ISO 5815-1:2003

NORME ISO
INTERNATIONALE 5815-1
Première édition
2003-04-01


Qualité de l'eau — Détermination de la
demande biochimique en oxygène après
n jours (DBO ) —
n
Partie 1:
Méthode par dilution et ensemencement
avec apport d'allylthiourée
Water quality — Determination of biochemical oxygen demand after n
days (BOD ) —
n
Part 1: Dilution and seeding method with allylthiourea addition




Numéro de référence
ISO 5815-1:2003(F)
©
ISO 2003

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ISO 5815-1:2003(F)
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ISO 5815-1:2003(F)
Sommaire Page
Avant-propos. iv
Introduction . v
1 Domaine d'application. 1
2 Références normatives. 1
3 Termes et définitions . 2
4 Principe. 2
5 Réactifs. 2
6 Appareillage. 4
7 Conservation de l'échantillon . 5
8 Mode opératoire. 5
8.1 Prétraitement. 5
8.2 Préparation des solutions d'essai. 6
8.3 Essai à blanc . 7
8.4 Détermination. 7
8.5 Analyse de contrôle. 8
9 Calcul et expression des résultats. 8
9.1 Examen de la consommation en oxygène valable durant l'essai . 8
9.2 Calcul de la demande biochimique en oxygène après n jours (DBO ). 9
n
10 Cas particuliers. 9
11 Rapport d'essai. 10
Annexe A (informative) Méthodes d'incubation alternatives . 11
Annexe B (informative) Déterminations multiples . 13
Annexe C (informative) Justesse et fidélité . 14
Bibliographie . 16





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Avant-propos
L'ISO (Organisation internationale de normalisation) est une fédération mondiale d'organismes nationaux de
normalisation (comités membres de l'ISO). L'élaboration des Normes internationales est en général confiée
aux comités techniques de l'ISO. Chaque comité membre intéressé par une étude a le droit de faire partie du
comité technique créé à cet effet. Les organisations internationales, gouvernementales et non
gouvernementales, en liaison avec l'ISO participent également aux travaux. L'ISO collabore étroitement avec
la Commission électrotechnique internationale (CEI) en ce qui concerne la normalisation électrotechnique.
Les Normes internationales sont rédigées conformément aux règles données dans les Directives ISO/CEI,
Partie 2.
La tâche principale des comités techniques est d'élaborer les Normes internationales. Les projets de Normes
internationales adoptés par les comités techniques sont soumis aux comités membres pour vote. Leur
publication comme Normes internationales requiert l'approbation de 75 % au moins des comités membres
votants.
L'attention est appelée sur le fait que certains des éléments du présent document peuvent faire l'objet de
droits de propriété intellectuelle ou de droits analogues. L'ISO ne saurait être tenue pour responsable de ne
pas avoir identifié de tels droits de propriété et averti de leur existence.
L'ISO 5815-1 a été élaborée par le comité technique ISO/TC 147, Qualité de l'eau, sous-comité SC 2,
Méthodes physiques, chimiques et biochimiques.
Cette première édition de l'ISO 5815-1, ainsi que l'ISO 5815-2, annule et remplace l'ISO 5815:1989, qui a fait
l'objet d'une révision technique.
L'ISO 5815 comprend les parties suivantes, présentées sous le titre général Qualité de l'eau — Détermination
de la demande biochimique en oxygène après n jours (DBO ):
n
 Partie 1: Méthode par dilution et ensemencement avec apport d'allylthiourée
 Partie 2: Méthode pour échantillons non dilués
L'ISO 5815-1 est équivalente à la Norme européenne EN 1899-1.
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ISO 5815-1:2003(F)
Introduction
La présente partie de l’ISO 5815 est une version modifiée de l'ISO 5815:1989, Qualité de l'eau —
Détermination de la demande biochimique en oxygène après 5 jours (DBO ) — Méthode par dilution et
5
ensemencement.
Les durées d'incubation spécifiées dans la présente partie de l'ISO 5815 sont de 5 jours, comme dans
l'ISO 5815:1989 et comme appliquées dans de nombreux pays européens, ou de 7 jours comme appliquées
dans plusieurs pays nordiques durant de nombreuses années. Typiquement, une incubation de 7 jours
fournira des résultats de DBO plus élevés que pour une durée d'incubation de 5 jours.
Avec une période d'incubation de 5 jours, il est possible d'éviter de travailler le week-end si les échantillons
sont prélevés les mercredi, jeudi et vendredi. Avec une période d'incubation de 7 jours, les échantillons
prélevés les cinq premiers jours de la semaine peuvent être analysés sans travailler le week-end. Pour cette
raison, une incubation de 7 jours peut être considérée plus appropriée que l'incubation conventionnelle de
5 jours.
Une incubation de 7 jours, nouvelle et modifiée est décrite dans l'Annexe A. Les premières recherches
indiquent que les résultats de DBO obtenus par cette méthode modifiée sont identiques aux résultats obtenus
par la méthode de 5 jours décrite dans la présente partie de l'ISO 5815. Il est souhaité que plus de données
comparatives sur ces deux méthodes d'incubation soient obtenues dans les prochaines années, afin que la
méthode d'incubation de 7 jours modifiée soit complètement incluse lors de la révision de la présente partie
de l'ISO 5815.
Pour la détermination de la DBO des échantillons d’eaux, la méthode respirométrique décrite dans
n
l'ISO 9408 peut également être utilisée.
Dans la présente partie de l'ISO 5815, la limite de détermination, D , est définie comme

L
1
Dt=⋅21⋅s⋅+ (1)
L0,95( f) B
n
où
s est l'écart-type d'une série;
B
t est la valeur t de Student;
0,95( f )
f est les degrés de liberté pour la détermination de s ;
B
n est le nombre d'analyses pour la détermination du blanc dans une série analytique;
s est calculé à partir des déterminations d'échantillons réels avec une DBO proche de la limite de
B
détermination estimée D .
L
Dans le cas où la méthode ne nécessite pas de correction du blanc, le terme
1
1+ (2)
n
est supprimé.

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NORME INTERNATIONALE ISO 5815-1:2003(F)

Qualité de l'eau — Détermination de la demande biochimique en
oxygène après n jours (DBO ) —
n
Partie 1:
Méthode par dilution et ensemencement avec apport
d'allylthiourée
AVERTISSEMENT — Il convient que les personnes utilisant la présente partie de l'ISO 5815 soient
familières des pratiques courantes de laboratoire. La présente partie de l'ISO 5815 ne prétend pas
aborder tous les éventuels problèmes de sécurité liés à son utilisation. Il est de la responsabilité de
l’utilisateur d’établir des pratiques de santé et de sécurité appropriées et de s’assurer de la conformité
aux exigences réglementaires nationales.
1 Domaine d'application
La présente partie de l’ISO 5815 spécifie une méthode de détermination de la demande biochimique en
oxygène dans les eaux par dilution et ensemencement avec suppression de la nitrification.
Cette partie de l’ISO 5815 est applicable à tous les types d'eau dont la demande biochimique en oxygène est
supérieure ou égale à la limite de détermination de 3 mg/l d'oxygène (la limite de détermination) et ne
dépasse pas 6 000 mg/l d'oxygène. Pour des demandes biochimiques en oxygène de plus de 6 000 mg/l
d'oxygène, la méthode est encore applicable, mais les erreurs causées par les dilutions nécessaires peuvent
influencer la qualité analytique de la méthode d’essai et les résultats doivent être interprétés avec
circonspection.
Les résultats obtenus sont le produit d'une combinaison de réactions biochimiques et chimiques. Ils ne
possèdent pas le caractère exact et rigoureux tel que, par exemple, celui d'un processus chimique unique
bien défini. Ils fournissent cependant une indication qui permet d'estimer la qualité des eaux.
L'analyse peut être influencée par la présence de substances diverses. Celles qui sont toxiques pour les
micro-organismes telles que, par exemple, les bactéricides, les métaux toxiques ou le chlore libre, inhibent
l'oxydation biochimique. La présence d'algues ou de micro-organismes nitrificateurs peut entraîner des
résultats artificiellement élevés.
L'Annexe A décrit des périodes d'incubation alternatives.
L'Annexe B décrit des déterminations multiples qui peuvent être utilisées pour obtenir une fidélité accrue ou
démontrer la présence de substances toxiques vis-à-vis des micro-organismes.
L'Annexe C fournit des données de fidélité.
2 Références normatives
Les documents de référence suivants sont indispensables pour l'application du présent document. Pour les
références datées, seule l'édition citée s'applique. Pour les références non datées, la dernière édition du
document de référence s'applique (y compris les éventuels amendements).
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ISO 5815-1:2003(F)
ISO 3696:1987, Eau pour laboratoire à usage analytique — Spécification et méthodes d'essai
ISO 5813:1983, Qualité de l'eau — Dosage de l'oxygène dissous — Méthode iodométrique
ISO 5814:1990, Qualité de l'eau — Dosage de l'oxygène dissous — Méthode électrochimique à la sonde
ISO 6060:1989, Qualité de l'eau — Détermination de la demande chimique en oxygène
ISO 8245:1999, Qualité de l'eau — Lignes directrices pour le dosage du carbone organique total (COT) et du
carbone organique dissous (COD)
ISO 8467:1993, Qualité de l'eau — Détermination de l'indice de permanganate
3 Termes et définitions
Pour les besoins du présent document, les termes et définitions suivants s'appliquent.
3.1
demande biochimique en oxygène après n jours
DBO
n
concentration en masse d'oxygène dissous consommé dans des conditions spécifiées par l'oxydation
biochimique de matières organiques et/ou inorganiques dans l'eau. n est la durée d'incubation, égale à 5 jours
ou 7 jours
NOTE 1 Cette définition est adaptée de l'ISO 6107-2.
NOTE 2 Pour les besoins de la présente partie de l'ISO 5815, «oxydation biologique» a le même sens que «oxydation
biochimique».
4 Principe
Il est absolument essentiel que les essais conduits selon la présente partie de l'ISO 5815 soient effectués par
un personnel convenablement qualifié.
Prétraitement de l'échantillon d'eau à analyser et dilution avec différentes quantités d'eau de dilution enrichie
en oxygène dissous et contenant un ensemencement de micro-organismes aérobies, avec suppression de la
nitrification.
Incubation de l'échantillon à 20 °C pour une durée fixée de 5 jours ou 7 jours, dans l'obscurité, dans un flacon
entièrement rempli et fermé. Détermination de la concentration en oxygène dissous avant et après incubation.
Calcul de la masse d'oxygène consommé par litre d'échantillon.
5 Réactifs
Pour l'analyse, n'utiliser que des réactifs de qualité analytique reconnue.
5.1 Eau, de qualité 3 conformément à l'ISO 3696.
L'eau ne doit pas contenir plus de 0,01 mg/l de cuivre et doit être exempte de chlore et de chloramines.
5.2 Eau d'ensemencement, si l'échantillon ne contient pas en soi suffisamment de micro-organismes
adaptés.
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Une eau d'ensemencement, obtenue de l'une des manières suivantes, doit être utilisée:
a) eau résiduaire urbaine avec une DCO (demande chimique en oxygène mesurée selon l'ISO 6060) ne
dépassant pas 300 mg/l ou un COT (carbone organique total mesuré selon l'ISO 8245) ne dépassant pas
100 mg/l, prélevée dans une canalisation d'égout principal ou dans une canalisation d'égout d'une zone
résidentielle, exempte de contaminations industrielles significatives. Décanter l'eau ou la filtrer à travers
un filtre grossier;
b) eau de rivière ou de lac contenant des eaux résiduaires urbaines;
c) effluent décanté provenant d'une station de traitement d'eaux usées;
d) eau prélevée en aval du déversement de l'eau à analyser, ou eau contenant des micro-organismes
adaptés à l'eau à analyser et cultivés en laboratoire (dans le cas d'effluents industriels contenant des
substances difficilement dégradables);
e) matériau d'ensemencement disponible dans le commerce.
5.3 Solutions salines, conservées dans des bouteilles en verre de 0 °C à 4 °C dans l'obscurité.
Les solutions suivantes sont stables pendant 6 mois. Dès que les premiers signes de précipitation ou de
prolifération bactérienne apparaissent, il faut jeter les solutions.
5.3.1 Solution tampon de phosphate, pH 7,2.
Dissoudre 8,5 g de dihydrogénophosphate de potassium (KH PO ), 21,75 g d'hydrogénophosphate de
2 4
dipotassium (K HPO ), 33,4 g d'hydrogénophosphate de disodium heptahydraté (Na HPO ,7H O) et 1,7 g de
2 4 2 4 2
chlorure d'ammonium (NH Cl) dans environ 500 ml d'eau. Diluer à 1 000 ml et mélanger.
4
Il convient que la valeur de pH de cette solution tampon soit de 7,2 sans ajustement ultérieur.
5.3.2 Solution de sulfate de magnésium heptahydraté, ρ = 22,5 g/l.
Dissoudre 22,5 g de sulfate de magnésium heptahydraté (MgSO ,7H O) dans de l'eau. Diluer à 1 000 ml et
4 2
mélanger.
5.3.3 Solution de chlorure de calcium, ρ = 27,5 g/l.
Dissoudre 27,5 g de chlorure de calcium anhydre (CaCl ), ou une quantité équivalente (par exemple, si du
2
chlorure de calcium hydraté est utilisé: 36,4 g de CaCl ,2H O) dans de l'eau. Diluer à 1 000 ml et mélanger.
2 2
5.3.4 Solution de chlorure de fer(III) hexahydraté, ρ = 0,25 g/l.
Dissoudre 0,25 g de chlorure de fer(III) hexahydraté (FeCl ,6H O) dans de l'eau. Diluer à 1 000 ml et
3 2
mélanger.
5.4 Eau de dilution
Ajouter 1 ml de chaque solution saline (5.3.1, 5.3.2, 5.3.3 et 5.3.4) à environ 500 ml d'eau. Diluer à 1 000 ml
et mélanger. Porter la solution ainsi obtenue à une température d'environ 20 °C ± 2 °C et la maintenir à cette
température; aérer pendant au moins 1 h à l'aide d'un équipement approprié. Veiller à ne pas la contaminer
(voir 6.8), en particulier par addition de matières organiques, de métaux ou de substances oxydantes ou
réductrices, afin de s'assurer que la concentration en oxygène dissous est d'au moins 8 mg/l.
L'eau ne doit pas être sursaturée en oxygène. La laisser reposer 1 h dans un récipient débouché avant
utilisation. Utiliser cette solution dans les 24 h suivant la préparation et jeter le restant, à moins que
l'expérience du laboratoire et/ou des valeurs de contrôle montrent que l'eau peut être utilisée pendant une
période plus longue.
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5.5 Eau de dilution ensemencée
Ajouter, selon son origine, 5 ml à 20 ml d'eau d'ensemencent (5.2) par litre d'eau de dilution (5.5). Conserver
l'eau de dilution ensemencée ainsi obtenue à environ 20 °C. Préparer juste avant l'utilisation et jeter la
solution restante à la fin de la journée de travail, à moins que l'expérience du laboratoire et/ou des valeurs de
contrôle (8.5) montrent que l'eau de dilution ensemencée est valable pour une période plus longue.
La consommation en oxygène de l'eau de dilution ensemencée à une température de 20 °C pendant une
durée de n jours et qui représente la valeur du blanc (8.3) ne doit pas dépasser 1,5 mg/l d'oxygène.
5.6 Solution d'acide chlorhydrique (HCl) ou d'acide sulfurique (H SO ), c(H SO ) ≈ 0,25 mol/l,
2 4 2 4
c(HCl) ≈ 0,50 mol/l, ou de concentration appropriée.
5.7 Solution d'hydroxyde de sodium (NaOH), ρ ≈ 20 g/l ou de concentration appropriée.
5.8 Solution de sulfite de sodium (Na SO ), ρ ≈ 50 g/l ou de concentration appropriée.
2 3
5.9 Acide glutamique-glucose, solution de contrôle.
Sécher du D-glucose anhydre (C H O ) et de l'acide L-glutamique (C H NO ) pendant 1 h à (105 ± 5) °C.
6 12 6 5 9 4
Peser (150 ± 1) mg de chacune des substances, les dissoudre dans de l'eau, diluer à 1 000 ml et mélanger.
La demande théorique en oxygène de cette solution est de 307 mg/l d'oxygène [la DBO empirique est de
5
(210 ± 20) mg/l d'oxygène et la DBO est de (225 ± 20) mg/l d'oxygène].
7
Préparer cette solution juste avant utilisation et jeter la solution restante à la fin de la journée de travail. La
solution peut également être congelée en petites quantités. La solution décongelée doit être utilisée aussitôt
après décongélation.
5.10 Solution d'allylthiourée (ATU), ρ = 1,0 g/l.
Dissoudre 200 mg d'allylthiourée (C H N S) dans de l'eau, diluer à 200 ml et mélanger. Conserver la solution
4 8 2
à 4 °C. La solution est stable pendant au moins deux semaines. Ce composé est toxique et il convient par
conséquent de le manipuler avec précaution.
6 Appareillage
La verrerie utilisée doit être complètement propre et exempte de composés adsorbés toxiques ou de
composés biodégradables et elle doit être protégée contre toute contamination.
6.1 Flacons d'incubation, flacons DBO, avec bouchons, par exemple de 250 ml à 300 ml ou de 100 ml à
125 ml, de préférence cylindro-conique, ou récipients équivalents.
Il est important de nettoyer soigneusement les flacons avant leur utilisation. Si la méthode iodométrique
(ISO 5813) pour déterminer l'oxygène dissous est utilisée, il est normalement suffisant de rincer le flacon
plusieurs fois avec de l'eau du robinet et ensuite avec de l'eau déionisée. Cependant, si la méthode
électrochimique (ISO 5814) est utilisée, un nettoyage plus strict est nécessaire, par exemple de la manière
suivante: Verser 5 ml à 10 ml d'une solution de lavage dans le flacon vide (par exemple 2,5 g d'iode et 12,5 g
d'iodure de potassium par litre d'acide sulfurique à 1 % (fraction volumique), bien agiter afin de recouvrir les
parois du flacon. Laisser reposer 15 min, jeter la solution, rincer soigneusement avec de l'eau du robinet et
ensuite avec de l'eau déionisée.
6.2 Récipient pour l'eau de dilution, en verre ou en plastique.
Des mesures doivent être prises afin de s'assurer que le récipient est toujours propre et exempt de
proliférations de micro-organismes. Vérifier que les récipients en matière plastique ne fournissent pas de
valeurs de blanc trop élevées (8.3).
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6.3 Incubateur, pouvant être maintenu à (20 ± 2) °C.
6.4 Appareil pour la détermination de la concentration en oxygène dissous, conformément à
l'ISO 5813 ou à l'ISO 5814.
6.5 Matériel de réfrigération de 0 °C à 4 °C, pour le transport et la conservation des échantillons.
6.6 Récipient de dilution, un flacon en verre avec bouchon, gradué à intervalles de 2,5 ml à 10 ml, dont la
capacité dépend du volume de l'échantillon dilué, ou tout récipient approprié permettant une dilution
convenable.
6.7 Équipement pour l'aération, une bouteille d'air sous pression ou un compresseur, par exemple.
La qualité de l'air doit être telle que l'aération n'entraîne aucune contamination, notamment par l'ajout de
matières organiques, de substances oxydantes ou réductrices, ou de métaux. Si une contamination est
suspectée, l'air doit être filtré et lavé.
7 Conservation de l'échantillon
Conserver l'échantillon immédiatement après le prélèvement dans un flacon rempli jusqu'aux bords, fermé
hermétiquement, à une température comprise entre 0 °C et 4 °C jusqu'à réalisation de l'analyse. Commencer
la détermination de la DBO le plus tôt possible et dans les 24 h suivant la fin du prélèvement de l'échantillon.
n
En ce qui concerne la congélation des échantillons, voir les cas particuliers dans l'Article 10.
S'assurer que les récipients d'échantillonnage ne présentent pas des valeurs de blanc trop élevées.
8 Mode opératoire
8.1 Prétraitement
8.1.1 Neutralisation de l'échantillon
Si la valeur de pH de l'échantillon après dilution ne se situe pas entre 6 et 8, neutraliser l'échantillon, après
avoir procédé, si besoin, à une prédilution et après avoir déterminé, par un essai séparé, le volume
nécessaire de solution d'acide chlorhydrique (5.6) ou de solution d'hydroxyde de sodium (5.7) à ajouter. Ne
pas tenir compte des précipités qui pourraient apparaître.
8.1.2 Présence de chlore libre et/ou de chlore combiné
Éliminer le chlore libre ou combiné présent dans l'échantillon en ajoutant le volume nécessaire de solution de
sulfite de sodium (5.8). Veiller à ne pas en ajouter en excès.
NOTE Des méthodes pour la détermination du chlore libre et du chlore combiné sont données dans l'ISO 7393-1 et
l'ISO 7393-2.
8.1.3 Homogénéisation
Pour les travaux de routine, l'homogénéisation par broyage des particules avec, par exemple, un mixeur de
laboratoire, n'est pas recommandée mais envisager son utilisation pour analyser un échantillon contenant de
grosses particules et nécessitant un facteur de dilution élevé.
Lorsque les échantillons ont été congelés (voir l'Article 10), l'homogénéisation doit avoir lieu après
décongélation des échantillons.
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8.1.4 Présence d'algues
Envisager de filtrer les échantillons contenant des algues afin d'éviter des résultats trop élevés. Un filtre de
porosité de 1,6 µm est approprié. Une filtration peut entraîner un changement radical des valeurs de DBO.
C'est pourquoi on doit y procéder que si cela paraît nécessaire pour l'évaluation de la qualité de l'eau. En cas
de filtration, la taille des pores du filtre doit figurer dans le rapport d'essai.
Tableau 1 — Dilutions typiques pour la détermination de la DBO
n
a b
DBO attendue
Facteur de dilution Exemples d'eaux
n
mg/l d'oxygène
3 à 6 entre 1,1 et 2 R
4 à 12 2 R, E
10 à 30 5 R, E
20 à 60 10 E
40 à 120 20 S
100 à 300 50 S, C
200 à 600 100 S, C
400 à 1 200 200 I, C
1 000 à 3 000 500 I
2 000 à 6 000 1 000 I
a
Volume de l'échantillon dilué/volume de la prise d'essai.
b
R: Eau de rivière;
E: Eaux usées urbaines purifiées biologiquement;
S: Eaux usées urbaines décantées ou effluent industriel faiblement contaminé;
C: Eaux usées urbaines brutes;
I: Effluent industriel fortement contaminé.

8.2 Préparation des solutions d'essai
Porter l'échantillon (ou l'échantillon prétraité) à une température de (20 ± 2) °C et, si nécessaire (selon
l'origine de l'échantillon), agiter dans un récipient rempli à moitié afin d'éliminer une éventuelle sursaturation
en oxygène.
Verser un volume connu de l'échantillon (ou de l'échantillon prétraité), la prise d'essai, dans le récipient de
dilution (6.6), ajouter 2 ml de solution d'allylthiourée (5.10) par litre d'échantillon dilué et remplir jusqu'au trait
avec de l'eau de dilution ensemencée (5.5). Si le facteur de dilution à utiliser est supérieur à 100, procéder à
une dilution en série en deux étapes ou plus.
Mélanger doucement afin d'éviter de piéger des bulles d'air.
Il convient que la consommation en oxygène soit d’au moins 2 mg/l et que la concentration en oxygène après
incubation soit d’au moins 2 mg/l. Il convient que le taux de dilution soit tel qu'après incubation, la
concentration résiduelle en oxygène dissous se situe entre un tiers et deux tiers de la concentration initiale.
Vu la difficulté pour choisir le degré de dilution exact, plusieurs dilutions différentes sont recommandées
variant selon le facteur de dilution et encadrant la dilution correspondant à la DBO attendue (voir Tableau 1).
n
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ISO 5815-1:2003(F)
Les déterminations du carbone organique total (COT) (voir l'ISO 8245), de l'indice de permanganate (voir
l’ISO 8467) ou de la demande chimique en oxygène (DCO) (voir l'ISO 6060) peuvent donner, sur ce point,
des informations très utiles.
Le Tableau 2 indique des intervalles caractéristiques pour R, le rapport de la DBO au COT, à l'indice de
n
permanganate ou à la DCO, en fonction du type d'échantillon.
Tableau 2 — Valeurs caractéristiques des rapports R
Carbone organique Indice de Demande chimique en
total permanganate oxygène
DBO/COT DBO/Indice DBO/DCO
(voir l'ISO 8245) (voir l'ISO 8467) (voir l'ISO 6060)
Eaux usées non traitées 1,2 à 2,8 1,2 à 1,5 0,35 à 0,65
Eaux usées traitées biologiquement 0,3 à 1,0 0,5 à 1,2 0,20 à 0,35

Il est recommandé de choisir une valeur appropriée de R à partir du Tableau 2 pour calculer la valeur de
DBO attendue:
n
DBO = R · y
n
où y est la demande chimique en oxygène, l'indice de permanganate ou la valeur du COT.
Il convient de veiller à ce que les échantillons d'essai soient représentatifs.
Si la présence de substances toxiques pour les micro-organismes est suspectée, il convient de préparer
plusieurs dilutions différentes de l'échantillon. Si les résultats de DBO dépendent de la dilution, on ne peut
faire état des résultats que si l'on a trouvé un domaine de dilution pour lequel le résultat est indépendant de la
dilution. Dans ces cas, des déterminations multiples (voir l'Annexe B) peuvent être appliquées.
NOTE 1 Dans certains échantillons on peut remarquer une inhibition par le chlore, même après l'élimination. Elle est
due aux composés de chlore qui n'ont pas été éliminés.
NOTE 2 La suppression de la nitrification n'est pas possible dans tous les cas. Une augmentation significative de
l'apport d'ATU au-delà de 2 mg/l peut influencer la titration selon Winkler (voir l'ISO 5813).
8.3 Essai à blanc
Réaliser un essai à blanc parallèl
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