Water quality — Determination of dissolved anions by liquid chromatography of ions — Part 3: Determination of chromate, iodide, sulfite, thiocyanate and thiosulfate

Qualité de l'eau — Dosage des anions dissous par chromatographie des ions en phase liquide — Partie 3: Dosage des ions chromate, iodure, sulfite, thiocyanate et thiosulfate

La présente partie de l'ISO 10304 spécifie des méthodes pour le dosage des anions dissous: -- iodure, thiocyanate et thiosulfate (article 4); -- sulfite (article 5); -- chromate (article 6). Un prétraitement approprié de l'échantillon (par exemple dilution) et l'emploi d'un détecteur conductimétrique (CD), d'un détecteur UV (UV) ou d'un détecteur ampérométrique (AD) rendent possible le dosage dans les domaines de travail donnés dans le tableau 1.

General Information

Status
Published
Publication Date
13-Aug-1997
Current Stage
9093 - International Standard confirmed
Start Date
02-Jul-2024
Completion Date
12-Feb-2026

Relations

Effective Date
12-Feb-2026
Effective Date
06-Jun-2022

ISO 10304-3:1997 - Overview

ISO 10304-3:1997 is an International Standard for water quality analysis that specifies ion chromatography methods for the determination of selected dissolved anions in aqueous solutions. Part 3 covers the determination of chromate, iodide, sulfite, thiocyanate and thiosulfate using liquid (ion) chromatography with appropriate sample pretreatment, eluents and detectors. The standard defines working ranges, detector options, calibration practices and quality checks needed for routine laboratory use.

Key topics and technical requirements

  • Analytes covered: chromate (CrO4 2–), iodide (I–), sulfite (SO3 2–), thiocyanate (SCN–), thiosulfate (S2O3 2–).
  • Detection methods: conductivity detector (CD) - often used with suppressors; UV detectors (direct or indirect); amperometric detectors (AD). Working detector voltages and wavelengths are specified qualitatively (e.g., UV λ ranges and AD oxidation potentials depend on eluent pH).
  • Working ranges (examples from Table 1):
    • Chromate: 0.05–50 mg/L (UV λ = 365 nm)
    • Iodide: 0.1–50 mg/L (CD or UV λ = 205–236 nm; AD ≈ 0.7–1.1 V)
    • Sulfite: 0.1–50 mg/L (CD) and 0.5–50 mg/L (UV λ = 205–220 nm)
    • Thiocyanate, Thiosulfate: 0.1–50 mg/L (CD/UV/AD options)
  • Chromatographic performance: minimum column peak resolution requirement R ≥ 1.3 for targeted ions.
  • Eluents and reagents: examples include sodium carbonate/sodium hydrogen carbonate eluents (with optional 4‑hydroxybenzonitrile to improve elution/tailing), and phthalic acid–based eluents for non‑suppressed systems. Eluent degassing and short storage (renew every 2–3 days) are recommended.
  • Calibration & quality assurance: calibration and linear working-range determination per ISO 8466-1; validation checks and replicate determinations when required.
  • Sample handling: recommends appropriate pretreatment (e.g., dilution) and references ISO 5667 series for sampling, preservation and handling.

Practical applications and users

ISO 10304-3 is intended for analytical laboratories performing environmental and water‑quality monitoring, including:

  • Municipal and industrial water testing labs
  • Environmental monitoring agencies assessing surface, ground or process waters
  • Laboratories validating anion concentrations in drinking water, wastewater streams and industrial effluents (in conjunction with other ISO 10304 parts)
  • Instrument vendors and method developers implementing ion‑chromatography methods and QA procedures

The standard helps users select detectors, eluents and operating ranges, and ensures comparability and traceability of dissolved-anion measurements.

Related standards

  • ISO 10304-1, -2, -4 (other parts of the same series)
  • ISO 5667-1/-2/-3 (sampling guidance, preservation and handling)
  • ISO 8466-1 (calibration and evaluation of analytical methods)

Keywords: ISO 10304-3, water quality, ion chromatography, dissolved anions, chromate, iodide, sulfite, thiocyanate, thiosulfate, conductivity detector, UV detector, amperometric detector, eluents, sample pretreatment.

Standard

ISO 10304-3:1997 - Water quality -- Determination of dissolved anions by liquid chromatography of ions

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ISO 10304-3:1997 - Qualité de l'eau -- Dosage des anions dissous par chromatographie des ions en phase liquide

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Frequently Asked Questions

ISO 10304-3:1997 is a standard published by the International Organization for Standardization (ISO). Its full title is "Water quality — Determination of dissolved anions by liquid chromatography of ions — Part 3: Determination of chromate, iodide, sulfite, thiocyanate and thiosulfate". This standard covers: La présente partie de l'ISO 10304 spécifie des méthodes pour le dosage des anions dissous: -- iodure, thiocyanate et thiosulfate (article 4); -- sulfite (article 5); -- chromate (article 6). Un prétraitement approprié de l'échantillon (par exemple dilution) et l'emploi d'un détecteur conductimétrique (CD), d'un détecteur UV (UV) ou d'un détecteur ampérométrique (AD) rendent possible le dosage dans les domaines de travail donnés dans le tableau 1.

La présente partie de l'ISO 10304 spécifie des méthodes pour le dosage des anions dissous: -- iodure, thiocyanate et thiosulfate (article 4); -- sulfite (article 5); -- chromate (article 6). Un prétraitement approprié de l'échantillon (par exemple dilution) et l'emploi d'un détecteur conductimétrique (CD), d'un détecteur UV (UV) ou d'un détecteur ampérométrique (AD) rendent possible le dosage dans les domaines de travail donnés dans le tableau 1.

ISO 10304-3:1997 is classified under the following ICS (International Classification for Standards) categories: 13.060.50 - Examination of water for chemical substances. The ICS classification helps identify the subject area and facilitates finding related standards.

ISO 10304-3:1997 has the following relationships with other standards: It is inter standard links to EN ISO 10304-3:1997, ISO 5019-5:1984. Understanding these relationships helps ensure you are using the most current and applicable version of the standard.

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Standards Content (Sample)


INTERNATIONAL IS0
STANDARD 10304-3
First edition
1997-08- 15
Water quality -
Determination of dissolved
anions by liquid chromatography of ions -
Part 3:
Determination of chromate, iodide, sulfite,
thiocyanate and thiosulfate
Qua/it6 de I’eau - Dosage des anions dissous par chromatographie des ions
en phase liquide -
Parfie 3: Dosage des ions chromate, iodure, sulfite, thiocyanate et thiosulfate
Reference number
IS0 10304-3: 1997(E)
IS0 10304=3:1997(E)
Contents
1 Scope *.*.
. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
2 Normative references
3 Principle . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .*.
. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2
4 Determination of iodide, thiocyanate and thiosulfate
4.1 Reagents .
...............................................................................................................................................................................
4.2 Apparatus
..........................................................................................................................................................................
4.3 Interferences
................................................................................................................................... 9
4.4 Sampling and sample pretreatment
4.5 Procedure .
II
4.6 Calculation .
4.7 Expression of results .
4.8 Test report .
..............................................................................................................
5 Determination of sulfite
5.1 Reagents .
5.2 Apparatus .
5.3 Interferences .
5.4 Sampling and sample pretreatment .
5.5 Procedure .
.............................................................................................................................................................................
5.6 Calculation
............................................................................................................................................................
5.7 Expression of results
.............................................................................................................................................................................. 16
5.8 Test report
........................................................................................................ 16
6 Determination of chromate
6.1 Reagents .
6.2 Apparatus . 18
.......................................................................................................................................................................... 18
6.3 Interferences
................................................................................................................................... 18
6.4 Sampling and sample pretreatment
6.5 Procedure .
6.6 Calculation .
6.7 Expression of results .
6.8 Test report .
7 Precision . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .~. 19
. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .*. 20
Annex A (informative) Interlaboratory trials
Annex B (informative) Bibliography . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .*. 22
0 IS0 1997
Unless otherwise specified, no part of this publication may be
All rights reserved.
reproduced or utilized in any form or by any means, electronic or mechanical, including
photocopying and microfilm, without permission in writing from the publisher.
International Organization for Standardization
Case Postale 56 l CH-1211 Geneve 20 l Switzerland
Internet central @ iso.ch
x.400 c=ch; a=400net; p=iso; o=isocs; s=central
Printed in Switzerland
ii
0 IS0
IS0 10304=3:1997(E)
Foreword
IS0 (the International Organization for Standardization) is a worldwide federation of national standards bodies (IS0
member bodies). The work of preparing International Standards is normally carried out through IS0 technical
committees. Each member body interested in a subject for which a technical committee has been established has
the right to be represented on that committee. International organizations, governmental and non-governmental, in
liaison with ISO, also take part in the work. IS0 collaborates closely with the International Electrotechnical
Commission (IEC) on all matters of electrotechnical standardization.
Draft International Standards adopted by the technical committees are circulated to the member bodies for voting.
Publication as an International Standard requires approval by at least 75 % of the member bodies casting a vote.
International Standard IS0 10304-3 was prepared by Technical Committee ISOITC 147, Water qualify, SC 2,
Physical, chemical and biochemical methods.
IS0 10304 consists of the following parts, under the general title Water quality - Determination of dissolved anions
by liquid chromatography of ions:
- Part I: Determination of fluoride, chloride, bromide, nitrate, nitrite, orfhophosphate and sulfate in water with
low contamination
- Part 2: Determination of bromide, chloride, nitrate, nitrite, orfhophosphate and sulfate in waste water
Par? 3: Determination of chromate, iodide, sulfite, thiocyana te and thiosulfa te
Part 4: Determination of chlorate, chloride and chlorite in water with low contamination
Annexes A and B of this part of IS0 10304 are for information only.

IS0 10304=3:1997(E) @ IS0
Introduction
The essential minimum requirements of an ion chromatographic system applied within the scope of this part of IS0 10304 are the
following:
a) Resolution of the column: For the anion to be determined it is essential that the
peak resolution does not fall below R= I,3 (4.2.2,
figure 3)
b) Method of detection: measurement of the electrical conductivity with or
1)
wi thout suppressor device
2) spectrometric measurement (UVnllS), directly or
indirectly
3) amperometric direct detection
c) Applicability of the method:
Working ranges according to table 1
d) Calibration (4.51): Calibration and determination of the linear working range
(see IS0 8466-l)
Guaranteeing the analytical quality: Validity check of the calibration function. Replicate
determinations if necessary.
The diversity of the appropriate and suitable assemblies procedural steps depending on them permit a description
only.
For further information on the analytical technique, see reference [I].

INTERNATIONAL STANDARD @ IS0 IS0 10304-3: 1997(E)
Water quality - Determination of dissolved anions by liquid chromatography of ions -
Part 3: Determination of chromate, iodide, sulfite, thiocyanate and thiosulfate
1 Scope
This part of IS0 10304 specifies methods for the determination in aqueous solution of the dissolved anions
- iodide, thiocyanate and thiosulfate (clause 4);
- sulfite (clause 5);
- chromate (clause 6).
An appropriate pretreatment of the sample (e.g. dilution) and the application of a conductivity detector (CD), UV detector
(UV) or amperometric detector (AD) make the working ranges given in table 1 feasible.
Table 1 - Applicable working ranges
Working range ‘) Detector
Anion
0,05 mg/l to 50 mg/l
Chromate (CrO,), clause 6 UV (h = 365 nm)
Iodide (I), clause 4 0,l mg/l to 50 mg/l CD or UV (h = 205 nm to 236 nm)
AD (approximately 0,7 V to I,1 V)
Sulfite (SO,), clause 5 0,l mg/l to 50 mg/l CD
0,5 mg/l to 50 mg/l UV (h = 205 nm to 220 nm)
Thiocyanate (SCN), clause 4 0,l mg/l to 50 mg/l
CD or UV (h = 205 nm to 220 nm)
AD (approximately 0,7 V to I,1 V)
Thiosulfate (S,O,), clause 4 0,l mg/l to 50 mg/l CD or UV (h = 205 nm to 220 nm)
AD (approximately 0,7 V to I,1 V)
‘) The working range is restricted by the exchange capacity of the columns. Dilute the sample into the working range if
necessary.
2 Normative references
The following standards contain provisions which, through reference in this text, constitute provisions of this part of IS0
10304. At the time of publication, the editions indicated were valid. All standards are subject to revision, and parties to
agreements based on this International Standard are encouraged to investigate the possibility of applying the most recent
editions of the standards indicated below. Members of IEC and IS0 maintain registers of currently valid International
Standards.
IS0 5667- 1: 1980 Water quality - Sampling - Part I: Guidance on the design of sampling
programmes.
IS0 5667-2:1991 Water quality - Sampling - Part 2: Guidance on sampling techniques.
IS0 5667-3: 1994 Water quality - Sampling - Part 3: Guidance on the preservation and handling of
samples.
IS0 8466-I:1990
Water quality - Calibration and evaluation of analytical methods and estimation of
performance characteristics -Part 7: Statistical evaluation of the linear calibration
function.
IS0 10304-I:1992
Water quality - Determination of dissolved fluoride, chloride, nitrite,
orthophosphate, bromide, nitrate, and sulfate ions, using liquid chromatography
of ions - Part 7: Method for water with low contamination.
IS0 10304-2: 1995 Water quality - Determination of dissolved anions by liquid chromatography of
ions - Part 2: Determination of bromide, chloride, nitrate, nitrite, orthophosphate
and sulfate in waste water.
IS0 10304-3: 1997(E) 0 IS0
3 Principle
3.1 Separation of ions is carried out by liquid chromatography using a separating column. A low capacity anion
exchanger is used as the stationary phase, and usually aqueous solutions of salts of weak monobasic and dibasic
acids as mobile phases (eluent, see 4.1.16, 5.1.4, 6.1.9).
3.2 The addition of organic agents, such as 4-hydroxybenzonitrile (see 4.1.16.2.2, 4.3.4), or organic solvents to the
eluent can be used to speed up the elution or reduce the tailing effects, especially for the analysis of the more
strongly polarizable ions iodide, thiocyanate and thiosulfate.
3.3 Detection is by conductivity (CD), UV and amperometric detectors (AD).
3.3.1 When using conductivity detectors it is essential that the eluents have a sufficiently low conductivity. For this
reason, conductivity detectors are often combined with suppressor devices (cation exchangers) which will reduce
the conductivity of the eluents and transform the sample species into their respective acids.
3.3.2 UV detection measures either the absorption directly (see table 1) or, in the case of anions which are
transparent in the UV-range, the decrease in the background absorption caused by a UV-absorbing eluent is
measured (indirect measurement). If indirect UV-detection is used, the measuring wavelength depends on the
composition of the eluent.
3.3.3 Amperometric detectors measure the quantity of current caused by the oxidation of anions. The oxidation
voltage required for the anions in question depends on the pH value of the eluent.
3.4 The concentration of the respective anions is determined by a calibration of the overall procedure. Particular
cases may require calibration by means of standard addition (spiking).
4 Determination of iodide, thiocyanate and thiosulfate
Follow the instructions given in clause 4 to make the working ranges given in table 1 feasible.
4.1 Reagents
Use only reagents of recognized analytical grade, if commercially available. Carry out weighing with an accuracy of 1% of
the nominal mass. The water shall have an electrical conductivity of < 0,Ol mS/m and shall not contain particulate matter
of a particle size > 0,45 pm. An increase of the electrical conductivity due to an uptake of carbon dioxide does not interfere
with the determination.
4.1.1 Sodium hydrogen carbonate, NaHCO,
4.1.2 Sodium carbonate, Na,CO,
4.1.3 Phthalic acid, C,H,O,
4.1.4 Disodium tetraborate, Na,B,O,
4.1.5 Gluconic acid, sodium salt, C,H,,NaO,
4.1.6 Methanol, CH,OH
4.1.7 Boric acid, H,BO,
4.1.8 Glycerol, C,H,O,
0 IS0
IS0 10304=3:1997(E)
4.1.9 Acetonitrile, CH,CN
4.1 .lO Sodium hydroxide solution, c( NaOH) = 0,l mol/l
4.1.11 4=hydroxybenzonitrile, C,H,NO
4.1.12 Tris(hydroxymethyl)aminomethane, C,H,,NO,
4.1.13 Sodium thiosulfate, pentahydrate, Na,S,O, , 5 H,O
4.1.14 Sodium iodide, Nal
4.1.15 Potassium thiocyanate, KSCN
4.1.16 Eluents
4.1.16.1 General
Different eluents are used, their choice depending on the type of separating column and detector. Therefore, follow the
column manufacturer’s. instructions for the exact composition of the eluent. The eluent compositions described in 4.1.16.2
and 4.1.16.3 are examples only.
A selection of reagents for some commonly used eluents is presented in 4.1.1 to 4.1.12.
Degas all eluents or prepare eluents using degassed water (4.1). Take steps to avoid any renewed gas pick-up during
operation (e.g. by helium superposition). In order to minimize the growth of bacteria or algae, store eluents in the dark and
renew every 2 to 3 days.
4.1.16.2 Examples of eluents for ion chromatography using the suppressor technique
F pressor te lchn ique, so Idium hydroxide and solutions of salts of weakly dissociated acid s, such
or the application of the
sup
car sodium hydrogen ca
a s sodium carbonate/sod ium hydrogen bonate, rbonate, and sodi urn tetraborate are used.
4.1.16.2.1 Sodium carbonate/sodium hydrogen carbonate concentrate
The addition of the following e luent concentrate to the sample has proved to be su ccessf u I for sample pret reatm ent and
see 4.1.16.2 .2).
eluent preparation (
- Place 36 g of sodium carbonate (4.1.2) and 36,l g of sodium hydrogen carbonate (4.1.1) in a graduated flask of
nominal capacity 1 000 ml, and dilute to volume with water (4.1).
The solution contai ns 0,34 mo l/l of sodium carbonate and 0,43 mol/l of sodium hydrogen carbonate. This solution is stable
4 “C to 6 “C.
for several months if stored at
4.1.16.2.2 Sodium carbonate/sodium hydrogen carbonate eluent
The following eluent has proved to be applicable for the determination of iodide, thiocyanate, thiosulfate:
- Place 50 ml of the concentrate (4.1.16.2.1) in a graduated flask of nominal capacity 5 000 ml, add water (4.1), add
750 mg of 4-hydroxybenzonitrile (4.1.11) and dilute to volume with water (4.1) ‘)‘).
The solution contains 0,0034 mol/l of sodium carbonate, 0,0043 mol/l of sodium hydrogen carbonate and 0,0013 mol/l of
4-hydroxybenzonitrile. Renew the eluent every 2 to 3 days (4.1.16).
The concentrations of iodide, thiocyanate and thiosulfate in these calibration solutions are 1 mg/l, 2 mg/l, 3 mg/l, 4 mg/l,
5 mg/l, 6 mg/l, 7 mg/l, 8 mg/l, 9 mg/l and 10 mg/l respectively.
Prepare the calibration solutions on the day of use.
I) 4-hydroxybenzonitrile can be added to speed up the elution or reduce the tailing effects, for the analysis of iodide, thiocyanate and
thiosulfate (4) but it can cause interferences with the determination of iodide, thiocyanate and thiosulfate when the UV detector is
used (4.3.4).
2) TO improve the solubility of 4-hydroxybenzonitrile the substance can be dissolved in a small quantity of methanol or ethanol and, after
addition to the eluent concentrate the solution should be stirred overnight.
IS0 10304=3:1997(E) 0 IS0
4.1.16.3 Examples of eluents for ion chromatography without using the suppressor technique
For ion chromatography without suppressor devices, use salt solutions, e.g. potassium hydrogenphthalate,
4-hydroxybenzoate, sodium borate/gIuconate, and sodium benzoate. The concentration of the salts is usually in the range
of 0,0005 to 0,Ol mol/l. Concentrate and eluent solutions are prepared as described in 4.1.16.2.1 or 4.1.16.2.2 respectively.
4.1.16.3.1 Phthalic acid concentrate
The addition of the following eluent concentrate to the sample has proved to be successful for sample pretreatment and
eluent preparation (see 4.1 J6.3.2).
- Place 4,485 g of phthalic acid (4.1.3) in a graduated flask of nominal capacity 1 000 ml, dissolve in approximately
800 ml of water (4.1), add 100 ml of acetonitrile (4.1.9) and dilute to volume with water (4.1). Adjust to a pH of 4
with tris(hydroxymethyl)aminomethane (4.1.12; can be added either in solid form or as solution, e.g. 1 mol/l).
The solution contains 0,027 mol/l phthalic acid and approximately 10 % of acetonitrile.
4.1.16.3.2 Phthalic acid eluent
The following eluent can be used for the determination of iodide, thiocyanate and thiosulfate:
- Pipette 100 ml of the concentrate (4.1.16.3.1) into a graduated flask of nominal capacity 1 000 ml and dilute to
volume with water (4.1).
The solution contains 0,0027 mol/l of phthalic acid and approximately 1 % of acetonitrile. The pH of the solution should be
in the range of 4,0 to 4,5 3, . Renew the eluent every 2 to 3 days (4.1.16).
4.1.16.3.3 Borate/gluconate concentrate
The following eluent concentrate has proved useful for the preparation of the eluent (4.1.16.3.4) and the pretreatment of
the samples.
-Weigh 16 g of gluconic acid, sodium salt (4.1.5), 18 g of boric acid (4.1.7), and 25 g of disodium tetraborate
(4.1.4) into a graduated flask, nominal capacity 1 000 ml, dissolve in approximately 500 ml of water (4.1),
add 250 ml of glycerol (4.1.8) and dilute to volume with water (4.1).
The solution contains 0,073 mol/l of gluconic acid, 0,291 mol/l of boric acid, 0,124 mol/l of disodium tetraborate, and
approximately 25 % of glycerol. The solution is stable for several months if stored at 4 “C to 6 “C.
4.1.16.3.4 Borate/gluconate eluent
The following eluent can, for example, be used for the determination of iodide, thiocyanate and thiosulfate.
- Place 500 ml of water (4.1) in a graduated flask of nominal capacity 1 000 ml, add 23,5 ml of the concentrate
(4.1.16.3.3), 120 ml of acetonitrile (4.1.9) and dilute to volume with water (4.1).
The solution contains 0,0017 mol/l of gluconic acid, 0,0068 mol/l of boric acid, 0,0029 mol/l of disodium tetraborate,
approximately 0,6 % of glycerol, and approximately 12 % of acetonitrile. The pH of this solution should be in the range of
8.3 to 8.7 4). Renew the eluent every 2 to 3 days (4.1.16).
4.1.17 Stock solutions
Prepare stock solutions of concentration 1 000 mg/l for each of the anions iodide, thiocyanate and thiosulfate.
- Dissolve the appropriate mass of each of the substances, prepared as stated in table 2, in a small quantity of
water in graduated flasks of nominal capacity 1 000 ml. Dilute to volume with water. The solutions are stable for
several months if stored at 4 OC to 6 OC in polyethylene bottles.
Alternatively, use commercially available stock solutions of the required concentration.
3) pH values <4,0 or >4,5 can increase retention times or cause a peak resolution R < I,3 (for criteria for R see 4.2.2).
4) pH values <8,3 or >8,7 can increase retention times or cause a peak resolution R c I,3 (for criteria for R see 4.2.2).
0 IS0 IS0 10304=3:1997(E)
Table 2 - Mass portion and pretreatment for stock solutions
Pretreatment by drying’)
Duration
Anion Salt Temperature Mass of portion
h “C
9/l
Iodide Nal 3 103 to 106 1,1812
1 103 to 106 I,6732
Thiocyanate KSCN
1 Thiosulfate ‘) 1 Na,S,O,. 5H,O 1 Do not drv I 2.2134 I
‘) Let the substance cool in a sealed desiccator after drying.
‘) Titre adjustment is necessary prior to use.
4.1.18 Mixed standard solutions
Depending upon the concentrations expected, prepare standard solutions of different anion composition and
concentration from the stock solutions (4.1.17). The risk of changes in concentration caused by interaction with the vessel
material increases with decreasing anion concentration. Store the standard solutions in polyethylene vessels.
To avoid cross-contamination, always use the same vessels for the same anions and concentrations.
4.1.18.1 Iodide, thiocyanate, thiosulfate mixed standard solution I
The mass concentration of this solution is as follows:
p (I, SCN, S,O,) = 100 mg/l
- Pipette 10 ml each of the stock standard solution, prepared as described, in 4.1.17 into a graduated flask of
nominal capacity 100 ml and dilute to volume with water (4.1).
Store the solution in a polyethylene vessel. The solution is stable for about one week if stored at 4 “C to 6 “C.
4.1.18.2 Iodide, thiocyanate, thiosulfate mixed standard solution II
The mass concentration of this solution is as follows:
p (I, SCN, S,O,) = 10 mg/l
- Pipette 10 ml of mixed anion standard solution I (4.1.18.1) into a graduated flask of nominal capacity 100 ml and
dilute to volume with water (4.1).
The solution is stable for only 1 to 2 days, even if stored at 4 “C to 6 “C.
Prepare further standard solutions by appropriate dilutions of mixed standard solution I (4.1.18.1).
4.1.19 Anion calibration solutions
Depending on the anion concentration expected, use the stock solution (4.1.17) or the mixed standard solutions (4.1.18.1
and 4.1.18.2) to prepare 5 to 10 calibration solutions covering the expected working range as evenly as possible.
For example, proceed as follows for the range I,0 mg/l to 10 mg/l for the anions iodide, thiocyanate and thiosulfate.
- Into a series of graduated flasks of nominal capacity 100 ml, pipette 1 ml, 2 ml, 3 ml, 4 ml, 5 ml, 6 ml, 7 ml, 8 ml,
9 ml and 10 ml of the mixed standard solution I (4.1.18.1), dilute to volume with water and add 0,l ml of the
sodium hydroxide solution5j6) (4.1.10).
4.1.20 Blank solution
Fill a graduated flask of nominal capacity 100 ml, up to volume with water and add 0,l ml of sodium hydroxide solution
(4.1.10)5)6).
5) Alternatively, use the eluent concentrate according to 4.1 .I 6.2.1 or 4.1.16.3.3.
6) The addition of 0,l ml of sodium hydroxide solution or 0,l ml of eluent concentrate will reduce the concentration of the reference
solution. This effect is compensated for by the equal treatment of the sample.
IS0 10304-3: 1997(E)
4.2 Apparatus
Usual laboratory apparatus and
4.2.1 Ion chromatography system, complying with the quality requirements of 4.2.2. In general it shall consist of the
following components (see figure I):
4.2.1 .l Ion chromatography apparatus, comprising
-
eluent reservoir;
- pump, suitable for HPLC;
- sample injection system incorporating a sample loop (e.g. sample loop of volume 50 ul);
- precolumn (see 4.5.2) containing e.g. the same resin material as the analytical separator column or packed with
a macroporous polymer;
- separator column with the specified separating performance (4.2.2);
- conductivity detector (with or without a suppressor device assembly) or UV detector (e.g. spectrophotometer;
190 nm to 400 nm) or amperometric detector;
- Recording device (e.g. recorder, integrated with printer).
r
Sample injection
system
I
,
Separator
Eluent Pump p Precolumn e Detector - Waste
column
Registration and
evaluation
r-l
Figure 1 - Schematic representation of an ion chromatography system
4.2.2 Quality requirements for the separator column
The separator column is the essential part of the ion chromatographic system. Its separation performance depends on
several operating factors, such as column material and type of eluent. Within the scope of this standard, use only those
separator columns that yield a baseline-resolved separation of all the components of the injected ions (e.g. iodide,
thiocyanate and thiosulfate; see figure 2) at a concentration level of 1 mg/l each. If only some of the anions shown in
figure 2 have to be determined, this requirement is applicable to those anions. For chromatograms of samples and
standard solutions of higher concentrations, the resolution to the nearest (interfering) peak (see figure 3) shall not fall
below R = I,3 [see equation (I)].
0 IS0 IS0 10304=3:1997(E)
SCN-
I I I I
Time, min
NOTE: Elution sequence and retention times can vary, depending on the type of column and composition of the eluent.
Figure 2 - Example of a chromatogram of a column conforming to this part of IS0 10304
I
fR2
-
Time, s
Graphical representation of the parameters to calculate the peak resolution R
Figure 3 -
IS0 10304-3: 1997(E) 0 IS0
Calculate the peak resolution R using equation (1):
2 (tR2 - tR])
. . .
(1)
R2,I =
fw2 + w/)
is the resolution for the peak pair 2,l;
R2 1
t ‘ is the retention time, in seconds, of peak 1;
Rl
t is the retention time, in seconds, of peak 2;
R2
is the peak width, in seconds, on the time axis of peak 1;
?
1 is the peak width, in seconds, on the time axis of peak 2.
w2
4.2.3 Additional equipment, including the following:
- drying oven;
- desiccator;
- graduated flasks, of nominal capacities 100 ml, 1 000 ml and 5 000 ml;
- graduated flasks, of nominal capacity 100 ml and made of plastics, to be used for low concentrations
(e.g. L 0,l mg/l);
- graduated pipettes, of nominal capacity 1 ml to 10 ml or microlitre syringes;
-
membrane filtering apparatus with membrane filters of mean pore size 0,45 pm;
-
cartridges or columns with non-polar phases (e.g. RP Cl8 or polyvinylpyrrolidone respectively) to be used for
sample preparation;
- cation exchanger in the Ba-form (cartridge);
- cation exchanger in the H-form (cartridge).
4.3 Interferences
4.3.1 Organic acids, such as mono- or dicarboxylic acids, can interfere.
4.3.2 Cross-sensitivities (lack of resolution) in the determination of thiocyanate and thiosulfate are observed rarely,
even in the case of large differences in concentration between the anions.
4.3.3 The presence of sulfate can cause interference with the determination of iodide. Remove sulfate with the aid of
special exchangers (4.4.2).
4.3.4 The presence of organic agents in the eluent (3.2 and 4.1.16.2.2) can cause interferences with the determination
of e.g. iodide, thiocyanate or thiosulfate when the UV detector is used.
4.3.5 Solid materia I and organ
...


NORME ISO
INTERNATIONALE 10304-3
Première édition
1997-08-I 5
Qualité de l’eau - Dosage des anions
dissous par chromatographie des ions en
phase liquide -
Partie 3:
Dosage des ions chromate, iodure, sulfite,
thiocyanate et thiosulfate
Water guality - Determination of dissolved anions by liquid
chromatography of ions -
Part 3: Determination of chromate, iodide, sulfite, thiocyana te and
thiosulfa te
Numéro de référence
I SO 10304-3: 1997(F)
ISO 10304=3:1997(F)
Sommaire
............................................................................................................................................
1 Domaine d’application
...........................................................................................................................................
2 Références normatives
3 Principe .
.............................................................................................
4 Dosage des ions iodure, thiocyanate et thiosulfate
4.1 Réactifs .
4.2 Appareillage .
4.3 Interférences .
............................................................................................
4.4 Échantillonnage et prétraitement de l’échantillon
..................................................................................................................................................
4.5 Mode opératoire
.................................................................................................................................................................
4.6 Calculs
...................................................................................................................................
4.7 Expression des résultats
...................................................................................................................................................
4.8 Rapport d’essai
.........................................................................................................................................
5 Dosage des ions sulfite
5.1 Réactifs .
5.2 Appareillage .
5.3 Interférences .
..........................................................................................
5.4 Échantillonnage et prétraitement de l’échantillon
..................................................................................................................................................
5.5 Mode opératoire
5.6 Calculs .
................................................................................................................................... 17
5.7 Expression des résultats
5.8 Rapport d’essai .
6 Dosage des ions chromate .
0 ISO 1997
Droits de reproduction réservés. Sauf prescription différente, aucune partie de cette publi-
cation ne peut être reproduite ni utilisée sous quelque forme que ce soit et par aucun pro-
cédé, électronique ou mécanique, y compris la photocopie et les microfilms, sans l’accord
écrit de l’éditeur.
Organisation internationale de normalisation
Case postale 56 l CH-121 1 Genève 20 l Suisse
Internet central @ iso.ch
c=ch; a=400net; p=iso; o=isocs; s=central
x.400
Imprimé en Suisse
ii
ISO 10304=3:1997(F)
0 ISO
................................................................................................................................................................
6.1 Réactifs
........................................................................................................................................................
6.2 Appareillage
6.3 Interférences .
..........................................................................................
6.4 Échantillonnage et prétraitement de l’échantillon
6.5 Mode opératoire .
.................................................................................................................................................................
6.6 Calculs
...................................................................................................................................
6.7 Expression des résultats
...................................................................................................................................................
6.8 Rapport d’essai
7 Fidélité .
.......................................................................................................
Annexe A (informative) Essai interlaboratoire
..................................................................................................................... 23
Annexe B (informative) Bibliographie
. . .
III
0 ISO
ISO 10304=3:1997(F)
Avant-propos
L’ISO (Organisation internationale de normalisation) est une fédération mondiale d’organismes nationaux de
normalisation (comités membres de I’ISO). L’élaboration des Normes internationales est en général confiée aux
comités techniques de I’ISO. Chaque comité membre intéressé par une étude a le droit de faire partie du comité
technique créé à cet effet. Les organisations internationales, gouvernementales et non gouvernementales, en
liaison avec I’ISO participent également aux travaux. L’ISO collabore étroitement avec la Commission
électrotechnique internationale (CEI) en ce qui concerne la normalisation électrotechnique.
Les projets de Normes internationales adoptés par les comités techniques sont soumis aux comités membres pour
vote. Leur publication comme Normes internationales requiert l’approbation de 75 % au moins des comités
membres votants.
La Norme internationale ISO 10304-3 a été élaborée par I’ISOTTC 147. Qualité de /‘eau, sous-comité SC 2,
Méthodes physiques, chimiques et biochimiques.
L’ISO 10304 comprend les parties suivantes, présentées sous le titre général Qualité de /‘eau - Dosage des
anions dissous par chromatographie des ions en phase liquide:
- Partie 1: Méthode applicable pour les eaux faiblement contaminées
- Parfie 2: Dosage des ions bromure, chlorure, nitrate, nitrite, onthophosphate et sulfate dans les eaux usées
- Parfie 3: Dosage des ions chromate, iodure, sulfite, thiocyanate et thiosulfa te
- Partie 4: Dosage des ions chlorate, chlorure et chlorite dans des eaux faiblement contaminées
Les annexes A et B de la présente partie de I’ISO 10304 sont données uniquement à titre d’information.
iv
0 ISO
ISO 10304=3:1997(F)
Introduction
Les exigences essentielles minimales d’un système de chromatographie ionique à appliquer dans le cadre de la
présente partie de I’ISO 10304 sont les suivantes:
a) Résolution de la colonne: II est essentiel pour I’anion à doser que la résolution du
pic ne soit pas inférieure à R = 1,3 (voir 4.2.2, figure 3)
b) Méthode de détection: 1) mesurage de la conductivité électrique, respective-
ment avec ou sans réacteur post-colonne
2) mesurage spectrométrique (UWvisible),
directement ou indirectement
détection ampérométrique directe
3)
c) Applicabilité de la méthode: Domaine de travail selon le tableau 1
d) Étalonnage (4.5.1): Étalonnage et dosage dans le domaine de linéarité de
réponse (voir I’ISO 8466-l)
e) Garantie de qualité analytique: Vérification de la validité de la fonction d’étalonnage.
Répéter les dosages si nécessaire.
La diversité des appareillages appropriés et compatibles et des opérations du mode opératoire qui en découlent ne
permettent qu’une description globale.
Pour plus d’informations sur la technique analytique, se reporter au document de référence [l].

Page blanche
ISO 10304-3: 1997(F)
NORME INTERNATIONALE @ ISO
- Dosage des anions dissous par
Qualité de l’eau
chromatographie des ions en phase liquide -
Partie 3:
Dosage des ions chromate, iodure, sulfite, thiocyanate et thiosulfate
1 Domaine d’application
La présente partie de I’ISO 10304 spécifie des méthodes pour le dosage des anions dissous:
- iodure, thiocyanate et thiosuifate (article 4);
- sulfite (article 5);
- chromate (article 6).
Un prétraitement approprié de l’échantillon (par exemple dilution) et l’emploi d’un détecteur conductimétrique (CD),
d’un détecteur UV (UV) ou d’un détecteur ampérométrique (AD) rendent possible le dosage dans les domaines de
travail donnés dans le tableau 1.
Tableau 1 - Domaines de travail applicables
Anion Domaine de travail ‘1 Détecteur
Chromate (CrO,), article 6 0,05 mg/l à 50 mg/l
UV (A = 365 nm)
I
CD ou UV (a = 205 nm à 236 nm)
Iodure (1), article 4 0,l mg/l à 50 mg/l
AD (environ 0,7 V à 1 ,l V)
0,l mg/l à 50 mg/l CD
Sulfite (SO,), article 5
UV (a = 205 nm à 220 nm)
0,5 mg/1 à 50 mg/l
CD ou UV (A = 205 nm à 220 nm)
0,l mg/l à 50 mg/l
Thiocyanate (SCN), article 4
AD (environ 0,7 V à 1 ,l V)
CD ou UV (a = 205 nm à 220 nm)
Thiosulfate (SO,), article 4 0,l mg/l à 50 mg/l
AD (environ 0,7 V à 1,l V)
1) Le domaine de travail est limité par la capacité d’échange des colonnes. Une dilution de l’échantillon dans le
domaine de travail peut s’avérer nécessaire.

e
0 ISO
ISO 10304=3:1997(F)
2 Références normatives
Les normes suivantes contiennent des dispositions qui, par suite de la référence qui en est faite, constituent des
dispositions valables pour la présente partie de I’ISO 10304. Au moment de la publication, les éditions indiquées
étaient en vigueur. Toute norme est sujette à révision et les parties prenantes des accords fondés sur la présente
partie de I’ISO 10304 sont invitées à rechercher la possibilité d’appliquer les éditions les plus récentes des normes
indiquées ci-après. Les membres de la CEI et de I’ISO possèdent le registre des Normes internationales en vigueur
à un moment donné.
ISO 5667-l :1980, Qualité de l’eau - Échantillonnage - Partie 1: Guide général pour l’établissement des
programmes d’échantillonnage.
ISO 5667-2:1991, Qualité de l’eau - Échantillonnage - Partie 2: Guide général sur les techniques
d’échantillonnage.
ISO 5667-3:1994, Qualité de l’eau - Échantillonnage - Partie 3: Guide général pour la conservation et la
manipulation des échantillons.
Étalonnage et évaluation des méthodes d’analyse et estimation des
ISO 8466-l :1990, Qualité de /‘eau -
caractères de performance - Parfie 1: Évaluation statistique de la fonction linéaire d’étalonnage.
Dosages des ions fluorure, chlorure, nitrite, orthophospha te, bromure, nitrate
ISO 10304-I : 1992, Qualité de /‘eau -
et sulfate dissous, par chromatographie des ions en phase liquide - Partie 1: Méthode applicable pour les eaux
faiblement contaminées.
ISO 10304-2:1995, Qualité de l’eau - Dosage des anions dissous par chromatographie des ions en phase
liquide - Partie 2: Dosage des ions bromure, chlorure, nitrate, nitrite, orlhophospha te et sulfate dans les eaux
usées.
3 Principe
3.1 Séparation des anions par chromatographie en phase liquide au moyen d’une colonne de séparation.
Utilisation d’un échangeur d’anions de faible capacité comme phase stationnaire et, en général, de solutions
aqueuses de sels de mono- ou diacides faibles comme phases mobiles (éluants, voir 4.1.16, 5.1.4 et 6.1.9).
3.2 L’addition d’agents organiques, tels que I’hydroxy-4 benzonitrile (voir 4.1.16.2.2, 4.3.4), ou de solvants
organiques à I’éluant peut être utilisée pour accélérer l’élution ou réduire les effets de traînée des pics, notamment
pour l’analyse des ions fortement polarisables tels que les ions iodure, thiocyanate et thiosulfate.
3.3 Détection par détecteurs conductimétrique (CD), UV et ampérométrique (AD).
3.3.1 Lorsqu’on utilise des détecteurs conductimétriques, il est primordial que la conductivité des éluants soit
suffisamment faible. Pour cette raison, ces détecteurs sont souvent associés à des réacteurs post-colonne
(échangeurs de cations) servant à diminuer la conductivité des éluants et transformer les espèces de l’échantillon
en acides correspondants.
3.3.2 La détection par UV mesure soit directement l’absorption (voir le tableau 1) soit, en cas d’anions
transparents aux UV, la diminution de l’absorption du fond causé par un éluant absorbant les UV (mesurage
indirect). En cas de détection indirecte par UV, la longueur d’onde du mesurage dépend de la composition de
I’éluant.
3.3.3 Les détecteurs ampérométriques mesurent l’intensité du courant généré par l’oxydation des anions. Le
potentiel d’oxydation requis pour les anions concernés dépend de la valeur du pH de I’éluant.
La concentration des anions correspondants est déterminée
34 . par un étalonnage global de la procédure. Des
cas particuliers peuvent nécessiter un étalonnage par addition d’un étalon (ajout dosé).
0 ISO ISO 10304-3: 1997(F)
4 Dosage des ions iodure, thiocyanate et thiosulfate
Suivre les instructions de l’article 4 afin de pouvoir effectuer les dosages dans le domaine de travail donné dans le
tableau 1.
4.1 Réactifs
Utiliser uniquement des réactifs de qualité analytique reconnue, s’ils sont disponibles dans le commerce. Effectuer
les pesées avec une précision de l’ordre de 1 % de la masse nominale. L’eau utilisée doit avoir une conductivité
électrique inférieure à 0,l mS/m et ne doit pas contenir de particules de diamètre supérieur à 0,45 Frn. Un
accroissement de conductivité résultant de la dissolution de dioxyde de carbone ne perturbe pas le dosage.
4.1 .l Hydrogénocarbonate de sodium, NaHCO,
4.1.2 Carbonate de sodium, NaJO,
4.1.3 Acide phtalique, C,H,O,
4.1.4 Tétraborate de sodium, Na,B,O,
4.1.5 Acide gluconique, sel de sodium, C,H,,NaO,
4.1.6 Méthanol, CH,OH
4.1.7 Acide borique, H,BO,
4.1.8 Glycérol, C,H,O,
4.1.9 Acétonitrile, CH,CN
4.1 .lO Hydroxyde de sodium, solution, c(NaOH) = 0,l mol/1
4.1 .ll Hydroxy-4 benzonitrile, C,H,NO
4.1.12 Tri(hydroxyméthyl)aminométhane, C,H,,NO,
4.1 .13 Thiosulfate de sodium pentahydraté, Na,S,0,,5H,O
4.1.14 Iodure de sodium, Nal
4.1 .15 Thiocyanate de potassium, KSCN
4.1 .16 Éluants
4.1 .16.1 Généralités
Divers éluants sont utilisés, le choix dépendant du type de colonne de séparation et de détecteur employés. II
convient donc de suivre les instructions du constructeur de la colonne pour définir la composition exacte de I’éluant.
Les compositions d’éluants décrites en 4.1 .16.2 et 4.1 .16.3 ne sont données qu’à titre d’exemples.
Une sélection de réactifs pour quelques éluants couramment utilisés est présentée en 4.1 .l à 4.1.12.
Dégazer tous les éluants ou les préparer avec de l’eau dégazée (4.1). Veiller à empêcher toute redissolution
ultérieure de gaz durant l’opération (par exemple par superposition d’hélium). Pour éviter la prolifération de
bactéries ou d’algues, conserver les éluants à l’obscurité et les renouveler tous les deux ou trois jours.

0 ISO
ISO 10304=3:1997(F)
4.1 .16.2 Exemples d’éluants pour chromatographie ionique avec réaction post-colonne
Pour la chromatographie ionique avec réaction post-colonne, on utilise de l’hydroxyde de sodium et des solutions
salines d’acides faiblement dissociés, par exemple carbonate de sodium/hydrogénocarbonate de sodium,
hydrogénocarbonate de sodium et tétraborate de sodium.
4.1 A6.2.1 Solution concentrée de carbonate de sodium/hydrogénocarbonate de sodium
L’addition de la solution concentrée d’éluant suivante à l’échantillon donne des résultats satisfaisants pour le
prétraitement de l’échantillon et la préparation de I’éluant (voir 4.1 .16.2.2).
Placer, dans une fiole jaugée de 1 000 ml, 36 g de carbonate de sodium (4.1.2) et 36,l g d’hydrogénocarbonate de
sodium (4.1 .l) et compléter au volume avec de l’eau (4.1).
Cette solution contient 0,34 mol/1 de carbonate de sodium et 0,43 mol/1 d’hydrogénocarbonate de sodium. Cette
solution reste stable pendant plusieurs mois si elle est conservée entre 4 OC et 6 OC.
4.1.16.2.2 Éluant carbonate de sodium/hydrogénocarbonate de sodium
L’éluant suivant donne des résultats satisfaisants pour le dosage des iodures, thiocyanates et thiosulfates.
Placer, dans une fiole jaugée de 5 000 ml, 50 ml de solution concentrée (4.1.16.2.1), ajouter de l’eau (4.1), ajouter
750 mg d’hydroxy-4 benzonitrile (4.1 .ll) et compléter au volume avec de l’eau (4.1). ‘1 2,
Cette solution contient 0,003 4 mol/1 de carbonate de sodium, 0,004 3 mol/1 d’hydrogénocarbonate de sodium et
0,001 3 mol/1 d’hydroxy-4 benzonitrile. Renouveler I’éluant tous les deux ou trois jours (4.1 .16).
4.1 A6.3 Exemples d’éluants pour chromatographie ionique sans réaction post-colonne
Pour la chromatographie ionique sans réaction post-colonne, on utilise des solutions salines, par exemple
d’hydrogénophtalate de potassium, d’hydroxy-4 benzoate, de borate/gluconate de sodium et de benzoate de
sodium. La concentration des sels est généralement comprise entre 0,000 5 mol/1 et 0,Ol mol/l. La solution
concentrée et I’éluant sont préparés comme décrit respectivement en 4.1 .16.2.1 et 4.1 .16.2.2.
4.1 .16.3.1 Solution concentrée d’acide phtalique
L’addition de la solution concentrée d’éluant suivante à l’échantillon donne des résultats satisfaisants pour le
prétraitement de l’échantillon et la préparation de I’éluant (voir 4.4.16.3.2).
Placer, dans une fiole jaugée de 1 000 ml, 4,485 g d’acide phtalique (4.1.3), les dissoudre dans environ 800 ml
d’eau (4.1), ajouter 100 ml d’acétonitrile (4.1.9) et compléter au volume avec de l’eau (4.1). Ajuster le pH à 4 à l’aide
de tri(hydroxyméthyl) aminométhane (4.1.12; qui peut être ajouté en suspension ou sous forme de solution, par
exemple à 1 mol/l).
Cette solution contient 0,027 mol/1 d’acide phtalique et environ 10 % d’acétonitrile.
4.1 .16.3.2 Éluant acide phtalique
L’éluant suivant peut être utilisé pour le dosage des iodures, thiocyanates et thiosulfates.
Pipetter 100 ml de la solution concentrée (4.1 .16.3.1) dans une fiole jaugée de 1 000 ml et compléter au volume
avec de l’eau (4.1).
1) L’hydroxy-4 benzonitrile peut être ajouté à I’éluant afin d’accélérer l’élution ou de réduire les effets de traînée des pics pour le
dosage des iodures, thiocyanates et thiosulfates (article 4). Cependant des interférences sont possibles si un détecteur UV (4.3.4)
est utilisé pour le dosage des iodures, thiocyanates et thiosulfates.
2) Pour améliorer la solubilité de I’hydroxy-4 benzonitrile, la substance peut être dissoute dans une petite quantité de méthanol ou
d’éthanol et, après addition à la solution concentrée de I’éluant, il convient d’agiter la solution toute une nuit.
0 ISO ISO 10304-3: 1997(F)
Cette solution contient 0,002 7 mol/1 d’acide phtalique et environ 1 % d’acétonitrile. II convient que le pH de la
solution soit compris entre 4,0 et 45 3). Renouveler I’éluant tous les deux ou trois jours (4.1.16).
4.1.16.3.3 Solution concentrée de borate/gluconate
La solution concentrée d’éluant suivante donne des résultats satisfaisants pour la préparation de Muant
(4.1 .16.3.4) et le prétraitement des échantillons.
Placer dans une fiole jaugée de 1 000 ml, 16 g d’acide gluconique, sel de sodium (4.1.5), 18 g d’acide borique
(4.1.7) et 25 g de tétraborate de sodium (4.1.4), les dissoudre dans environ 500 ml d’eau (4.1), ajouter 250 ml de
glycérol (4.1.8) et compléter au volume avec de l’eau (4.1).
Cette solution contient 0,073 mol/1 d’acide gluconique, 0,291 mol/1 d’acide borique, 0,124 mol/1 de tétraborate de
sodium et environ 25 % de glycérol. Cette solution reste stable pendant plusieurs mois si elle est conservée entre
4 “C et 6 OC.
4.1.16.3.4 Éluant boratelgluconate
L’éluant suivant peut, par exemple, être utilisé pour le dosage des iodures, thiocyanates et thiosulfates.
Placer, dans une fiole jaugée de 1 000 ml, 500 ml d’eau (4.1), ajouter 23,5 ml de solution concentrée (4.1.16.3.3),
120 ml d’acétonitrile (4.1.9) et compléter au volume avec de l’eau (4.1).
Cette solution contient 0,001 7 mol/1 d’acide gluconique, 0,006 8 mol/1 d’acide borique, 0,002 9 mol/1 de tétraborate
de sodium, environ 0,6 % de glycérol et environ 12 % d’acétonitrile. II convient que le pH de cette solution soit
compris entre 8,3 et 8,7 4). Renouveler I’éluant tous les deux ou trois jours (4.1.16).
4.1.17 Solutions mères
Préparer pour chacun des anions iodure, thiocyanate et thiosulfate une solution mère de concentration égale à
1 000 mg/l.
Dans des fioles jaugées de 1 000 ml, dissoudre dans un peu d’eau la masse appropriée de chaque substance,
prétraitée comme indiqué dans le tableau 2. Compléter au volume avec de l’eau. Les solutions restent stables
pendant plusieurs mois si elles sont conservées entre 4 “C et 6 “C dans des flacons en polyéthylène.
On peut également utiliser des solutions mères disponibles dans le commerce de la concentration voulue.
Tableau 2 - Prétraitement et concentrations en masse des solutions mères
Prétraitement par séchage ‘1
Durée Température Concentration
Anion Sel
h C
dl
Iodure Nal 3 103 à 106 1,181 2
Thiocyanate KSCN 1 103 à 106 1,673
Thiosulfate *) Na,S,0,,5H,O Séchage non recommandé 2,213 4
1) Après séchage, laisser les sels refroidir dans un dessiccateur hermétique.
2) L’ajustement du titre est nécessaire avant utilisation.
3) Des valeurs de pH inférieures à 4,0 ou supérieures à 4,5 peuvent entraîner une augmentation des temps de rétention ou
provoquer une diminution de la résolution R < 1,3 (pour le critère de résolution R, voir 4.2.2).
4) Des valeurs de pH inférieures à 8,3 ou supérieures à 8,7 peuvent entraîner une augmentation des temps de rétention ou
provoquer une diminution de la résolution R < 1,3 (pour le critère de résolution R, voir 4.2.2).
0 ISO
ISO 10304=3:1997(F)
4.1 .18 Solutions mixtes étalons
Suivant les concentrations présumées, préparer à partir des solutions mères (4.1.17) des solutions étalons de
compositions variées en anions et de concentrations différentes. Le risque d’un changement des concentrations dû
à des interactions avec le matériau du récipient est d’autant plus élevé que la concentration des anions est faible.
Conserver les solutions étalons dans des flacons en polyéthylène.
Pour éviter toute contamination croisée, utiliser toujours les mêmes flacons pour une solution de composition et de
concentration données.
4.1.18.1 Solution mixte étalon 1 d’iodure, de thiocyanate et de thiosulfate
La concentration en masse de cette solution est la suivante:
~(1, SCN, S,O,) = 100 mg/1
Pipetter 10 ml de chacune des soluti ons mères préparées comme indiqué en 4.1.17 dans une fiole jaugée
de
100 ml. Compléter au volume avec de l’eau (4.1).
Conserver cette solution dans un flacon en polyéthylène. La solution reste stable pendant environ une semaine si
elle est conservée entre 4 “C et 6 OC.
4.1.18.2 Solution mixte étalon II d’iodure, de thiocyanate et de thiosulfate
La concentration en masse de cette solution est la suivante:
~(1, SCN, S,O,) = 10 mg/1
Pipetter 10 ml de la solution mixte étalon 1 (4.1 .18.1) dans une fiole jaugée de 100 ml. Compléter au volume avec
de l’eau (4.1).
La solution reste stable seulement pendant un à deux jours, même si elle est conservée entre 4 “C et 6 “C.
Préparer d’autres solutions étalons par des dilutions appropriées de la solution mixte étalon 1 (4.1 .18.1).
4.1 .19 Solutions d’étalonnage d’anions
Suivant la concentration présumée des anions dans l’échantillon, utiliser les solutions mères (4.1.17) ou les
solutions mixtes étalons (4.1 .18.1 et 4.1 .18.2) pour préparer 5 à 10 solutions d’étalonnage couvrant, de façon aussi
équidistante que possible, le domaine de dosage supposé.
Par exemple, procéder comme suit pour des concentrations comprises entre 1,0 mg/1 et 10 mg/1 pour les anions
iodure, thiocyanate et thiosulfate.
Pipetter des volumes de 1 ml, 2 ml, 3 ml, 4 ml, 5 ml, 6 ml, 7 ml, 8 ml, 9 ml et 10 ml de la solution mixte étalon I
(4.1.18.1) dans une série de fioles jaugées de 100 ml. Compléter au volume avec de l’eau et ajouter 0,l ml de
solution d’hydroxyde de sodium 5, 6, (4.1 .lO).
Les concentrations des anions iodure, thiocyanate et thiosulfate dans ces solutions d’étalonnage sont
respectivement de 1 mg/l, 2 mg/l, 3 mg/l,
4 mg/l, 5 mg/l, 6 mg/l, 7 mg/l, 8 mg/l, 9 mg/1 et 10 mg/l.
Préparer les solutions d’étalonnage le jour de leur emploi.
5) On peut également utiliser la solution concentrée d’éluant conformément à 4.1.16.2.1 ou 4.1.16.3.3.
6) L’addition de 0,l ml de solution d’hydroxyde de sodium ou de 0,l ml de solution concentrée d’éluant diminuera la concentration
de la solution de référence. Cet effet est compensé par le fait que l’échantillon subit le même traitement.
0 ISO ISO 10304-3: 1997(F)
4.1.20 Solution d’essai à blanc
Remplir d’eau jusqu’au trait repère une fiole jaugée de 100 ml et ajouter 0,l ml de solution d’hydroxyde de sodium
(4.1 .lO) 5, Y
4.2 Appareillage
Matériel courant de laboratoire et ce qui suit.
4.2.1 Système de chromatographie ionique, satisfaisant aux exigences de qualité définis dans 4.2.2. En
général, il doit comprendre les éléments suivants (voir la figure 1).
4.2.1 .l Chromatographe pour échange d’ions, comprenant les éléments suivants:
- réservoir d’éluant;
- pompe adaptée pour CLHP;
- dispositif d’injection de l’échantillon incorporant une boucle d’échantillonnage (par exemple de 50 ~1);
- précolonne (voir 4.5.2) contenant par exemple la même résine que la colonne de séparation analytique ou
garnie d’un polymère macroporeux;
- colonne de séparation satisfaisant aux exigences de performance spécifiées (4.2.2);
réacteur post-colonne) ou détecteur UV (par exemple
- détecteur conductimétrique (avec ou sans
spectrophotomètre, 190 nm à 400 nm) ou détecteur ampérométrique;
- dispositif d’enregistrement (par exemple enregistreur, intégrateur avec imprimante).
Dispositif d’injection
de l’échantillon
4 -9
Colonne de
Éluant I Pompe Précolonne Détecteur - 1 Rejets
séparation
*
d’enregistrement
Figure 1 - Représentation schématique d’un système de chromatographie ionique
4.2.2 Exigences de qualité pour la colonne de séparation
La colonne de séparation constitue l’élément le plus important du système de chromatographie ionique. Son pouvoir
de séparation dépend de divers facteurs opératoires tels que le matériau de la colonne et le type d’éluant utilisé.
Dans le cadre de la présente partie de I’ISO 10304, utiliser uniquement des colonnes qui permettent de séparer sur
la ligne de base tous les composés des ions injectés (par exemple iodures, thiocyanates, thiosulfates; voir la
figure 2) à un niveau de concentration de 1 mg/1 pour chacun. Si uniquement certains des anions représentés à la
figure 2 doivent être dosés, cette exigence est applicable à ces anions-ci. Pour réaliser des chromatogrammes des
échantillons et des solutions étalons de concentrations plus élevées, la résolution du pic (interférant) le plus proche
(voir la figure 3) ne doit pas être inférieure à R = 1,3 [voir l’équation (l)].

ISO 10304=3:1997(F) 0 ISO
Temps,min
NOTE - L’ordre d’élution et les temps de rétention peuvent varier suivant le type de colonne utilisée et la composition de
I’éluant.
Figure 2 - Exemple d’un chromatogramme obtenu avec une colonne conforme à la présente partie de
I’ISO 10304
Figure 3 - Représentation graphique des paramètres permettant de calculer la résolution des pics, R
Calculer la résolution du pic, R, à l’aide de l’équation (1):
2 (b?* +RI)
. . .
R2,l = (1)
(W2 +Y)
R, 1 est la résolution de la paire de pics 2 et 1;
est le temps de rétention du pic 1, en secondes;
tR1
est le temps de rétention du pic 2, en secondes;
tR2
0 ISO
ISO 10304=3:1997(F)
7, est la largeur à la base du pic 1, sur l’axe des temps, en secondes;
w1
w*7) est la largeur à la base du pic 2, sur l’axe des temps, en secondes.
4.2.3 Matériel complémentaire, comprenant:
étuve;
dessiccateur;
- fioles jaugées de capacités nominales égales à 100 ml, 1 000 ml et 5 000 ml;
- fioles jaugées de capacité nominale égale à 100 ml, en plastique, à utiliser pour les faibles concentrations (par
exemple < 0,l mg/l);
pipettes graduées, de capacités nominales allant de 1 ml à 10 ml ou microseringues;
appareil de filtration sur membrane avec membranes de porosité moyenne de 0,45 prn;
- cartouches ou colonnes à phases non polaires à utiliser pour la préparation de l’échantillon (par exemple
RP Cl 8 ou polyvinylpyrrolidone respectivement);
- échangeur à cations sous forme de baryum (Ba*+) (cartouche);
- échangeur à cations sous forme d’hydrogène (H+) (cartouche).
4.3 Interférences
4.3.1 Les acides organiques, tels que les acides mono- ou dicarboxyliques, peuvent interférer.
4.3.2 Le phénomène de sensibilité croisée (résolution insuffisante) dans le dosage des thiocyanates et des
thiosulfates est rarement observé, même en cas de différences importantes entre les anions.
4.3.3 La présence de sulfates peut entraîner des interférences avec la détermination des iodures. Éliminer les
sulfates à l’aide d’échangeurs spéciaux (4.4.2).
4.3.4 Lorsqu’on utilise le détecteur UV, la présence de composés organiques dans I’éluant (3.2 et 4.1.16.2.2) peut
provoquer des interférences avec le dosage des iodures, thiocyanates ou thiosulfates par exemple.
4.3.5 La présence de matières en suspension et de composés organiques (tels que huiles minérales, détergents,
acides humiques) peut abréger la durée de vie de la colonne de séparation. II convient donc de les éliminer de
l’échantillon avant de procéder à l’analyse (4.4.1.6 et 4.4.1.8).
4.4 Échantillonnage et prétraitement de l’échantillon
4.4.1 Exigences générales
4.4.1.1 II est important que le laboratoire reçoive un échantillon réellement représentatif et non endommagé ou
altéré pendant le transport ou le stockage. L’échantillonnage ne fait pas partie de la méthode spécifiée dans la
présente partie de I’ISO 10304.
4.4.1.2 Utiliser pour l’échantillonnage de la verrerie ou des flacons en polyéthylène propres.
w2 sont les largeurs de la base du triangle équilatéral construit et représentant quatre fois l’écart-type d’un pic gaussien.
7) WI1
0 ISO
ISO 10304-3: 1997(F)
.
4.4.1.3 Après prélèvement de l’échantillon, ajuster le
...


NORME ISO
INTERNATIONALE 10304-3
Première édition
1997-08-I 5
Qualité de l’eau - Dosage des anions
dissous par chromatographie des ions en
phase liquide -
Partie 3:
Dosage des ions chromate, iodure, sulfite,
thiocyanate et thiosulfate
Water guality - Determination of dissolved anions by liquid
chromatography of ions -
Part 3: Determination of chromate, iodide, sulfite, thiocyana te and
thiosulfa te
Numéro de référence
I SO 10304-3: 1997(F)
ISO 10304=3:1997(F)
Sommaire
............................................................................................................................................
1 Domaine d’application
...........................................................................................................................................
2 Références normatives
3 Principe .
.............................................................................................
4 Dosage des ions iodure, thiocyanate et thiosulfate
4.1 Réactifs .
4.2 Appareillage .
4.3 Interférences .
............................................................................................
4.4 Échantillonnage et prétraitement de l’échantillon
..................................................................................................................................................
4.5 Mode opératoire
.................................................................................................................................................................
4.6 Calculs
...................................................................................................................................
4.7 Expression des résultats
...................................................................................................................................................
4.8 Rapport d’essai
.........................................................................................................................................
5 Dosage des ions sulfite
5.1 Réactifs .
5.2 Appareillage .
5.3 Interférences .
..........................................................................................
5.4 Échantillonnage et prétraitement de l’échantillon
..................................................................................................................................................
5.5 Mode opératoire
5.6 Calculs .
................................................................................................................................... 17
5.7 Expression des résultats
5.8 Rapport d’essai .
6 Dosage des ions chromate .
0 ISO 1997
Droits de reproduction réservés. Sauf prescription différente, aucune partie de cette publi-
cation ne peut être reproduite ni utilisée sous quelque forme que ce soit et par aucun pro-
cédé, électronique ou mécanique, y compris la photocopie et les microfilms, sans l’accord
écrit de l’éditeur.
Organisation internationale de normalisation
Case postale 56 l CH-121 1 Genève 20 l Suisse
Internet central @ iso.ch
c=ch; a=400net; p=iso; o=isocs; s=central
x.400
Imprimé en Suisse
ii
ISO 10304=3:1997(F)
0 ISO
................................................................................................................................................................
6.1 Réactifs
........................................................................................................................................................
6.2 Appareillage
6.3 Interférences .
..........................................................................................
6.4 Échantillonnage et prétraitement de l’échantillon
6.5 Mode opératoire .
.................................................................................................................................................................
6.6 Calculs
...................................................................................................................................
6.7 Expression des résultats
...................................................................................................................................................
6.8 Rapport d’essai
7 Fidélité .
.......................................................................................................
Annexe A (informative) Essai interlaboratoire
..................................................................................................................... 23
Annexe B (informative) Bibliographie
. . .
III
0 ISO
ISO 10304=3:1997(F)
Avant-propos
L’ISO (Organisation internationale de normalisation) est une fédération mondiale d’organismes nationaux de
normalisation (comités membres de I’ISO). L’élaboration des Normes internationales est en général confiée aux
comités techniques de I’ISO. Chaque comité membre intéressé par une étude a le droit de faire partie du comité
technique créé à cet effet. Les organisations internationales, gouvernementales et non gouvernementales, en
liaison avec I’ISO participent également aux travaux. L’ISO collabore étroitement avec la Commission
électrotechnique internationale (CEI) en ce qui concerne la normalisation électrotechnique.
Les projets de Normes internationales adoptés par les comités techniques sont soumis aux comités membres pour
vote. Leur publication comme Normes internationales requiert l’approbation de 75 % au moins des comités
membres votants.
La Norme internationale ISO 10304-3 a été élaborée par I’ISOTTC 147. Qualité de /‘eau, sous-comité SC 2,
Méthodes physiques, chimiques et biochimiques.
L’ISO 10304 comprend les parties suivantes, présentées sous le titre général Qualité de /‘eau - Dosage des
anions dissous par chromatographie des ions en phase liquide:
- Partie 1: Méthode applicable pour les eaux faiblement contaminées
- Parfie 2: Dosage des ions bromure, chlorure, nitrate, nitrite, onthophosphate et sulfate dans les eaux usées
- Parfie 3: Dosage des ions chromate, iodure, sulfite, thiocyanate et thiosulfa te
- Partie 4: Dosage des ions chlorate, chlorure et chlorite dans des eaux faiblement contaminées
Les annexes A et B de la présente partie de I’ISO 10304 sont données uniquement à titre d’information.
iv
0 ISO
ISO 10304=3:1997(F)
Introduction
Les exigences essentielles minimales d’un système de chromatographie ionique à appliquer dans le cadre de la
présente partie de I’ISO 10304 sont les suivantes:
a) Résolution de la colonne: II est essentiel pour I’anion à doser que la résolution du
pic ne soit pas inférieure à R = 1,3 (voir 4.2.2, figure 3)
b) Méthode de détection: 1) mesurage de la conductivité électrique, respective-
ment avec ou sans réacteur post-colonne
2) mesurage spectrométrique (UWvisible),
directement ou indirectement
détection ampérométrique directe
3)
c) Applicabilité de la méthode: Domaine de travail selon le tableau 1
d) Étalonnage (4.5.1): Étalonnage et dosage dans le domaine de linéarité de
réponse (voir I’ISO 8466-l)
e) Garantie de qualité analytique: Vérification de la validité de la fonction d’étalonnage.
Répéter les dosages si nécessaire.
La diversité des appareillages appropriés et compatibles et des opérations du mode opératoire qui en découlent ne
permettent qu’une description globale.
Pour plus d’informations sur la technique analytique, se reporter au document de référence [l].

Page blanche
ISO 10304-3: 1997(F)
NORME INTERNATIONALE @ ISO
- Dosage des anions dissous par
Qualité de l’eau
chromatographie des ions en phase liquide -
Partie 3:
Dosage des ions chromate, iodure, sulfite, thiocyanate et thiosulfate
1 Domaine d’application
La présente partie de I’ISO 10304 spécifie des méthodes pour le dosage des anions dissous:
- iodure, thiocyanate et thiosuifate (article 4);
- sulfite (article 5);
- chromate (article 6).
Un prétraitement approprié de l’échantillon (par exemple dilution) et l’emploi d’un détecteur conductimétrique (CD),
d’un détecteur UV (UV) ou d’un détecteur ampérométrique (AD) rendent possible le dosage dans les domaines de
travail donnés dans le tableau 1.
Tableau 1 - Domaines de travail applicables
Anion Domaine de travail ‘1 Détecteur
Chromate (CrO,), article 6 0,05 mg/l à 50 mg/l
UV (A = 365 nm)
I
CD ou UV (a = 205 nm à 236 nm)
Iodure (1), article 4 0,l mg/l à 50 mg/l
AD (environ 0,7 V à 1 ,l V)
0,l mg/l à 50 mg/l CD
Sulfite (SO,), article 5
UV (a = 205 nm à 220 nm)
0,5 mg/1 à 50 mg/l
CD ou UV (A = 205 nm à 220 nm)
0,l mg/l à 50 mg/l
Thiocyanate (SCN), article 4
AD (environ 0,7 V à 1 ,l V)
CD ou UV (a = 205 nm à 220 nm)
Thiosulfate (SO,), article 4 0,l mg/l à 50 mg/l
AD (environ 0,7 V à 1,l V)
1) Le domaine de travail est limité par la capacité d’échange des colonnes. Une dilution de l’échantillon dans le
domaine de travail peut s’avérer nécessaire.

e
0 ISO
ISO 10304=3:1997(F)
2 Références normatives
Les normes suivantes contiennent des dispositions qui, par suite de la référence qui en est faite, constituent des
dispositions valables pour la présente partie de I’ISO 10304. Au moment de la publication, les éditions indiquées
étaient en vigueur. Toute norme est sujette à révision et les parties prenantes des accords fondés sur la présente
partie de I’ISO 10304 sont invitées à rechercher la possibilité d’appliquer les éditions les plus récentes des normes
indiquées ci-après. Les membres de la CEI et de I’ISO possèdent le registre des Normes internationales en vigueur
à un moment donné.
ISO 5667-l :1980, Qualité de l’eau - Échantillonnage - Partie 1: Guide général pour l’établissement des
programmes d’échantillonnage.
ISO 5667-2:1991, Qualité de l’eau - Échantillonnage - Partie 2: Guide général sur les techniques
d’échantillonnage.
ISO 5667-3:1994, Qualité de l’eau - Échantillonnage - Partie 3: Guide général pour la conservation et la
manipulation des échantillons.
Étalonnage et évaluation des méthodes d’analyse et estimation des
ISO 8466-l :1990, Qualité de /‘eau -
caractères de performance - Parfie 1: Évaluation statistique de la fonction linéaire d’étalonnage.
Dosages des ions fluorure, chlorure, nitrite, orthophospha te, bromure, nitrate
ISO 10304-I : 1992, Qualité de /‘eau -
et sulfate dissous, par chromatographie des ions en phase liquide - Partie 1: Méthode applicable pour les eaux
faiblement contaminées.
ISO 10304-2:1995, Qualité de l’eau - Dosage des anions dissous par chromatographie des ions en phase
liquide - Partie 2: Dosage des ions bromure, chlorure, nitrate, nitrite, orlhophospha te et sulfate dans les eaux
usées.
3 Principe
3.1 Séparation des anions par chromatographie en phase liquide au moyen d’une colonne de séparation.
Utilisation d’un échangeur d’anions de faible capacité comme phase stationnaire et, en général, de solutions
aqueuses de sels de mono- ou diacides faibles comme phases mobiles (éluants, voir 4.1.16, 5.1.4 et 6.1.9).
3.2 L’addition d’agents organiques, tels que I’hydroxy-4 benzonitrile (voir 4.1.16.2.2, 4.3.4), ou de solvants
organiques à I’éluant peut être utilisée pour accélérer l’élution ou réduire les effets de traînée des pics, notamment
pour l’analyse des ions fortement polarisables tels que les ions iodure, thiocyanate et thiosulfate.
3.3 Détection par détecteurs conductimétrique (CD), UV et ampérométrique (AD).
3.3.1 Lorsqu’on utilise des détecteurs conductimétriques, il est primordial que la conductivité des éluants soit
suffisamment faible. Pour cette raison, ces détecteurs sont souvent associés à des réacteurs post-colonne
(échangeurs de cations) servant à diminuer la conductivité des éluants et transformer les espèces de l’échantillon
en acides correspondants.
3.3.2 La détection par UV mesure soit directement l’absorption (voir le tableau 1) soit, en cas d’anions
transparents aux UV, la diminution de l’absorption du fond causé par un éluant absorbant les UV (mesurage
indirect). En cas de détection indirecte par UV, la longueur d’onde du mesurage dépend de la composition de
I’éluant.
3.3.3 Les détecteurs ampérométriques mesurent l’intensité du courant généré par l’oxydation des anions. Le
potentiel d’oxydation requis pour les anions concernés dépend de la valeur du pH de I’éluant.
La concentration des anions correspondants est déterminée
34 . par un étalonnage global de la procédure. Des
cas particuliers peuvent nécessiter un étalonnage par addition d’un étalon (ajout dosé).
0 ISO ISO 10304-3: 1997(F)
4 Dosage des ions iodure, thiocyanate et thiosulfate
Suivre les instructions de l’article 4 afin de pouvoir effectuer les dosages dans le domaine de travail donné dans le
tableau 1.
4.1 Réactifs
Utiliser uniquement des réactifs de qualité analytique reconnue, s’ils sont disponibles dans le commerce. Effectuer
les pesées avec une précision de l’ordre de 1 % de la masse nominale. L’eau utilisée doit avoir une conductivité
électrique inférieure à 0,l mS/m et ne doit pas contenir de particules de diamètre supérieur à 0,45 Frn. Un
accroissement de conductivité résultant de la dissolution de dioxyde de carbone ne perturbe pas le dosage.
4.1 .l Hydrogénocarbonate de sodium, NaHCO,
4.1.2 Carbonate de sodium, NaJO,
4.1.3 Acide phtalique, C,H,O,
4.1.4 Tétraborate de sodium, Na,B,O,
4.1.5 Acide gluconique, sel de sodium, C,H,,NaO,
4.1.6 Méthanol, CH,OH
4.1.7 Acide borique, H,BO,
4.1.8 Glycérol, C,H,O,
4.1.9 Acétonitrile, CH,CN
4.1 .lO Hydroxyde de sodium, solution, c(NaOH) = 0,l mol/1
4.1 .ll Hydroxy-4 benzonitrile, C,H,NO
4.1.12 Tri(hydroxyméthyl)aminométhane, C,H,,NO,
4.1 .13 Thiosulfate de sodium pentahydraté, Na,S,0,,5H,O
4.1.14 Iodure de sodium, Nal
4.1 .15 Thiocyanate de potassium, KSCN
4.1 .16 Éluants
4.1 .16.1 Généralités
Divers éluants sont utilisés, le choix dépendant du type de colonne de séparation et de détecteur employés. II
convient donc de suivre les instructions du constructeur de la colonne pour définir la composition exacte de I’éluant.
Les compositions d’éluants décrites en 4.1 .16.2 et 4.1 .16.3 ne sont données qu’à titre d’exemples.
Une sélection de réactifs pour quelques éluants couramment utilisés est présentée en 4.1 .l à 4.1.12.
Dégazer tous les éluants ou les préparer avec de l’eau dégazée (4.1). Veiller à empêcher toute redissolution
ultérieure de gaz durant l’opération (par exemple par superposition d’hélium). Pour éviter la prolifération de
bactéries ou d’algues, conserver les éluants à l’obscurité et les renouveler tous les deux ou trois jours.

0 ISO
ISO 10304=3:1997(F)
4.1 .16.2 Exemples d’éluants pour chromatographie ionique avec réaction post-colonne
Pour la chromatographie ionique avec réaction post-colonne, on utilise de l’hydroxyde de sodium et des solutions
salines d’acides faiblement dissociés, par exemple carbonate de sodium/hydrogénocarbonate de sodium,
hydrogénocarbonate de sodium et tétraborate de sodium.
4.1 A6.2.1 Solution concentrée de carbonate de sodium/hydrogénocarbonate de sodium
L’addition de la solution concentrée d’éluant suivante à l’échantillon donne des résultats satisfaisants pour le
prétraitement de l’échantillon et la préparation de I’éluant (voir 4.1 .16.2.2).
Placer, dans une fiole jaugée de 1 000 ml, 36 g de carbonate de sodium (4.1.2) et 36,l g d’hydrogénocarbonate de
sodium (4.1 .l) et compléter au volume avec de l’eau (4.1).
Cette solution contient 0,34 mol/1 de carbonate de sodium et 0,43 mol/1 d’hydrogénocarbonate de sodium. Cette
solution reste stable pendant plusieurs mois si elle est conservée entre 4 OC et 6 OC.
4.1.16.2.2 Éluant carbonate de sodium/hydrogénocarbonate de sodium
L’éluant suivant donne des résultats satisfaisants pour le dosage des iodures, thiocyanates et thiosulfates.
Placer, dans une fiole jaugée de 5 000 ml, 50 ml de solution concentrée (4.1.16.2.1), ajouter de l’eau (4.1), ajouter
750 mg d’hydroxy-4 benzonitrile (4.1 .ll) et compléter au volume avec de l’eau (4.1). ‘1 2,
Cette solution contient 0,003 4 mol/1 de carbonate de sodium, 0,004 3 mol/1 d’hydrogénocarbonate de sodium et
0,001 3 mol/1 d’hydroxy-4 benzonitrile. Renouveler I’éluant tous les deux ou trois jours (4.1 .16).
4.1 A6.3 Exemples d’éluants pour chromatographie ionique sans réaction post-colonne
Pour la chromatographie ionique sans réaction post-colonne, on utilise des solutions salines, par exemple
d’hydrogénophtalate de potassium, d’hydroxy-4 benzoate, de borate/gluconate de sodium et de benzoate de
sodium. La concentration des sels est généralement comprise entre 0,000 5 mol/1 et 0,Ol mol/l. La solution
concentrée et I’éluant sont préparés comme décrit respectivement en 4.1 .16.2.1 et 4.1 .16.2.2.
4.1 .16.3.1 Solution concentrée d’acide phtalique
L’addition de la solution concentrée d’éluant suivante à l’échantillon donne des résultats satisfaisants pour le
prétraitement de l’échantillon et la préparation de I’éluant (voir 4.4.16.3.2).
Placer, dans une fiole jaugée de 1 000 ml, 4,485 g d’acide phtalique (4.1.3), les dissoudre dans environ 800 ml
d’eau (4.1), ajouter 100 ml d’acétonitrile (4.1.9) et compléter au volume avec de l’eau (4.1). Ajuster le pH à 4 à l’aide
de tri(hydroxyméthyl) aminométhane (4.1.12; qui peut être ajouté en suspension ou sous forme de solution, par
exemple à 1 mol/l).
Cette solution contient 0,027 mol/1 d’acide phtalique et environ 10 % d’acétonitrile.
4.1 .16.3.2 Éluant acide phtalique
L’éluant suivant peut être utilisé pour le dosage des iodures, thiocyanates et thiosulfates.
Pipetter 100 ml de la solution concentrée (4.1 .16.3.1) dans une fiole jaugée de 1 000 ml et compléter au volume
avec de l’eau (4.1).
1) L’hydroxy-4 benzonitrile peut être ajouté à I’éluant afin d’accélérer l’élution ou de réduire les effets de traînée des pics pour le
dosage des iodures, thiocyanates et thiosulfates (article 4). Cependant des interférences sont possibles si un détecteur UV (4.3.4)
est utilisé pour le dosage des iodures, thiocyanates et thiosulfates.
2) Pour améliorer la solubilité de I’hydroxy-4 benzonitrile, la substance peut être dissoute dans une petite quantité de méthanol ou
d’éthanol et, après addition à la solution concentrée de I’éluant, il convient d’agiter la solution toute une nuit.
0 ISO ISO 10304-3: 1997(F)
Cette solution contient 0,002 7 mol/1 d’acide phtalique et environ 1 % d’acétonitrile. II convient que le pH de la
solution soit compris entre 4,0 et 45 3). Renouveler I’éluant tous les deux ou trois jours (4.1.16).
4.1.16.3.3 Solution concentrée de borate/gluconate
La solution concentrée d’éluant suivante donne des résultats satisfaisants pour la préparation de Muant
(4.1 .16.3.4) et le prétraitement des échantillons.
Placer dans une fiole jaugée de 1 000 ml, 16 g d’acide gluconique, sel de sodium (4.1.5), 18 g d’acide borique
(4.1.7) et 25 g de tétraborate de sodium (4.1.4), les dissoudre dans environ 500 ml d’eau (4.1), ajouter 250 ml de
glycérol (4.1.8) et compléter au volume avec de l’eau (4.1).
Cette solution contient 0,073 mol/1 d’acide gluconique, 0,291 mol/1 d’acide borique, 0,124 mol/1 de tétraborate de
sodium et environ 25 % de glycérol. Cette solution reste stable pendant plusieurs mois si elle est conservée entre
4 “C et 6 OC.
4.1.16.3.4 Éluant boratelgluconate
L’éluant suivant peut, par exemple, être utilisé pour le dosage des iodures, thiocyanates et thiosulfates.
Placer, dans une fiole jaugée de 1 000 ml, 500 ml d’eau (4.1), ajouter 23,5 ml de solution concentrée (4.1.16.3.3),
120 ml d’acétonitrile (4.1.9) et compléter au volume avec de l’eau (4.1).
Cette solution contient 0,001 7 mol/1 d’acide gluconique, 0,006 8 mol/1 d’acide borique, 0,002 9 mol/1 de tétraborate
de sodium, environ 0,6 % de glycérol et environ 12 % d’acétonitrile. II convient que le pH de cette solution soit
compris entre 8,3 et 8,7 4). Renouveler I’éluant tous les deux ou trois jours (4.1.16).
4.1.17 Solutions mères
Préparer pour chacun des anions iodure, thiocyanate et thiosulfate une solution mère de concentration égale à
1 000 mg/l.
Dans des fioles jaugées de 1 000 ml, dissoudre dans un peu d’eau la masse appropriée de chaque substance,
prétraitée comme indiqué dans le tableau 2. Compléter au volume avec de l’eau. Les solutions restent stables
pendant plusieurs mois si elles sont conservées entre 4 “C et 6 “C dans des flacons en polyéthylène.
On peut également utiliser des solutions mères disponibles dans le commerce de la concentration voulue.
Tableau 2 - Prétraitement et concentrations en masse des solutions mères
Prétraitement par séchage ‘1
Durée Température Concentration
Anion Sel
h C
dl
Iodure Nal 3 103 à 106 1,181 2
Thiocyanate KSCN 1 103 à 106 1,673
Thiosulfate *) Na,S,0,,5H,O Séchage non recommandé 2,213 4
1) Après séchage, laisser les sels refroidir dans un dessiccateur hermétique.
2) L’ajustement du titre est nécessaire avant utilisation.
3) Des valeurs de pH inférieures à 4,0 ou supérieures à 4,5 peuvent entraîner une augmentation des temps de rétention ou
provoquer une diminution de la résolution R < 1,3 (pour le critère de résolution R, voir 4.2.2).
4) Des valeurs de pH inférieures à 8,3 ou supérieures à 8,7 peuvent entraîner une augmentation des temps de rétention ou
provoquer une diminution de la résolution R < 1,3 (pour le critère de résolution R, voir 4.2.2).
0 ISO
ISO 10304=3:1997(F)
4.1 .18 Solutions mixtes étalons
Suivant les concentrations présumées, préparer à partir des solutions mères (4.1.17) des solutions étalons de
compositions variées en anions et de concentrations différentes. Le risque d’un changement des concentrations dû
à des interactions avec le matériau du récipient est d’autant plus élevé que la concentration des anions est faible.
Conserver les solutions étalons dans des flacons en polyéthylène.
Pour éviter toute contamination croisée, utiliser toujours les mêmes flacons pour une solution de composition et de
concentration données.
4.1.18.1 Solution mixte étalon 1 d’iodure, de thiocyanate et de thiosulfate
La concentration en masse de cette solution est la suivante:
~(1, SCN, S,O,) = 100 mg/1
Pipetter 10 ml de chacune des soluti ons mères préparées comme indiqué en 4.1.17 dans une fiole jaugée
de
100 ml. Compléter au volume avec de l’eau (4.1).
Conserver cette solution dans un flacon en polyéthylène. La solution reste stable pendant environ une semaine si
elle est conservée entre 4 “C et 6 OC.
4.1.18.2 Solution mixte étalon II d’iodure, de thiocyanate et de thiosulfate
La concentration en masse de cette solution est la suivante:
~(1, SCN, S,O,) = 10 mg/1
Pipetter 10 ml de la solution mixte étalon 1 (4.1 .18.1) dans une fiole jaugée de 100 ml. Compléter au volume avec
de l’eau (4.1).
La solution reste stable seulement pendant un à deux jours, même si elle est conservée entre 4 “C et 6 “C.
Préparer d’autres solutions étalons par des dilutions appropriées de la solution mixte étalon 1 (4.1 .18.1).
4.1 .19 Solutions d’étalonnage d’anions
Suivant la concentration présumée des anions dans l’échantillon, utiliser les solutions mères (4.1.17) ou les
solutions mixtes étalons (4.1 .18.1 et 4.1 .18.2) pour préparer 5 à 10 solutions d’étalonnage couvrant, de façon aussi
équidistante que possible, le domaine de dosage supposé.
Par exemple, procéder comme suit pour des concentrations comprises entre 1,0 mg/1 et 10 mg/1 pour les anions
iodure, thiocyanate et thiosulfate.
Pipetter des volumes de 1 ml, 2 ml, 3 ml, 4 ml, 5 ml, 6 ml, 7 ml, 8 ml, 9 ml et 10 ml de la solution mixte étalon I
(4.1.18.1) dans une série de fioles jaugées de 100 ml. Compléter au volume avec de l’eau et ajouter 0,l ml de
solution d’hydroxyde de sodium 5, 6, (4.1 .lO).
Les concentrations des anions iodure, thiocyanate et thiosulfate dans ces solutions d’étalonnage sont
respectivement de 1 mg/l, 2 mg/l, 3 mg/l,
4 mg/l, 5 mg/l, 6 mg/l, 7 mg/l, 8 mg/l, 9 mg/1 et 10 mg/l.
Préparer les solutions d’étalonnage le jour de leur emploi.
5) On peut également utiliser la solution concentrée d’éluant conformément à 4.1.16.2.1 ou 4.1.16.3.3.
6) L’addition de 0,l ml de solution d’hydroxyde de sodium ou de 0,l ml de solution concentrée d’éluant diminuera la concentration
de la solution de référence. Cet effet est compensé par le fait que l’échantillon subit le même traitement.
0 ISO ISO 10304-3: 1997(F)
4.1.20 Solution d’essai à blanc
Remplir d’eau jusqu’au trait repère une fiole jaugée de 100 ml et ajouter 0,l ml de solution d’hydroxyde de sodium
(4.1 .lO) 5, Y
4.2 Appareillage
Matériel courant de laboratoire et ce qui suit.
4.2.1 Système de chromatographie ionique, satisfaisant aux exigences de qualité définis dans 4.2.2. En
général, il doit comprendre les éléments suivants (voir la figure 1).
4.2.1 .l Chromatographe pour échange d’ions, comprenant les éléments suivants:
- réservoir d’éluant;
- pompe adaptée pour CLHP;
- dispositif d’injection de l’échantillon incorporant une boucle d’échantillonnage (par exemple de 50 ~1);
- précolonne (voir 4.5.2) contenant par exemple la même résine que la colonne de séparation analytique ou
garnie d’un polymère macroporeux;
- colonne de séparation satisfaisant aux exigences de performance spécifiées (4.2.2);
réacteur post-colonne) ou détecteur UV (par exemple
- détecteur conductimétrique (avec ou sans
spectrophotomètre, 190 nm à 400 nm) ou détecteur ampérométrique;
- dispositif d’enregistrement (par exemple enregistreur, intégrateur avec imprimante).
Dispositif d’injection
de l’échantillon
4 -9
Colonne de
Éluant I Pompe Précolonne Détecteur - 1 Rejets
séparation
*
d’enregistrement
Figure 1 - Représentation schématique d’un système de chromatographie ionique
4.2.2 Exigences de qualité pour la colonne de séparation
La colonne de séparation constitue l’élément le plus important du système de chromatographie ionique. Son pouvoir
de séparation dépend de divers facteurs opératoires tels que le matériau de la colonne et le type d’éluant utilisé.
Dans le cadre de la présente partie de I’ISO 10304, utiliser uniquement des colonnes qui permettent de séparer sur
la ligne de base tous les composés des ions injectés (par exemple iodures, thiocyanates, thiosulfates; voir la
figure 2) à un niveau de concentration de 1 mg/1 pour chacun. Si uniquement certains des anions représentés à la
figure 2 doivent être dosés, cette exigence est applicable à ces anions-ci. Pour réaliser des chromatogrammes des
échantillons et des solutions étalons de concentrations plus élevées, la résolution du pic (interférant) le plus proche
(voir la figure 3) ne doit pas être inférieure à R = 1,3 [voir l’équation (l)].

ISO 10304=3:1997(F) 0 ISO
Temps,min
NOTE - L’ordre d’élution et les temps de rétention peuvent varier suivant le type de colonne utilisée et la composition de
I’éluant.
Figure 2 - Exemple d’un chromatogramme obtenu avec une colonne conforme à la présente partie de
I’ISO 10304
Figure 3 - Représentation graphique des paramètres permettant de calculer la résolution des pics, R
Calculer la résolution du pic, R, à l’aide de l’équation (1):
2 (b?* +RI)
. . .
R2,l = (1)
(W2 +Y)
R, 1 est la résolution de la paire de pics 2 et 1;
est le temps de rétention du pic 1, en secondes;
tR1
est le temps de rétention du pic 2, en secondes;
tR2
0 ISO
ISO 10304=3:1997(F)
7, est la largeur à la base du pic 1, sur l’axe des temps, en secondes;
w1
w*7) est la largeur à la base du pic 2, sur l’axe des temps, en secondes.
4.2.3 Matériel complémentaire, comprenant:
étuve;
dessiccateur;
- fioles jaugées de capacités nominales égales à 100 ml, 1 000 ml et 5 000 ml;
- fioles jaugées de capacité nominale égale à 100 ml, en plastique, à utiliser pour les faibles concentrations (par
exemple < 0,l mg/l);
pipettes graduées, de capacités nominales allant de 1 ml à 10 ml ou microseringues;
appareil de filtration sur membrane avec membranes de porosité moyenne de 0,45 prn;
- cartouches ou colonnes à phases non polaires à utiliser pour la préparation de l’échantillon (par exemple
RP Cl 8 ou polyvinylpyrrolidone respectivement);
- échangeur à cations sous forme de baryum (Ba*+) (cartouche);
- échangeur à cations sous forme d’hydrogène (H+) (cartouche).
4.3 Interférences
4.3.1 Les acides organiques, tels que les acides mono- ou dicarboxyliques, peuvent interférer.
4.3.2 Le phénomène de sensibilité croisée (résolution insuffisante) dans le dosage des thiocyanates et des
thiosulfates est rarement observé, même en cas de différences importantes entre les anions.
4.3.3 La présence de sulfates peut entraîner des interférences avec la détermination des iodures. Éliminer les
sulfates à l’aide d’échangeurs spéciaux (4.4.2).
4.3.4 Lorsqu’on utilise le détecteur UV, la présence de composés organiques dans I’éluant (3.2 et 4.1.16.2.2) peut
provoquer des interférences avec le dosage des iodures, thiocyanates ou thiosulfates par exemple.
4.3.5 La présence de matières en suspension et de composés organiques (tels que huiles minérales, détergents,
acides humiques) peut abréger la durée de vie de la colonne de séparation. II convient donc de les éliminer de
l’échantillon avant de procéder à l’analyse (4.4.1.6 et 4.4.1.8).
4.4 Échantillonnage et prétraitement de l’échantillon
4.4.1 Exigences générales
4.4.1.1 II est important que le laboratoire reçoive un échantillon réellement représentatif et non endommagé ou
altéré pendant le transport ou le stockage. L’échantillonnage ne fait pas partie de la méthode spécifiée dans la
présente partie de I’ISO 10304.
4.4.1.2 Utiliser pour l’échantillonnage de la verrerie ou des flacons en polyéthylène propres.
w2 sont les largeurs de la base du triangle équilatéral construit et représentant quatre fois l’écart-type d’un pic gaussien.
7) WI1
0 ISO
ISO 10304-3: 1997(F)
.
4.4.1.3 Après prélèvement de l’échantillon, ajuster le
...

Questions, Comments and Discussion

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