ISO 23196:2022
(Main)Water quality — Calculation of biological equivalence (BEQ) concentrations
Water quality — Calculation of biological equivalence (BEQ) concentrations
This document specifies the derivation of biological equivalence (BEQ) concentrations for results of in vitro bioassays which are based on measuring effects on a biological process such as enzyme induction or cellular growth. The concept described here can be used for any biological assay after the proof of its applicability. To derive BEQ concentrations, the effect on a biological process caused by a sample – i.e. the activity of the sample – is expressed in terms of a concentration of a reference compound which results in an equivalent effect on the process. The term "sample" used in this document addresses environmental samples as well as defined mixtures and pure compounds used as test item in a bioassay. BEQ concentrations can be derived for environmental water samples, extracts of environmental water samples including tap water or solutions of pure chemicals or mixtures of chemicals.
Qualité de l’eau — Calcul des concentrations en équivalent biologique (BEQ)
Le présent document spécifie la détermination de concentrations en équivalent biologique (BEQ) à partir de résultats de bioessais in vitro qui sont fondés sur la mesure des effets produits sur un processus biologique tel que l’induction d’enzymes ou la croissance cellulaire. Le concept décrit ici peut être utilisé pour n’importe quel bioessai du moment que son applicabilité a été démontrée. Pour déterminer les concentrations BEQ, l’effet produit par un échantillon sur un processus biologique, c’est-à-dire l’activité de l’échantillon, est exprimé sous la forme de la concentration d’un composé de référence à laquelle un effet équivalent est obtenu sur le processus. Le terme «échantillon» utilisé dans le présent document renvoie à des échantillons environnementaux ainsi qu’à des mélanges déterminés et à des composés purs utilisés comme objets de mesure dans le cadre d’un bioessai. Les concentrations en équivalent biologique peuvent être déterminées pour des échantillons d’eau environnementaux, des extraits d’échantillons d’eau environnementaux, y compris d’eau du robinet, ou des solutions de substances chimiques pures ou de mélanges de substances chimiques.
General Information
- Status
- Published
- Publication Date
- 06-Feb-2022
- Technical Committee
- ISO/TC 147/SC 5 - Biological methods
- Drafting Committee
- ISO/TC 147/SC 5/WG 12 - Key ecotoxicity testing issues
- Current Stage
- 6060 - International Standard published
- Start Date
- 07-Feb-2022
- Due Date
- 26-Jan-2022
- Completion Date
- 07-Feb-2022
Relations
- Consolidated By
ISO 4892-1:2024 - Plastics — Methods of exposure to laboratory light sources — Part 1: General guidance and requirements - Effective Date
- 06-Jun-2022
Overview
ISO 23196:2022 - Water quality: Calculation of biological equivalence (BEQ) concentrations specifies a standardized method to express the biological activity measured in in vitro bioassays as a biological equivalence (BEQ) concentration. BEQ concentrations translate the effect of an environmental sample, extract, solution or defined mixture into the concentration of a reference compound (RC) that produces an equivalent effect. This enables quantitative interpretation and cross-laboratory comparison of bioassay results for water quality assessment.
Key topics and technical requirements
- Scope: Applicable to in vitro bioassays based on effects on biological processes (e.g., enzyme induction, cellular growth) once assay applicability is proven.
- RC-approach: Model the concentration-effect relationship of a reference compound, normalize response so negative control = 0% and RC maximum = 100%, determine RCx (concentration causing x% effect).
- Calculation principle: Derive sample concentration factor (CFx) at the same x% effect by interpolation, then calculate BEQ as BEQ = RCx / CFx.
- Data quality & fitting:
- Require sufficient data points (e.g., at least two more points than model parameters).
- Sigmoidal concentration-effect curves are typically fitted (five‑parameter logistic often used).
- Assess upper and lower plateaus, goodness-of-fit and validity criteria before deriving BEQ.
- Normalization & ECx: Use x%-effect levels (ECx/RCx) such as EC10, EC25, EC50 depending on assay purpose.
- Documentation: Follow procedure steps and report fit quality, normalization, interpolation and validity checks.
Practical applications and users
- Who uses it:
- Environmental and public-health laboratories performing bioassays on surface, tap or treated water.
- Water utilities and regulators converting bioassay responses into comparable metrics.
- Environmental consultants, researchers and method developers assessing mixtures, extracts or unknown samples.
- Why use ISO 23196:2022:
- Converts biological activity into a comparable concentration metric (BEQ) for trend analysis and monitoring.
- Facilitates inter-laboratory comparability and supports interpretation against effect-based trigger (EBT) values in risk assessment.
- Useful for monitoring complex mixtures where chemical analysis alone cannot capture biological effects.
Related standards
- OECD 455 (reporting of similar bioassay approaches referenced in the document)
- ISO standards cited in definitions and methods: ISO 6107, ISO 15952, ISO 15839, ISO 7405
- Useful keywords: ISO 23196:2022, BEQ, biological equivalence, water quality, in vitro bioassays, concentration-effect relationship, reference compound, ECx, CF, effect-based trigger (EBT)
This standard provides a robust, reproducible framework to quantify biological activity in water quality testing and to communicate results consistently across laboratories and regulatory contexts.
ISO 23196:2022 - Water quality — Calculation of biological equivalence (BEQ) concentrations Released:2/7/2022
ISO 23196:2022 - Qualité de l’eau — Calcul des concentrations en équivalent biologique (BEQ) Released:9/4/2023
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Frequently Asked Questions
ISO 23196:2022 is a standard published by the International Organization for Standardization (ISO). Its full title is "Water quality — Calculation of biological equivalence (BEQ) concentrations". This standard covers: This document specifies the derivation of biological equivalence (BEQ) concentrations for results of in vitro bioassays which are based on measuring effects on a biological process such as enzyme induction or cellular growth. The concept described here can be used for any biological assay after the proof of its applicability. To derive BEQ concentrations, the effect on a biological process caused by a sample – i.e. the activity of the sample – is expressed in terms of a concentration of a reference compound which results in an equivalent effect on the process. The term "sample" used in this document addresses environmental samples as well as defined mixtures and pure compounds used as test item in a bioassay. BEQ concentrations can be derived for environmental water samples, extracts of environmental water samples including tap water or solutions of pure chemicals or mixtures of chemicals.
This document specifies the derivation of biological equivalence (BEQ) concentrations for results of in vitro bioassays which are based on measuring effects on a biological process such as enzyme induction or cellular growth. The concept described here can be used for any biological assay after the proof of its applicability. To derive BEQ concentrations, the effect on a biological process caused by a sample – i.e. the activity of the sample – is expressed in terms of a concentration of a reference compound which results in an equivalent effect on the process. The term "sample" used in this document addresses environmental samples as well as defined mixtures and pure compounds used as test item in a bioassay. BEQ concentrations can be derived for environmental water samples, extracts of environmental water samples including tap water or solutions of pure chemicals or mixtures of chemicals.
ISO 23196:2022 is classified under the following ICS (International Classification for Standards) categories: 13.060.70 - Examination of biological properties of water. The ICS classification helps identify the subject area and facilitates finding related standards.
ISO 23196:2022 has the following relationships with other standards: It is inter standard links to ISO 4892-1:2024. Understanding these relationships helps ensure you are using the most current and applicable version of the standard.
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Standards Content (Sample)
INTERNATIONAL ISO
STANDARD 23196
First edition
2022-02
Water quality — Calculation of
biological equivalence (BEQ)
concentrations
Reference number
© ISO 2022
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be reproduced or utilized otherwise in any form or by any means, electronic or mechanical, including photocopying, or posting on
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CH-1214 Vernier, Geneva
Phone: +41 22 749 01 11
Email: copyright@iso.org
Website: www.iso.org
Published in Switzerland
ii
Contents Page
Foreword .iv
1 Scope . 1
2 Normative references . 1
3 Terms and definitions . 1
4 Principle . 2
5 Procedure .5
5.1 General . 5
5.2 Procedure for the calculation of biological equivalence (BEQ) concentrations . 5
5.2.1 Assessment of the suitability of the experimental data for the calculation
of a biological equivalence (BEQ) concentration . 5
5.2.2 Fitting of concentration-effect data for the reference compound . 8
5.2.3 Calculation of quality measures for the fit . 9
5.2.4 Normalization of data from the reference compound and samples . 10
5.2.5 Calculation of the x %-effect level of the reference concentration-effect
relationship and the respective RC -value . 11
x
5.2.6 Assessment of the validity of the experimental data for the calculation of a
biological equivalence (BEQ) concentration .12
5.2.7 Calculation of the concentration factor of the sample at x %-effect level by
linear interpolation .12
5.2.8 Calculation of the biological equivalence (BEQ) concentration .13
6 Validity criteria .14
7 Test report .14
Annex A (informative) Illustration of χ statistics using data from Table 1 .15
Bibliography .18
iii
Foreword
ISO (the International Organization for Standardization) is a worldwide federation of national standards
bodies (ISO member bodies). The work of preparing International Standards is normally carried out
through ISO technical committees. Each member body interested in a subject for which a technical
committee has been established has the right to be represented on that committee. International
organizations, governmental and non-governmental, in liaison with ISO, also take part in the work.
ISO collaborates closely with the International Electrotechnical Commission (IEC) on all matters of
electrotechnical standardization.
The procedures used to develop this document and those intended for its further maintenance are
described in the ISO/IEC Directives, Part 1. In particular, the different approval criteria needed for the
different types of ISO documents should be noted. This document was drafted in accordance with the
editorial rules of the ISO/IEC Directives, Part 2 (see www.iso.org/directives).
Attention is drawn to the possibility that some of the elements of this document may be the subject of
patent rights. ISO shall not be held responsible for identifying any or all such patent rights. Details of
any patent rights identified during the development of the document will be in the Introduction and/or
on the ISO list of patent declarations received (see www.iso.org/patents).
Any trade name used in this document is information given for the convenience of users and does not
constitute an endorsement.
For an explanation of the voluntary nature of standards, the meaning of ISO specific terms and
expressions related to conformity assessment, as well as information about ISO's adherence to
the World Trade Organization (WTO) principles in the Technical Barriers to Trade (TBT), see
www.iso.org/iso/foreword.html.
This document was prepared by Technical Committee ISO/TC 147, Water quality, Subcommittee SC 5,
Biological methods.
Any feedback or questions on this document should be directed to the user’s national standards body. A
complete listing of these bodies can be found at www.iso.org/members.html.
iv
INTERNATIONAL STANDARD ISO 23196:2022(E)
Water quality — Calculation of biological equivalence
(BEQ) concentrations
1 Scope
This document specifies the derivation of biological equivalence (BEQ) concentrations for results of in
vitro bioassays which are based on measuring effects on a biological process such as enzyme induction
or cellular growth. The concept described here can be used for any biological assay after the proof of its
applicability.
To derive BEQ concentrations, the effect on a biological process caused by a sample – i.e. the activity
of the sample – is expressed in terms of a concentration of a reference compound which results in an
equivalent effect on the process. The term "sample" used in this document addresses environmental
samples as well as defined mixtures and pure compounds used as test item in a bioassay. BEQ
concentrations can be derived for environmental water samples, extracts of environmental water
samples including tap water or solutions of pure chemicals or mixtures of chemicals.
2 Normative references
There are no normative references in this document.
3 Terms and definitions
For the purposes of this document, the following terms and definitions apply.
ISO and IEC maintain terminology databases for use in standardization at the following addresses:
— ISO Online browsing platform: available at https:// www .iso .org/ obp
— IEC Electropedia: available at https:// www .electropedia .org/
3.1
biological equivalence concentration
BEQ concentration
concentration of a reference compound (3.6) that causes the same effect as the effect measured in a
sample, a sample dilution or a solution containing one or more chemicals
3.2
concentration-effect relationship
response to a concentration gradient of an environmental sample or a known substance or mixture of
substances which is described by pre-determined diagnostic indicators
[SOURCE: ISO 6107:2021, 3.127, modified — the term "environmental sample" added; Note 1 to entry
has been deleted.]
3.3
concentration factor
CF
ratio of the actual concentration of the sample compared to the original sample taking all enrichment
and dilution steps of the sample into account
3.4
limit of quantification
LOQ
lowest value of a determinant that can be determined with an acceptable level of accuracy and precision
[SOURCE: ISO 15839:2003, 3.18]
3.5
negative control material
well characterized material and/or substance that, when evaluated by a specific test method,
demonstrates the suitability of the test system to yield a reproducible, appropriately negative,
non-reactive or minimal response in the test system
Note 1 to entry: In practice, negative controls include blanks, vehicles/solvents and reference materials.
[SOURCE: ISO 7405:2018, 3.4, modified — Note 1 to entry has been deleted.]
3.6
reference compound
RC
compound with one or more property values that are sufficiently reproducible and well established to
enable the calibration of the measurement method
Note 1 to entry: For the purpose of this document, a reference compound is any well characterized material and/
or substance that, when tested by the procedure described, demonstrates the suitability of the procedure to yield
a reproducible, predictable positive response.
[SOURCE: ISO 7405:2018, 3.5, modified — "compound" replaces "material"; "the calibration of the
measurement method" replaces "use of the material or substance for the calibration of an apparatus,
the assessment of a measurement method or for the assignment of values to materials". Note 1 was
modified to cover only a reference compound resulting in a positive response – otherwise the proposed
concept is not applicable.]
3.7
x %-effect concentration
EC
x
concentration at which a specific effect is detected; x is the percentage (e.g. 10, 25, 50) of this effect, e.g.
growth inhibition
[SOURCE: ISO 15952:2018, 3.6]
3.8
x %-effect concentration of a reference compound
RC
x
concentration of a reference compound (3.6) at which a specific effect is detected; x is the percentage
(e.g. 10, 25, 50) of this effect, e.g. growth inhibition
4 Principle
The general idea for the derivation of BEQ concentrations, assessed by the test method, is shown in
Figure 1. The biological activity of a sample is expressed in terms of a concentration of a reference
compound which affects a biological process to the same extent. By this means, BEQ concentrations
allow an indirect quantification of results and a comparison of results obtained by different laboratories.
Furthermore, a robust way to calculate BEQ concentrations is a necessary requirement for a possible
[5],[6],[7],[8]
use of effect-based trigger (EBT) values in regulations .
Key
X concentration of the reference compound, e.g. in ng/l
X1 concentration factor of the sample compared to the original water sample
Y effect in arbitrary units
1 sample diluted
2 sample concentrated
3 biological equivalence (BEQ) concentration
reference compound
sample
NOTE The measured effect of a sample or a sample dilution is extrapolated to a concentration of a reference
compound which induces the bioassay to the same extend as the sample or sample dilution to derive a biological
equivalence (BEQ) concentration, here an example of an agonistic action is shown.
Figure 1 — Basic principle of the derivation of a biological equivalence (BEQ) concentration
Several different methods for the derivation of BEQ concentrations have been published, but not all
methods are applicable to all kinds of concentration-effect relationships. For a detailed discussion about
advantages and disadvantages of the various mathematical approaches, see References [1],[3],[5],[6].
The method described in this document, termed RC -approach, is reported to be a robust method for
x
[11],[12] [13]
the derivation of BEQ concentrations and outlined as well in OECD 455 .
NOTE In the literature, other terminologies might be found for RC , such as PC . PC describes the
x 10 10
concentration of the positive control that induces a 10 % effect-level. In this document, the term “reference
compound” is used instead of “positive control”. Therefore, RC is used instead of PC.
The approach is illustrated in Figure 2. As a first step of the RC -approach, the concentration-effect
x
relationship of the reference compound is modelled to determine the maximum effect of the assay for
the reference compound. Next, the effect levels are normalized to a percentage scale whereby the effect
level of the negative control material is defined as 0 % and the maximum effect level of the reference
compound is defined as 100 %. Then, the concentration of the reference compound that affects the
assay to the x %-effect level is calculated (RC ).
x
Key
X concentration of the reference compound, e.g. in ng/l
X1 concentration factor of the sample compared to the original water sample
Y normalized effect in %
RC concentration of the reference compound at 10 % effect level
CF concentration factor of the sample at 10 % effect level with respect to the reference compound
reference compound
sample
NOTE Following data normalization, where 0 % equals the effect in the negative control material and 100 %
is the modelled maximum effect of the reference. The sample concentration factor (CF) and reference compound
concentration (RC) required to reach an effect level of x % (here 10 %) are interpolated from the data using
linear interpolation (dashed line). The BEQ concentration is derived by dividing RC by CF .
x x
Figure 2 — Illustration of the RC -approach for the derivation of a biological equivalence (BEQ)
x
concentration
In a further step, the concentration factor of the sample is determined at which the sample affects the
assay to the selected x %-effect level (CF ). As defined in 3.3, the concentration factor describes the ratio
x
of the actual concentration of the sample compared to the original water sample taking all enrichment
and dilution steps of the sample into account. If a sample is, under consideration of a quantitative
process, enriched 1 000-fold by solid phase extraction, the final concentration factor of the sample after
a 100-fold dilution with, for example, growth medium is 10. If this sample is tested in a series of six
1→2 dilutions, the resulting rounded concentration factors are 10, 5, 2,5, 1,25, 0,62, 0,31 and 0,15. The
biological equivalence (BEQ) concentration of the sample is finally given by the ratio RC /CF .
x x
5 Procedure
5.1 General
Usually, concentration-effect relationships of reference compounds and samples (see Clause 1) in
reporter gene assays and proliferation assays are sigmoidal. Depending on the individual shape of
the concentration-effect relationship, a suitable mathematical model has to be selected for fitting. In
[14],[15]
general, a five parametric logistic model can be applied as shown in 5.2.
The overall procedure for the calculation of BEQ concentrations consists of the following steps that are
described in detail in 5.2:
— assessment of the suitability of the experimental data for the calculation of a biological equivalence
concentration (see 5.2.1);
— fitting of concentration-effect data for the reference compound (see 5.2.2);
— calculation of quality measures for the fit (see 5.2.3);
— normalization of data from the reference compound and samples (see 5.2.4);
— calculation of the x %-effect level of the reference compound and the respective RC -value (see
x
5.2.5);
— assessment of the validity of the experimental data for the calculation of a biological equivalence
concentration (see 5.2.6);
— calculation of the concentration factor of the sample at the x %-effect level by linear interpolation
(see 5.2.7);
— calculation of the biological equivalence (BEQ) concentration (see 5.2.8).
5.2 Procedure for the calculation of biological equivalence (BEQ) concentrations
5.2.1 Assessment of the suitability of the experimental data for the calculation of a biological
equivalence (BEQ) concentration
To assess the validity of the experimental data for the calculation of biological equivalence (BEQ)
concentrations (see 5.2.6) by the procedure described in this document, some calculations should
be performed. The experimental data should be assessed prior to this procedure as described below
to evaluate its general suitability. Use only experimental data which fulfil the validity criteria of the
respective standard or guideline for the calculation of biological equivalence (BEQ) concentrations.
Use the following guidance to assess a general suitability of the data:
a) at least two more data points than the number of parameters describing the logistic function of the
curve are required for the concentration-effect relationship of the reference compound, i.e. in case
of the five-parametric logistic function described in 5.2.2 seven data points are required;
b) the upper curve plateau of the sigmoidal concentration-effect relationship of the reference
compound is indicated by the data, i.e. might be estimated by the human eye;
c) the lower curve plateau of the sigmoidal concentration-effect relationship of the reference
compound is indicated by the data, i.e. might be estimated by the human eye;
d) the effect measures of the tested sample concentrations are likely to cross the chosen x %-effect
level.
Figure 3 shows two examples to guide the assessment of the suitability of the experimental data for the
calculation of an equivalence concentration.
Figure 3 a) shows two concentration-effect relationships of the reference compound that are not suitable
for the calculation of biological equivalence (BEQ) concentrations. In case of the upper curve (black
triangles, high response curve), the bottom of the concentration-effect relationship is not defined; in
case of the lower curve (black squares, low response curve), the top (maximum to infinite effect range)
is not defined. In such cases, adjust the concentration range for the reference compound to generate a
complete concentration-effect relationship.
F
...
NORME ISO
INTERNATIONALE 23196
Première édition
2022-02
Qualité de l’eau — Calcul des
concentrations en équivalent
biologique (BEQ)
Water quality — Calculation of biological equivalence (BEQ)
concentrations
Numéro de référence
DOCUMENT PROTÉGÉ PAR COPYRIGHT
© ISO 2022
Tous droits réservés. Sauf prescription différente ou nécessité dans le contexte de sa mise en œuvre, aucune partie de cette
publication ne peut être reproduite ni utilisée sous quelque forme que ce soit et par aucun procédé, électronique ou mécanique,
y compris la photocopie, ou la diffusion sur l’internet ou sur un intranet, sans autorisation écrite préalable. Une autorisation peut
être demandée à l’ISO à l’adresse ci-après ou au comité membre de l’ISO dans le pays du demandeur.
ISO copyright office
Case postale 401 • Ch. de Blandonnet 8
CH-1214 Vernier, Genève
Tél.: +41 22 749 01 11
E-mail: copyright@iso.org
Web: www.iso.org
Publié en Suisse
ii
Sommaire Page
Avant-propos .iv
1 Domaine d'application .1
2 Références normatives .1
3 Termes et définitions . 1
4 Principe. 2
5 Mode opératoire . 5
5.1 Généralités . 5
5.2 Mode opératoire de calcul des concentrations en équivalent biologique (BEQ) . 5
5.2.1 Évaluation de l’adéquation des données expérimentales pour le calcul
d’une concentration en équivalent biologique (BEQ) . 5
5.2.2 Ajustement des données relatives à la relation dose-effet pour le composé
de référence . 8
5.2.3 Calcul des mesures de la qualité pour l’ajustement . 9
5.2.4 Normalisation des données à partir du composé de référence et des
échantillons . 10
5.2.5 Calcul du niveau d’effet de x % de la relation dose-effet de référence et de la
valeur de la RC correspondante . 11
x
5.2.6 Évaluation de la validité des données expérimentales pour le calcul d’une
concentration en équivalent biologique (BEQ) .12
5.2.7 Calcul du facteur de concentration de l’échantillon au niveau d’effet de x %
par interpolation linéaire .12
5.2.8 Calcul de la concentration en équivalent biologique (BEQ) . 14
6 Critères de validité .14
7 Rapport d’essai .14
Annexe A (informative) Exemples de détermination de la statistique χ à partir des
données du Tableau 1 .16
Bibliographie .19
iii
Avant-propos
L'ISO (Organisation internationale de normalisation) est une fédération mondiale d'organismes
nationaux de normalisation (comités membres de l'ISO). L'élaboration des Normes internationales est
en général confiée aux comités techniques de l'ISO. Chaque comité membre intéressé par une étude
a le droit de faire partie du comité technique créé à cet effet. Les organisations internationales,
gouvernementales et non gouvernementales, en liaison avec l'ISO participent également aux travaux.
L'ISO collabore étroitement avec la Commission électrotechnique internationale (IEC) en ce qui
concerne la normalisation électrotechnique.
Les procédures utilisées pour élaborer le présent document et celles destinées à sa mise à jour sont
décrites dans les Directives ISO/IEC, Partie 1. Il convient, en particulier, de prendre note des différents
critères d'approbation requis pour les différents types de documents ISO. Le présent document
a été rédigé conformément aux règles de rédaction données dans les Directives ISO/IEC, Partie 2
(voir www.iso.org/directives).
L'attention est attirée sur le fait que certains des éléments de la présente Publication de l'IEC peuvent
faire l'objet de droits de brevet. L’ISO ne saurait être tenue pour responsable de ne pas avoir identifié
tout ou partie de tels droits de brevet. Les détails concernant les références aux droits de brevet
identifiés lors de l'élaboration du document sont indiqués dans l'Introduction et/ou dans la liste des
déclarations de brevets reçues par l'ISO (voir www.iso.org/brevets).
Les appellations commerciales éventuellement mentionnées dans le présent document sont données
pour information, par souci de commodité, à l’intention des utilisateurs et ne sauraient constituer un
engagement.
Pour une explication de la nature volontaire des normes, la signification des termes et expressions
spécifiques de l'ISO liés à l'évaluation de la conformité, ou pour toute information au sujet de l'adhésion
de l'ISO aux principes de l’Organisation mondiale du commerce (OMC) concernant les obstacles
techniques au commerce (OTC), voir www.iso.org/avant-propos.
Le présent document a été élaboré par le comité technique ISO/TC 147, Qualité de l'eau, sous-comité
SC 5, Méthodes biologiques.
Il convient que l’utilisateur adresse tout retour d’information ou toute question concernant le présent
document à l’organisme national de normalisation de son pays. Une liste exhaustive desdits organismes
se trouve à l’adresse www.iso.org/fr/members.html.
iv
NORME INTERNATIONALE ISO 23196:2022(F)
Qualité de l’eau — Calcul des concentrations en équivalent
biologique (BEQ)
1 Domaine d'application
Le présent document spécifie la détermination de concentrations en équivalent biologique (BEQ)
à partir de résultats de bioessais in vitro qui sont fondés sur la mesure des effets produits sur un
processus biologique tel que l’induction d’enzymes ou la croissance cellulaire. Le concept décrit ici peut
être utilisé pour n’importe quel bioessai du moment que son applicabilité a été démontrée.
Pour déterminer les concentrations BEQ, l’effet produit par un échantillon sur un processus biologique,
c’est-à-dire l’activité de l’échantillon, est exprimé sous la forme de la concentration d’un composé de
référence à laquelle un effet équivalent est obtenu sur le processus. Le terme «échantillon» utilisé dans
le présent document renvoie à des échantillons environnementaux ainsi qu’à des mélanges déterminés
et à des composés purs utilisés comme objets de mesure dans le cadre d’un bioessai. Les concentrations
en équivalent biologique peuvent être déterminées pour des échantillons d’eau environnementaux,
des extraits d’échantillons d’eau environnementaux, y compris d’eau du robinet, ou des solutions de
substances chimiques pures ou de mélanges de substances chimiques.
2 Références normatives
Le présent document ne contient aucune référence normative.
3 Termes et définitions
Pour les besoins du présent document, les termes et définitions suivants s’appliquent.
L’ISO et l’IEC tiennent à jour des bases de données terminologiques destinées à être utilisées en
normalisation, consultables aux adresses suivantes:
— ISO Online browsing platform: disponible à l’adresse https:// www .iso .org/ obp
— IEC Electropedia: disponible à l’adresse https:// www .electropedia .org/
3.1
concentration en équivalent biologique
concentration BEQ
concentration d’un composé de référence (3.6) qui produit le même effet que l’effet mesuré pour un
échantillon, une dilution d’échantillon ou une solution contenant une ou plusieurs substances chimiques
3.2
relation dose-effet
réponse à un gradient de concentration d’un échantillon environnemental, d'une substance ou d'un
mélange de substances connu, qui est décrite par des indicateurs de diagnostic prédéterminés
[SOURCE: ISO 6107:2021, 3.127, modifié — Le terme «échantillon environnemental» a été ajouté et la
Note 1 à l’article a été supprimée.]
3.3
facteur de concentration
CF [concentration factor]
rapport de la concentration réelle de l’échantillon à la concentration de l’échantillon d’origine, compte
tenu de toutes les étapes d’enrichissement et de dilution de l’échantillon
3.4
limite de quantification
LOQ [limit of quantification]
valeur la plus faible d’une caractéristique à déterminer pouvant être mesurée avec un niveau acceptable
d’exactitude et de fidélité
[SOURCE: ISO 15839:2003, 3.18]
3.5
matériau témoin négatif
matériau et/ou substance bien caractérisés qui, soumis à essai conformément à une méthode
d’essai spécifique, démontrent l’aptitude du système d’essai à conduire à une réponse reproductible,
judicieusement négative, non réactive ou minimale vis-à-vis d’un système d’essai particulier
Note 1 à l'article: Dans la pratique, les témoins négatifs comprennent les blancs, les excipients/solvants et les
matériaux de référence.
[SOURCE: ISO 7405:2018, 3.4, modifié — La Note 1 à l’article a été supprimée.]
3.6
composé de référence
RC [reference compound]
composé possédant une ou plusieurs valeurs de propriété suffisamment reproductibles et bien définies
pour permettre l’étalonnage de la méthode de mesure
Note 1 à l'article: Pour les besoins du présent document, sont considérés comme composés de référence tout
matériau et/ou toute substance bien caractérisés qui, soumis à essai conformément au mode opératoire décrit,
démontrent l’aptitude du mode opératoire à fournir une réponse positive reproductible et prévisible.
[SOURCE: ISO 7405:2018, 3.5, modifié — Le terme «composé» a remplacé «matériau»; l’expression
«l’étalonnage de la méthode de mesure» a remplacé «l’utilisation du matériau ou de la substance en vue
de l’étalonnage d’un appareil, l’évaluation d’une méthode de mesure ou l’attribution de valeurs à des
matériaux». La Note 1 a été modifiée de sorte à concerner uniquement un composé de référence donnant
une réponse positive, le concept proposé n’étant pas applicable dans le cas d’une réponse négative.]
3.7
concentration efficace à x %
EC [x %-effect concentration]
x
concentration à laquelle est décelé un effet spécifique; x est le pourcentage (par exemple, 10, 25, 50) de
cet effet, par exemple inhibition de la croissance
[SOURCE: ISO 15952:2018, 3.6]
3.8
concentration efficace à x % d’un composé de référence
RC [x %-effect concentration of a reference compound]
x
concentration d’un composé de référence (3.6) à laquelle est décelé un effet spécifique; x est le
pourcentage (par exemple, 10, 25, 50) de cet effet, par exemple inhibition de la croissance
4 Principe
L’idée générale qui sous-tend la détermination des concentrations BEQ, évaluées à l’aide de la méthode
d’essai, est illustrée à la Figure 1. L’activité biologique d’un échantillon est exprimée sous la forme de
la concentration d’un composé de référence ayant la même incidence sur un processus biologique. De
cette manière, les concentrations BEQ permettent une quantification indirecte des résultats et une
comparaison des résultats obtenus par différents laboratoires. De plus, disposer d’une méthode robuste
pour calculer les concentrations BEQ est une exigence nécessaire à l’éventuelle utilisation de valeurs
[5],[6],[7],[8]
seuils basées sur les effets (EBT, de l’anglais «effect-based trigger») dans les réglementations .
Légende
X concentration du composé de référence, par exemple en ng/l
X1 facteur de concentration de l’échantillon par rapport à l’échantillon d’eau d’origine
Y effet, en unités arbitraires
1 échantillon dilué
2 échantillon concentré
3 concentration en équivalent biologique (BEQ)
composé de référence
échantillon
NOTE L’effet mesuré d’un échantillon ou d’une dilution d’échantillon est extrapolé à la concentration d’un
composé de référence ayant la même incidence sur le bioessai que l’échantillon ou la dilution d’échantillon
pour déterminer une concentration en équivalent biologique (BEQ); l’exemple illustré ici est celui d’une action
antagoniste.
Figure 1 — Principe de base de la détermination d’une concentration en équivalent
biologique (BEQ)
Différentes méthodes de détermination de concentrations BEQ ont été publiées; cependant, toutes ne
sont pas applicables à chaque type de relation dose-effet. Pour un exposé détaillé des avantages et des
inconvénients des différentes approches mathématiques, voir les Références bibliographiques [1], [3],
[5], [6]. La méthode décrite dans le présent document, appelée «approche RC », est présentée comme
x
[11],[12]
une méthode robuste pour la détermination de concentrations BEQ ; elle est décrite également
o [13]
dans la ligne directrice «Essai n 455» de l’OCDE .
NOTE Il n’est pas rare de rencontrer dans la littérature d’autres terminologies que «RC », telles que PC ,
x 10
par exemple, qui désigne la concentration du témoin positif produisant un niveau d’effet de 10 %. Dans le présent
document, le terme «composé de référence» est utilisé à la place de «témoin positif», d’où l’utilisation du sigle
«RC» au lieu de «PC».
Cette approche est illustrée à la Figure 2. Une première étape de l’approche RC consiste à modéliser
x
la relation dose-effet du composé de référence pour déterminer l’effet maximal obtenu, pour un essai
donné, avec le composé de référence. Les niveaux d’effet sont ensuite normalisés à une échelle de
pourcentage, le niveau d’effet du matériau témoin négatif étant défini comme égal à 0 % et le niveau
d’effet maximal du composé de référence étant défini comme égal à 100 %. Après cela, la concentration
du composé de référence donnant lieu à un niveau d’effet de x %, pour l’essai donné, est calculée (RC ).
x
Légende
X concentration du composé de référence, par exemple en ng/l
X1 facteur de concentration de l’échantillon par rapport à l’échantillon d’eau d’origine
Y effet normalisé, en %
RC concentration du composé de référence au niveau d’effet de 10 %
facteur de concentration de l’échantillon au niveau d’effet de 10 % par rapport au composé de
CF
référence
composé de référence
échantillon
NOTE Après avoir procédé à la normalisation des données, où 0 % représente l’effet du matériau témoin
négatif et 100 % l’effet maximal modélisé du composé de référence, le facteur de concentration (CF) de
l’échantillon et la concentration du composé de référence (RC) nécessaires pour atteindre un niveau d’effet
de x % (ici, 10 %) sont déterminés à partir des données par interpolation linéaire (ligne en trait interrompu). La
concentration BEQ est déterminée en divisant RC par CF .
x x
Figure 2 — Illustration de l’approche RC pour la détermination d’une concentration
x
en équivalent biologique (BEQ)
Dans un second temps, le facteur de concentration de l’échantillon correspondant au niveau d’effet
choisi, x %, obtenu avec ledit échantillon dans le cadre de l’essai (CF ) est déterminé. Conformément à la
x
définition 3.3, le facteur de concentration désigne le rapport de la concentration réelle de l’échantillon
à la concentration de l’échantillon d’eau d’origine, compte tenu de toutes les étapes d’enrichissement
et de dilution de l’échantillon. D’un point de vue quantitatif, si un échantillon est enrichi mille fois
par extraction en phase solide, le facteur de concentration final de l’échantillon, après sa dilution
au centième avec, par exemple, un milieu de croissance, est égal à 10. Si cet échantillon est soumis à
essai en analysant une série de six dilutions 1/2, les facteurs de concentration arrondis obtenus sont
les suivants: 10, 5, 2,5, 1,25, 0,62, 0,31 et 0,15. La concentration en équivalent biologique (BEQ) de
l’échantillon est finalement donnée par le rapport RC /CF .
x x
5 Mode opératoire
5.1 Généralités
De manière générale, les relations dose-effet de composés de références et d’échantillons (voir Article 1)
observées dans les essais sur les gènes rapporteurs et les essais de prolifération sont de type sigmoïde.
En fonction de la forme propre de la relation dose-effet, il faut choisir un modèle mathématique
[14],[15]
approprié pour l’ajustement. En général, un modèle logistique à cinq paramètres peut être
appliqué, comme illustré en 5.2.
Le mode opératoire de calcul des concentrations BEQ est composé, dans son ensemble, des étapes
suivantes, décrites en détail au paragraphe 5.2:
— évaluation de l’adéquation des données expérimentales pour le calcul d’une concentration en
équivalent biologique (voir 5.2.1);
— ajustement des données relatives à la relation dose-effet pour le composé de référence (voir 5.2.2);
— calcul de mesures de la qualité pour l’ajustement (voir 5.2.3);
— normalisation des données à partir du composé de référence et des échantillons (voir 5.2.4);
— calcul du niveau d’effet de x % du composé de référence et de la valeur de la RC correspondante
x
(voir 5.2.5);
— évaluation de la validité des données expérimentales pour le calcul d’une concentration en équivalent
biologique (voir 5.2.6);
— calcul du facteur de concentration de l’échantillon au niveau d’effet de x % par interpolation linéaire
(voir 5.2.7);
— calcul de la concentration en équivalent biologique (BEQ) (voir 5.2.8).
5.2 Mode opératoire de calcul des concentrations en équivalent biologique (BEQ)
5.2.1 Évaluation de l’adéquation des données expérimentales pour le calcul d’une
concentration en équivalent biologique (BEQ)
Pour évaluer la validité des données expérimentales pour le calcul des concentrations en équivalent
biologique (BEQ) (voir 5.2.6) à l’aide du mode opératoire décrit dans le présent document, il convient
d’effectuer un certain nombre de calculs. Il convient d’évaluer l’adéquation globale des données
expérimentales avant de mettre en œuvre le présent mode opératoire, en procédant de la manière
décrite ci-dessous. Utiliser uniquement des données expérimentales satisfaisant aux critères de
validation de la norme ou ligne directrice concernée relative au calcul des concentrations en équivalent
biologique (BEQ).
Se conformer aux recommandations suivantes pour évaluer l’adéquation globale des données:
a) au moins deux points de données supplémentaires par rapport au nombre de paramètres décrivant
la fonction logistique de la courbe sont nécessaires pour la relation dose-effet du composé de
référence, ce qui signifie que, dans le cas de la fonction logistique à cinq paramètres décrite en 5.2.2,
il faut sept points de données;
b) le plateau supérieur de la courbe sigmoïde représentant la relation dose-effet du composé de
référence est identifiable graphiquement, c’est-à-dire qu’il peut très bien être estimé à l’œil nu;
c) le plateau inférieur de la courbe sigmoïde représentant la relation dose-effet du composé de
référence est identifiable graphiquement, c’est-à-dire qu’il peut très bien être estimé à l’œil nu;
d) la courbe des mesures de l’effet des concentrations de l’échantillon soumis à essai est susceptible de
croiser la courbe du niveau d’effet choisi de x %.
La Figure 3 montre deux exemples donnés à titre indicatif pour illustrer l’évaluation de l’adéquation des
données expérimentales pour le calcul d’une concentration équivalente.
La Figure 3 a) illustre deux relations dose-effet du composé de référence qui ne conviennent pas pour
le calcul de concentrations en équivalent biologique (BEQ). Dans le cas de la courbe du haut (triangles
noirs, courbe de réponse élevée), le bas de la relation dose-effet n’est pas défini; dans le cas de courbe
du bas (carrés noirs, courbe de réponse faible), l
...








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