissue by an enzymatic (pepsin-HCl) digestion step
to release larvae from muscle tissues followed by a filtration step and detection of larvae by microscopy
Note 1 to entry: If applied to fresh fish, it allows checking of the viability of larvae.
4 Principle
4.1 General
The artificial digestion method relies on the enzymatic degradation of muscle fibres in a fluid composed
of pepsin and hydrochloric acid followed by filtration and washing steps.
The procedure allows
...

PROJET
NORME ISO/FDIS
FINAL
INTERNATIONALE 23036-2
ISO/TC 34/SC 9
Microbiologie de la chaîne
Secrétariat: AFNOR
alimentaire — Méthodes de recherche
Début de vote:
2020-12-29 des larves L3 d'Anisakidae dans les
poissons et produits de la pêche —
Vote clos le:
2021-02-23
Partie 2:
Méthode de digestion artificielle
Microbiology of the food chain — Methods for the detection of
Anisakidae L3 larvae in fish and fishery products —
Part 2: Artificial digestion method
LES DESTINATAIRES DU PRÉSENT PROJET SONT
INVITÉS À PRÉSENTER, AVEC LEURS OBSER-
VATIONS, NOTIFICATION DES DROITS DE PRO-
TRAITEMENT PARALLÈLE ISO/CEN
PRIÉTÉ DONT ILS AURAIENT ÉVENTUELLEMENT
CONNAISSANCE ET À FOURNIR UNE DOCUMEN-
TATION EXPLICATIVE.
OUTRE LE FAIT D’ÊTRE EXAMINÉS POUR
ÉTABLIR S’ILS SONT ACCEPTABLES À DES FINS
INDUSTRIELLES, TECHNOLOGIQUES ET COM-
Numéro de référence
MERCIALES, AINSI QUE DU POINT DE VUE
ISO/FDIS 23036-2:2020(F)
DES UTILISATEURS, LES PROJETS DE NORMES
INTERNATIONALES DOIVENT PARFOIS ÊTRE
CONSIDÉRÉS DU POINT DE VUE DE LEUR POSSI-
BILITÉ DE DEVENIR DES NORMES POUVANT
SERVIR DE RÉFÉRENCE DANS LA RÉGLEMENTA-
©
TION NATIONALE. ISO 2020

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ISO/FDIS 23036-2:2020(F)

DOCUMENT PROTÉGÉ PAR COPYRIGHT
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publication ne peut être reproduite ni utilisée sous quelque forme que ce soit et par aucun procédé, électronique ou mécanique,
y compris la photocopie, ou la diffusion sur l’internet ou sur un intranet, sans autorisation écrite préalable. Une autorisation peut
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Publié en Suisse
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ISO/FDIS 23036-2:2020(F)

Sommaire Page
Avant-propos .iv
Introduction .v
1 Domaine d’application . 1
2 Références normatives . 1
3 Termes et définitions . 1
4 Principe . 2
4.1 Généralités . 2
4.2 Taille de l’échantillon . 2
4.3 Préparation de l’échantillon . 2
4.4 Digestion de l’échantillon . 2
4.5 Filtration du liquide de digestion . 2
4.6 Vérification des constatations . 2
5 Réactifs . 3
6 Équipement et consommables . 3
7 Échantillonnage . 4
8 Mode opératoire. 4
8.1 Préparation de l’échantillon . 4
8.2 Préparation du liquide de digestion . 4
8.3 Digestion de l’échantillon dans le bécher en verre . 5
8.4 Filtration du liquide de digestion . 5
8.5 Examen microscopique . 5
9 Expression des résultats. 6
10 Caractéristiques de performance de la méthode . 6
11 Rapport d’essai . 6
12 Assurance qualité . 6
Annexe A (informative) Prélèvement d’échantillons . 7
Annexe B (informative) Exemple de fiche de laboratoire pour la consignation des données
lors de l’examen des filets de poisson à l’aide de la méthode de digestion artificielle .8
Bibliographie . 9
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ISO/FDIS 23036-2:2020(F)

Avant-propos
L’ISO (Organisation internationale de normalisation) est une fédération mondiale d’organismes
nationaux de normalisation (comités membres de l’ISO). L’élaboration des Normes internationales est
en général confiée aux comités techniques de l’ISO. Chaque comité membre intéressé par une étude
a le droit de faire partie du comité technique créé à cet effet. Les organisations internationales,
gouvernementales et non gouvernementales, en liaison avec l’ISO participent également aux travaux.
L’ISO collabore étroitement avec la Commission électrotechnique internationale (IEC) en ce qui
concerne la normalisation électrotechnique.
Les procédures utilisées pour élaborer le présent document et celles destinées à sa mise à jour sont
décrites dans les Directives ISO/IEC, Partie 1. Il convient, en particulier de prendre note des différents
critères d’approbation requis pour les différents types de documents ISO. Le présent document a été
rédigé conformément aux règles de rédaction données dans les Directives ISO/IEC, Partie 2 (voir www
.iso .org/ directives).
L’attention est attirée sur le fait que certains des éléments du présent document peuvent faire l’objet de
droits de propriété intellectuelle ou de droits analogues. L’ISO ne saurait être tenue pour responsable
de ne pas avoir identifié de tels droits de propriété et averti de leur existence. Les détails concernant
les références aux droits de propriété intellectuelle ou autres droits analogues identifiés lors de
l’élaboration du document sont indiqués dans l’Introduction et/ou dans la liste des déclarations de
brevets reçues par l’ISO (voir www .iso .org/ brevets).
Les appellations commerciales éventuellement mentionnées dans le présent document sont données
pour information, par souci de commodité, à l’intention des utilisateurs et ne sauraient constituer un
engagement.
Pour une explication de la nature volontaire des normes, la signification des termes et expressions
spécifiques de l’ISO liés à l’évaluation de la conformité, ou pour toute information au sujet de l’adhésion
de l’ISO aux principes de l’Organisation mondiale du commerce (OMC) concernant les obstacles
techniques au commerce (OTC), voir le lien suivant: www .iso .org/ iso/ fr/ avant -propos.
Le présent document a été élaboré par le Comité technique ISO/TC 34, Produits alimentaires, sous-
comité SC 9, Microbiologie, en collaboration avec le Comité technique CEN/TC 275, Analyse des produits
alimentaires — Méthodes horizontales, du Comité européen de normalisation (CEN), conformément à
l’Accord sur la coopération technique entre l’ISO et le CEN (Accord de Vienne).
Une liste de toutes les parties de la série ISO 23036 se trouve sur le site web de l’ISO.
Il convient que l’utilisateur adresse tout retour d’information ou toute question concernant le présent
document à l’organisme national de normalisation de son pays. Une liste exhaustive desdits organismes
se trouve à l’adresse www .iso .org/ fr/ members .html.
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ISO/FDIS 23036-2:2020(F)

Introduction
Les nématodes de la famille des Anisakidae présentent un cycle de vie complexe impliquant un nombre
élevé d’hôtes. Au stade adulte, les Anisakidae pénètrent dans la muqueuse de l’estomac des mammifères
marins. Les œufs non embryonnés produits par les femelles adultes sont excrétés avec les fèces des
mammifères marins et sont embryonnés dans le milieu marin, où les larves de premier stade (L1)
se développent dans les œufs. Les larves muent pour se transformer en larves libres de deuxième
stade (L2), puis, si elles sont ingérées par des crustacés, en larves de troisième stade (L3). Ce stade est
infectieux pour les poissons et les calamars et les larves sont transférées d’un poisson à un autre par
le biais de la prédation, en restant au stade L3. Certaines larves migrent de la cavité abdominale vers
les tissus musculaires. Les humains sont des hôtes accidentels, susceptibles d’être infectés après avoir
ingéré du poisson ou des céphalopodes crus ou insuffisamment cuits contenant des larves L3 viables.
Les nématodes de la famille des Anisakidae sont les agents pathogènes de l’anisakidose humaine, une
maladie qui constitue non seulement une menace pour la santé publique, mais aussi un problème d’ordre
économique pour le secteur de la pêche et de sécurité des aliments (le terme anisakiase, qui désigne la
maladie provoquée par les membres du genre Anisakis, est également parfois utilisé). Dans le monde
entier, les poissons marins et anadromes sauvages constituent des hôtes intermédiaires d’Anisakidae,
tandis que les mammifères marins en sont les hôtes définitifs.
Des procédures d’inspection visuelle visant à détecter les larves d’Anisakidae dans les poissons sont
[1],[2]
mises en œuvre afin de limiter le risque que des poissons contaminés atteignent le consommateur
et ainsi d’empêcher l’apparition de l’anisakidose humaine.
Le passage sous presse hydraulique suivi de l’observation sous lumière UV, ainsi que la digestion
artificielle des tissus musculaires de poissons sont les méthodes qui ont été spécialement conçues pour
détecter les larves de nématodes dans les poissons et évaluer le niveau d’infestation d’un lot, et qui ont
[3]
été validées et soumises à essai dans des études comparatives interlaboratoires (voir Article 11).
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PROJET FINAL DE NORME INTERNATIONALE ISO/FDIS 23036-2:2020(F)
Microbiologie de la chaîne alimentaire — Méthodes de
recherche des larves L3 d'Anisakidae dans les poissons et
produits de la pêche —
Partie 2:
Méthode de digestion artificielle
1 Domaine d’application
Le présent document spécifie une méthode de détection des larves L3 d’Anisakidae qui se trouvent
fréquemment dans les poissons marins et anadromes. La méthode s’applique aux poissons frais et/ou
surgelés, ainsi qu’aux produits à base de poisson légèrement transformés, c’est-à-dire marinés, salés ou
fumés. Cette méthode peut également servir de méthode de confirmation dans le cadre d’une inspection
visuelle des organes viscéraux.
[4],[6]
La méthode de digestion artificielle s’applique à la quantification des infestations parasitaires en
estimant le nombre de parasites dans les tissus musculaires des poissons et, en cas d’utilisation sur
des poissons frais ou des produits à base de poisson légèrement transformés (jamais congelés avant
traitement), à la détermination de la viabilité des larves L3 d’Anisakidae, susceptibles d’être présentes.
Cette méthode ne s’applique pas à la détermination des espèces ou du génotype des parasites détectés.
Des méthodes morphologiques et/ou moléculaires permettent une identification définitive.
2 Références normatives
Les documents suivants sont cités dans le texte de sorte qu’ils constituent, pour tout ou partie de leur
contenu, des exigences du présent document. Pour les références datées, seule l’édition citée s’applique.
Pour les références non datées, la dernière édition du document de référence s’applique (y compris les
éventuels amendements).
ISO 7218, Microbiologie des aliments — Exigences générales et recommandations
3 Termes et définitions
Pour les besoins du présent document, les termes et définitions suivants s’appliquent.
L’ISO et l’IEC tiennent à jour des bases de données terminologiques destinées à être utilisées en
normalisation, consultables aux adresses suivantes:
— ISO Online browsing platform: disponible à l’adresse https:// www .iso .org/ obp;
— IEC Electropedia: disponible à l’adresse http:// www .electropedia .org/ .
3.1
larves L3 d’Anisakidae
larves de troisième stade (L3) appartenant à la famille des Anisakidae, et plus particulièrement aux
genres Anisakis, Contracaecum et Pseudoterranova
Note 1 à l'article: Pour des raisons pratiques, le genre Hysterothylacium qui appartient à la famille
des Raphidascarididae et est déjà classé parmi les Anisakidae, peut aussi être inclus.
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3.2
méthode de digestion artificielle
méthode de détection des larves d’Anisakidae dans les tissus musculaires des poissons par digestion
enzymatique (pepsine-HCl) permettant de libérer les larves des tissus, suivie d’une filtration et d’une
détection des larves par microscopie
Note 1 à l'article: Si appliquée à du poisson frais, elle permet de vérifier la viabilité des larves.
4 Principe
4.1 Généralités
La méthode de digestion artificielle repose sur la dégradation enzymatique des fibres musculaires dans
un liquide composé de pepsine et d’acide chlorhydrique, suivie par des étapes de filtration et de lavage.
Le mode opératoire permet de différencier les larves d’Anisakidae mortes et viables sous réserve
que la température de la solution de digestion ne dépasse pas 37 °C (à l’exception des larves de
Hysterothylacium sp., qui meurent à 37 °C) et que le poisson n’ait jamais été congelé.
Aucun contrôle qualité interne ne peut être effectué pendant la mise en œuvre de cette méthode.
NOTE D’autres méthodes peuvent être utilisées pour l’analyse, sous réserve que leur équivalence avec les
méth
...

Questions, Comments and Discussion

Ask us and Technical Secretary will try to provide an answer. You can facilitate discussion about the standard in here.