Water quality — Determination of selected polybrominated diphenyl ethers in sediment and sewage sludge — Method using extraction and gas chromatography/mass spectrometry

ISO 22032:2006 specifies a method for the determination of selected polybrominated diphenyl ethers (PBDE) in sediment and sludge using gas chromatography/mass spectrometry (GC-MS) in the electron impact (EI) or negative ion chemical ionization (NCI) mode. When using GC-EI-MS, the method is applicable to samples containing 0,05 to 25 micrograms per kilogram of tetra- to octabromo congeners and 0,3 to 100 micrograms per kilogram of decabromo diphenyl ether (BDE-209), respectively.

Qualité de l'eau — Dosage d'une sélection d'éthers diphényliques polybromés dans des sédiments et des boues d'épuration — Méthode par extraction et chromatographie en phase gazeuse/spectrométrie de masse

L'ISO 22032:2006 spécifie une méthode de détermination d'une sélection d'éthers diphényliques polybromés (PBDE) dans les sédiments et les boues, par chromatographie en phase gazeuse/spectrométrie de masse (CG/SM) avec ionisation par impact électronique (EI) ou ionisation chimique négative (NCI). Dans le cas de la CG-EI-SM, la méthode s'applique à des échantillons contenant de 0,05 microgrammes par kilogramme à 25 microgrammes par kilogramme de congénères tétrabromés à octabromés et de 0,3 microgrammes par kilogramme à 100 microgrammes par kilogramme d'éther diphénylique décabromé (BDE-209), respectivement.

General Information

Status
Published
Publication Date
07-Dec-2006
Current Stage
9092 - International Standard to be revised
Start Date
30-Mar-2023
Completion Date
12-Feb-2026

Relations

Effective Date
01-Apr-2023

Overview

ISO 22032:2006 specifies a laboratory method for the determination of selected polybrominated diphenyl ethers (PBDEs) in sediment and sewage sludge using extraction followed by gas chromatography/mass spectrometry (GC‑MS). The standard covers sample pre‑treatment (freeze‑drying, grinding), extraction (Soxhlet or comparable methods), clean‑up, and instrumental analysis using GC‑MS in either electron impact (EI) or negative ion chemical ionization (NCI) modes. It lists target congeners (including BDE‑47, BDE‑99, BDE‑100, BDE‑153, BDE‑154, BDE‑181, BDE‑183 and BDE‑209) and gives applicable quantitative ranges for GC‑EI‑MS and improved sensitivity for GC‑NCI‑MS.

Key topics and technical requirements

  • Target analytes: Selected PBDE congeners (tetra‑ to decabromo diphenyl ethers); Table of congeners provided.
  • Detection modes: GC‑MS using EI (higher specificity) or NCI (≈10× greater sensitivity for low levels).
  • Quantification ranges: For GC‑EI‑MS, approx. 0.05–25 µg/kg for tetra‑ to octabromo congeners and 0.3–100 µg/kg for BDE‑209; lower limits achievable with NCI.
  • Sample preparation: Homogenization, freeze‑drying, grinding and sieving; addition of internal standards prior to extraction.
  • Extraction and clean‑up: Soxhlet extraction (typically 16 h) or validated alternative extraction techniques; multi‑layer silica gel chromatographic clean‑up (Annex A examples).
  • Calibration and QA: Internal standard calibration over the full procedure, injection standards for recovery checks, blank controls to monitor contamination.
  • Interferences & contamination control: Potential co‑eluting compounds (e.g., brominated biphenyls, tetrabromobisphenol A) and environmental/batch contamination from flame‑retardant polymers; avoid contact with polymeric materials and airborne dust.
  • Instrumentation & materials: Low‑bleed non‑polar fused‑silica GC columns, high‑purity operating gases, amber vials, baked sand and solvent choices (toluene, acetone/hexane mixtures, dichloromethane).

Applications and users

ISO 22032:2006 is used by:

  • Environmental and analytical laboratories monitoring PBDE contamination in sediments and sewage sludge
  • Regulatory agencies and compliance testing programs assessing environmental quality or waste management limits
  • Research institutions studying fate, transport and bioaccumulation of flame retardant PBDEs
  • Consultants performing site investigations and baseline contaminant surveys

Typical applications include routine monitoring, trend analysis, impact assessments around wastewater treatment works, and supporting regulatory enforcement.

Related standards

  • ISO 5667‑13 - Guidance on sampling of sludges from sewage and water‑treatment works (sampling best practice referenced by ISO 22032).
  • ISO 8466‑1 - Calibration and evaluation of analytical methods (statistical evaluation of calibration used for quantitation).

Keywords: ISO 22032:2006, PBDE, BDE‑209, GC‑MS, electron impact (EI), negative ion chemical ionization (NCI), sediment analysis, sewage sludge, Soxhlet extraction, analytical method.

Standard

ISO 22032:2006 - Water quality -- Determination of selected polybrominated diphenyl ethers in sediment and sewage sludge -- Method using extraction and gas chromatography/mass spectrometry

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ISO 22032:2006 - Qualité de l'eau -- Dosage d'une sélection d'éthers diphényliques polybromés dans des sédiments et des boues d'épuration -- Méthode par extraction et chromatographie en phase gazeuse/spectrométrie de masse

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Frequently Asked Questions

ISO 22032:2006 is a standard published by the International Organization for Standardization (ISO). Its full title is "Water quality — Determination of selected polybrominated diphenyl ethers in sediment and sewage sludge — Method using extraction and gas chromatography/mass spectrometry". This standard covers: ISO 22032:2006 specifies a method for the determination of selected polybrominated diphenyl ethers (PBDE) in sediment and sludge using gas chromatography/mass spectrometry (GC-MS) in the electron impact (EI) or negative ion chemical ionization (NCI) mode. When using GC-EI-MS, the method is applicable to samples containing 0,05 to 25 micrograms per kilogram of tetra- to octabromo congeners and 0,3 to 100 micrograms per kilogram of decabromo diphenyl ether (BDE-209), respectively.

ISO 22032:2006 specifies a method for the determination of selected polybrominated diphenyl ethers (PBDE) in sediment and sludge using gas chromatography/mass spectrometry (GC-MS) in the electron impact (EI) or negative ion chemical ionization (NCI) mode. When using GC-EI-MS, the method is applicable to samples containing 0,05 to 25 micrograms per kilogram of tetra- to octabromo congeners and 0,3 to 100 micrograms per kilogram of decabromo diphenyl ether (BDE-209), respectively.

ISO 22032:2006 is classified under the following ICS (International Classification for Standards) categories: 13.060.50 - Examination of water for chemical substances. The ICS classification helps identify the subject area and facilitates finding related standards.

ISO 22032:2006 has the following relationships with other standards: It is inter standard links to ISO/FDIS 22032. Understanding these relationships helps ensure you are using the most current and applicable version of the standard.

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Standards Content (Sample)


INTERNATIONAL ISO
STANDARD 22032
First edition
2006-12-15
Water quality — Determination of
selected polybrominated diphenyl ethers
in sediment and sewage sludge —
Method using extraction and gas
chromatography/mass spectrometry
Qualité de l'eau — Dosage d'une sélection d'éthers diphényliques
polybromés dans des sédiments et des boues d'épuration — Méthode
par extraction et chromatographie en phase gazeuse/spectrométrie de
masse
Reference number
©
ISO 2006
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Fax + 41 22 749 09 47
E-mail copyright@iso.org
Web www.iso.org
Published in Switzerland
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Contents Page
Foreword. iv
Introduction . v
1 Scope . 1
2 Normative references . 2
3 Principle. 2
4 Interferences . 2
5 Reagents and standards . 3
6 Apparatus . 4
7 Sampling and sample pre-treatment. 5
8 Procedure . 5
9 Calibration . 8
10 Test report . 11
Annex A (informative) Clean-up procedures . 12
Annex B (informative) Examples for separation conditions in gas chromatography and mass
spectrometry . 16
Annex C (informative) Typical ions and time windows for electron impact ionization detection. 19
Annex D (informative) Examples of chromatograms and spectra . 20
Annex E (informative) Precision data. 25
Bibliography . 26

Foreword
ISO (the International Organization for Standardization) is a worldwide federation of national standards bodies
(ISO member bodies). The work of preparing International Standards is normally carried out through ISO
technical committees. Each member body interested in a subject for which a technical committee has been
established has the right to be represented on that committee. International organizations, governmental and
non-governmental, in liaison with ISO, also take part in the work. ISO collaborates closely with the
International Electrotechnical Commission (IEC) on all matters of electrotechnical standardization.
International Standards are drafted in accordance with the rules given in the ISO/IEC Directives, Part 2.
The main task of technical committees is to prepare International Standards. Draft International Standards
adopted by the technical committees are circulated to the member bodies for voting. Publication as an
International Standard requires approval by at least 75 % of the member bodies casting a vote.
Attention is drawn to the possibility that some of the elements of this document may be the subject of patent
rights. ISO shall not be held responsible for identifying any or all such patent rights.
ISO 22032 was prepared by Technical Committee ISO/TC 147, Water quality, Subcommittee SC 2, Physical,
chemical and biochemical methods.
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Introduction
The user should be aware that particular problems could require the specification of additional marginal
conditions.
INTERNATIONAL STANDARD ISO 22032:2006(E)

Water quality — Determination of selected polybrominated
diphenyl ethers in sediment and sewage sludge — Method
using extraction and gas chromatography/mass spectrometry
WARNING — Persons using this International Standard should be familiar with normal laboratory
practice. This standard does not purport to address all of the safety problems, if any, associated with
its use. It is the responsibility of the user to establish appropriate safety and health practices and to
ensure compliance with any national regulatory conditions.
IMPORTANT — It is absolutely essential that tests conducted according to this standard be carried
out by suitably trained staff.
1 Scope
This International Standard specifies a method for the determination of selected polybrominated diphenyl
ethers (PBDE) (see Figure 1 and Table 1) in sediment and sludge using gas chromatography/mass
spectrometry (GC-MS) in the electron impact (EI) or negative ion chemical ionization (NCI) mode.
When using GC-EI-MS, the method is applicable to samples containing 0,05 µg/kg to 25 µg/kg of tetra- to
octabromo congeners and 0,3 µg/kg to 100 µg/kg of decabromo diphenyl ether (BDE-209), respectively.
Approximately ten times lower concentrations can be quantified when using GC-NCI-MS. The risk of
misinterpretation of interfering substances is smaller with EI due to its higher specificity. It is also possible to
analyse other brominated diphenyl ethers according to this International Standard, after verifying its
applicability in each case.
Figure 1 — Chemical formula of polybrominated diphenyl ethers
Table 1 — PBDE congeners determined by this method
a
No. Congener Formula Abbreviation Molar mass
g/mol
1 2,2’,4,4’-Tetrabromodiphenyl ether C H BrO BDE-47 485,795 0
12 6 4
2 2,2’,4,4’,5-Pentabromodiphenyl ether C H BrO BDE-99 564,691 1
12 5 5
3 2,2’,4,4’,6-Pentabromodiphenyl ether C H BrO BDE-100 564,691 1
12 5 5
4 2,2’,4,4’,5,6’-Hexabromodiphenyl ether C H BrO BDE-154 643,587 2
12 4 6
5 2,2’,4,4’,5,5’-Hexabromodiphenyl ether C H BrO BDE-153 643,587 2
12 4 6
6 2,2’,3,4,4’,5’,6-Heptabromodiphenyl ether C H BrO BDE-183 722,483 2
12 3 7
7 Decabromodiphenyl ether C BrO BDE-209 959,171 4
12 10
a
Numbering analogous to IUPAC nomenclature for PCB.
2 Normative references
The following referenced documents are indispensable for the application of this document. For dated
references, only the edition cited applies. For undated references, the latest edition of the referenced
document (including any amendments) applies.
ISO 5667-13, Water quality — Sampling — Part 13: Guidance on sampling of sludges from sewage and
water-treatment works
ISO 8466-1, Water quality — Calibration and evaluation of analytical methods and estimation of performance
characteristics — Part 1: Statistical evaluation of the linear calibration function
3 Principle
Extraction of brominated diphenyl ethers from the dried sample by an organic solvent. Clean-up of the extract
by, e.g. preparative multi-layer silica gel column chromatography. After concentration, separation of the
brominated diphenyl ethers by capillary gas chromatography and detection by either mass spectrometry in the
selected ion monitoring mode using electron impact (EI), or negative ion chemical ionization (NCI). For
determination of the concentration in the sample, an internal standard calibration over the total procedure is
used.
4 Interferences
When applying GC-NCI-MS, 2,2’,4,4’,5,5’-hexabromobiphenyl (BB-153) and tetrabromobisphenol A can co-
elute with BDE-154 and BDE-153, respectively, when using non-polar capillary columns and hence, interfere
with the determination of the corresponding BDE congeners when monitoring the bromide ions m/z = 79 and
m/z = 81. Moreover, naturally produced brominated compounds, such as halogenated bipyrrols and
brominated phenoxyanisols, can be considered as potential interferences.
Sources of contamination are the following: brominated diphenyl ethers used as flame-retardants in organic
polymers. Therefore, contact of the sample or the reagents with these organic polymers shall be avoided.
Transportation paths include airborne dust, vial covers, pasteur pipette fillers and recycled paper.
2 © ISO 2006 – All rights reserved

5 Reagents and standards
Only use reagents with negligibly low concentrations of brominated diphenyl ethers compared with the
concentration to be determined and verify by blank determinations. To prevent degradation, store standards in
the dark at temperatures recommended by the manufacturer (calibration solutions should preferably be stored
at approximately −18 °C).
5.1 Solvents for extraction, clean-up and preparation of stock solutions.
A variety of solvents may be used depending on the particular sample matrix to be analysed and the
availability of commercial standard solution, e.g. toluene (C H ), or acetone (propanone, C H O), or a mixture
7 8 3 6
of acetone (propanone, C HO) and hexane (C H ), or heptane (C H ), or iso-octane
3 6 6 14 7 16
(2,2,4-trimethylpentane, C H ), or nonane (C H ), or dichloromethane (CH Cl ) for residual analysis.
8 18 9 20 2 2
5.2 Reference substances.
See Table 1. Solutions of reference substances are commercially available.
5.3 Internal standard substances.
Solutions of reference substances for use as internal standards for electron impact ionization (Table 2,
substances 1 to 5) and for negative ion chemical ionization (Table 2, substances 6, 7 and 8) are commercially
available.
Table 2 — Examples of internal standards
No Name Formula Abbreviation Molar mass
g/mol
Internal standards for GCMS with electron impact ionization
13 13 13
1 2,2’,4,4’-Tetrabromo[ C ]diphenyl ether C H Br O C-BDE-47 497,703 5
12 12 6 4
13 13 13
2 2,2’,4,4’,5-Pentabromo[ C ]diphenyl ether C H Br O C-BDE-99 576,599 5
12 12 5 5
13 13 13
3 2,2’,4,4’,5,5’-Hexabromo[ C ]diphenyl ether C H Br O C-BDE-153 655,495 5
12 12 4 6
13 13 13
4 2,2’,3,4,4’,5’,6-Heptabromo[ C ]diphenyl ether C H Br O C-BDE-183 734,391 6
12 12 3 7
13 13 13
5 Decabromo[ C ]diphenyl ether C Br O C-BDE-209 971,079 7
12 12 10
a
Internal standards for GCMS with negative ion chemical ionization

6 3,3’,4,4’-Tetrabromodiphenyl ether C H Br O BDE-77 485,795 0
12 6 4
7 2,2’,3,4,4’,5,6-Heptabromodiphenyl ether C H Br O BDE-181 722,483 2
12 3 7
13 13 13
8 Decabromo[ C ]diphenyl ether C Br O C-BDE-209 971,079 7
12 12 10
a
Check for interferences when non-labelled PBDE is used as an internal standard. Other BDE congeners are suitable as
internal standards, e.g. BDE-140.
5.4 Sodium sulfate, anhydrous, Na SO , powdered.
2 4
5.5 Operating gases, for gas chromatography/mass spectrometry, of high purity and in accordance with
manufacturer’s specifications.
5.6 Nitrogen, of high purity, at least 99,999 % by volume, for drying and for concentration by evaporation.
5.7 Solutions of the single reference substances / internal standards.
Use commercially available solutions (may be in nonane, toluene or iso-octane) or prepare stock solutions,
e.g. by dissolving 10 mg of each of the reference substances (5.2, 5.3) in toluene (5.1) in an amber, 10-ml
volumetric flask and bring to volume (concentration: 1 mg/ml). Store at approximately −18 °C in the dark.
5.8 Multicomponent stock solution of reference substances.
Accurately transfer between 100 µl to 500 µl of each single standard solution (5.7) into an amber, 10-ml
volumetric flask and bring to volume with the appropriate solvent, e.g. toluene, or nonane, or iso-octane (5.1).
(Concentrations are between 10 µg/ml and 50 µg/ml per substance.)
5.9 Calibration solutions for multicomponent-multilevel calibration.
Prepare, e.g. seven calibration solutions with concentrations according to the detection capacity of the mass
spectrometer. Combine the multicomponent stock solutions of reference substances (5.8), internal standards
(5.10) and, if necessary, injection standard (5.12) to produce the solutions (e.g. shown in Table 5) by
appropriate dilution with the appropriate solvent, e.g. toluene, or nonane, or iso-octane (5.1).
In order to avoid potential photodegradation, store the solutions in the dark. Check the concentrations of
calibration solutions before use.
Use one of the calibration solutions to optimize the GC-MS system and to determine the retention times. As
an alternative, determine and use relative retention times.
5.10 Stock solution of the internal standards.
Prepare a stock solution of the internal standards at an appropriate concentration in, e.g. toluene or iso-octane
(2,2,4-trimethylpentane). Dilute this stock solution. See Table 5 for suggested concentrations of calibration
solutions and sample extracts.
5.11 Clean-up material.
See Annex A.
5.12 Injection standard.
Use an injection standard, e.g. dibromooctafluorobiphenyl (C Br F ), to determine recovery rates for the
12 2 8
internal standard in each sample.
5.13 Baked sand.
Bake sand for at least 8 h at 400 °C.
6 Apparatus
Clean all glassware by rinsing with acetone (propanone) (5.1). Heating the glassware to 400 °C will reduce
blanks. Recalibrate volumetric apparatus prior to use if heated.
6.1 Wide-necked bottle, 1 000 ml up to 5 000 ml capacity, for wet sediment or sludge.
6.2 Freeze drying apparatus.
6.3 Deep freezer.
6.4 Mortar and pestle, or a grinding mill.
4 © ISO 2006 – All rights reserved

6.5 Drying ovens, capable of maintaining temperatures in the ranges of 100 °C to 400 °C for baking and
storage of clean-up materials, for baking of glassware and for dry residue determination of samples.
6.6 Sieve shaker with appropriate sieve meshes (aperture size), e.g. 2 mm.
6.7 Desiccator.
6.8 Soxhlet extraction apparatus, consisting of round bottom flasks (e.g. 250 ml), Soxhlet extractors and
Soxhlet thimbles (e.g. 27 mm × 100 mm), vertical condensers (e.g. 300 mm) and heating apparatus.
6.9 Evaporation device, e.g. rotary evaporator, turbo evaporator or vacuum concentration device.
6.10 Glass columns for chromatographic clean-up.
6.11 Volumetric cylinders, 250 ml and 500 ml.
6.12 Volumetric flasks, 1 ml, 2 ml, 10 ml, and 25 ml.
6.13 Pasteur pipettes, e.g. 2 ml.
6.14 Syringes, 2 µl, 5 µl, 10 µl and 50 µl, volume precision ± 2 %.
6.15 Sample vials.
Amber glass with fluoropolymer-lined screw-cap is most suitable.
6.16 Gas chromatograph, with either a splitless injection port or an on-column injection port coupled to a
mass spectrometer (GC-MS) with electron impact or chemical ionization and appropriate reactant gas
(e.g. CH ).
6.17 Analytical column.
Fused silica column with non-polar low bleed separating phase (see Annex B for examples), e.g. inner
diameter < 0,25 mm, length 15 m to at maximum 30 m (shorter columns for higher brominated congeners).
A film thickness of 0,1 µm is recommended.
7 Sampling and sample pre-treatment
Take samples as specified in ISO 5667-13 in a bottle (6.1). Store and transport in the dark at approximately
4 °C. Pre-treat the samples immediately in the laboratory by homogenizing and freeze-drying. Grind the
samples using apparatus (6.4) and sieve them using a sieve shaker (6.6) according to the analytical task.
8 Procedure
8.1 Extraction
Transfer a suitable mass, e.g. 5 g to 10 g, of the pre-treated, dry sample into a Soxhlet thimble. Depending on
the expected concentration in the sample, add 100 µl to 1 000 µl of the internal standard solution (5.10), to the
Soxhlet thimble. Place the thimble in the Soxhlet extractor. The various solvents given in 5.1 produce similar
extraction efficiencies after a 16 h Soxhlet extraction. Certain sample matrices may require a more polar
solvent to efficiently extract the PDBE congeners, e.g. a mixture of acetone (propanone) and hexane, or
dichloromethane.
Other extraction techniques, e.g. accelerated solvent extraction, and shorter extraction times may be used
after performing comparability exercise with a 16 h Soxhlet extraction.
Fill the round-bottomed flask with, e.g. 100 ml of the solvent (5.1) and connect it to the Soxhlet extractor. The
addition of boiling chips is useful. Lower the flask into the heating apparatus. Adjust the temperature of the
heating device until the refluxing solvent reaches the lower part of the vertical condenser. Extract the sample
for 16 h.
After the extraction is complete, concentrate the extract nearly to dryness using a suitable evaporation device
(6.9).
Protect samples and extracts carefully from sunlight to avoid photodegradation of the decabromo diphenyl
ether (C Br O).
12 10
Extraction of BDE-209 requires specific attention and, sometimes, longer extraction times than other PBDE
congeners. Use toluene as an extraction solvent for extraction of BDE-209. During concentration, use toluene
as a keeper.
8.2 Clean-up
Depending on the different sample matrices encountered, a variety of sample extract clean-up procedures
may be suitable. Examples of clean-up procedures are given in Annex A. The recovery efficiency of all internal
standards (see also 9.3 and 9.5) shall be 60 % or better. In most cases, use of a clean-up column given in A.1
followed by the procedure in A.2 is successful.
8.3 Measurement
Optimize the operating conditions of the GC-MS system, e.g. according to the manufacturer’s instructions.
Examples of the gas chromatographic conditions are given in Annex B.
Prior to analysis, establish the operating conditions and verify the GC-MS system performance and the
calibration for all analytes and their internal standards by analysis of a calibration standard.
Add the injection standard (5.12), if necessary, and analyse the sample with GC-MS.
Especially for the analysis of BDE-209, minimise the exposure of the samples to high temperatures for long
periods of times during the injection and separation stages, because of the thermal degradation of BDE-209 at
temperatures higher than 300 °C. Optimize the injection step, paying special attention to the peak height of
BDE-209.
8.4 Blank determination
Analyse as a blank, a clean Soxhlet thimble in exactly the same way as the sample, but replacing the sample
by the appropriate amount of baked sand (5.13). The concentration of PBDE in the blank should be negligible,
compared with the concentrations of PBDEs to be determined.
8.5 Identification
Consider an analyte to be identified,
⎯ if the retention time of the analyte in the mass chromatogram of the sample is the same as the retention
time of the reference substance in the mass chromatogram of the calibration standard solution measured
under identical experimental conditions (the deviation shall be below 1 %, and not exceeding 12 s), and
⎯ if the ratio of the quantification and qualifier mass is within ± 10 % of the theoretical bromine isotope ratio.
See Table 3 for typical ions when negative ion chemical ionization detection used.
6 © ISO 2006 – All rights reserved

Table 3 — Ions for negative ion chemical ionization detection
Compound Ions for quantification Ions for qualification
BDE-47 79 81
BDE-99 79 81
BDE-100 79 81
BDE-154 79 81
BDE-153 79 81
BDE-183 79 81
a
BDE-209 486,7 484,7
Internal standards
BDE-77 79 81
BDE-181 79 81
C-BDE-209 494,7 496,7
a
Do not use the ion 488,7 because of overlapping with a fragment ion from
C-BDE-209.
The following ions (Table 4) are proposed for electron impact ionization detection. The values in brackets are
the percent ratio between the most intensive qualifier ion and the second qualifier ion. Use two representative
masses with a recognizable bromine-pattern for identification of each compound. It is also possible to use
more than one ion for quantification.
Table 4 — Ions for electron impact ionization detection
Compound Ions for quantification Ions for qualification
BDE-47 325,9 483,7 (69,5), 485,7 (100)
BDE-99 405,7 563,6 (100), 565,6 (98)
BDE-100 405,7 563,6 (100), 565,6 (98)
BDE-153 485,7 641,5 (100), 643,5 (73,4)
BDE-154 485,7 641,5 (100), 643,5 (73,4)
BDE-183 563,6 721,4 (100), 723,4 (93,6)
BDE-209 799,3 (100) 959,1 (25), 797,3 (81)
C-BDE-47 339,9 495,7 (69.5), 497,7 (100)
C-BDE-99 417,7 575,6 (100), 577,6 (98)
C-BDE-153 497,7 653,5 (100), 655,5 (73,4)
C-BDE-209 811,3 (100) 971,1 (25), 809,3 (81)
Check that the ions used are free from interferences caused by matrix components.
See Annex C for other ions that may be used and suggested time windows.
9 Calibration
9.1 General
Modern mass spectrometric detection provides linear correlations between the concentrations of single
substances and the corresponding responses over several decades of concentration. This facilitates an
effective means of calibration. It is necessary to carry out the following steps.
9.2 Procedure steps
9.2.1 Evaluation of the range of the linear relationship
See Table 5 as an example of concentrations (5.9) for evaluating a linear range over several decades of
concentration. The linear relationship should be assured with the concentration and response relationships as
used in internal standardization (see 9.3). Plot, for example, the ratio values y /y (peak areas, peaks heights
i is,i
or integration units) for each substance i on the ordinate and the associated ratio of mass concentrations
ρ /ρ on the abscissa. Ch
...


NORME ISO
INTERNATIONALE 22032
Première édition
2006-12-15
Qualité de l'eau — Dosage d'une
sélection d'éthers diphényliques
polybromés dans des sédiments et des
boues d'épuration — Méthode par
extraction et chromatographie en phase
gazeuse/spectrométrie de masse
Water quality — Determination of selected polybrominated diphenyl
ethers in sediment and sewage sludge — Method using extraction and
gas chromatography/mass spectrometry

Numéro de référence
©
ISO 2006
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Sommaire Page
Avant-propos. iv
Introduction . v
1 Domaine d'application. 1
2 Références normatives . 2
3 Principe. 2
4 Interférences . 2
5 Réactifs et étalons . 3
6 Appareillage . 4
7 Échantillonnage et prétraitement de l'échantillon. 5
8 Mode opératoire . 5
9 Étalonnage. 8
10 Rapport d'essai . 12
Annexe A (informative) Modes opératoires de purification . 13
Annexe B (informative) Exemples de conditions de séparation par chromatographie en phase
gazeuse et par spectrométrie de masse.17
Annexe C (informative) Ions types et fenêtres de temps pour la détection par ionisation par
impact électronique. 20
Annexe D (informative) Exemples de chromatogrammes et de spectres de masse. 21
Annexe E (informative) Données de fidélité . 26
Bibliographie . 27

Avant-propos
L'ISO (Organisation internationale de normalisation) est une fédération mondiale d'organismes nationaux de
normalisation (comités membres de l'ISO). L'élaboration des Normes internationales est en général confiée
aux comités techniques de l'ISO. Chaque comité membre intéressé par une étude a le droit de faire partie du
comité technique créé à cet effet. Les organisations internationales, gouvernementales et non
gouvernementales, en liaison avec l'ISO participent également aux travaux. L'ISO collabore étroitement avec
la Commission électrotechnique internationale (CEI) en ce qui concerne la normalisation électrotechnique.
Les Normes internationales sont rédigées conformément aux règles données dans les Directives ISO/CEI,
Partie 2.
La tâche principale des comités techniques est d'élaborer les Normes internationales. Les projets de Normes
internationales adoptés par les comités techniques sont soumis aux comités membres pour vote. Leur
publication comme Normes internationales requiert l'approbation de 75 % au moins des comités membres
votants.
L'attention est appelée sur le fait que certains des éléments du présent document peuvent faire l'objet de
droits de propriété intellectuelle ou de droits analogues. L'ISO ne saurait être tenue pour responsable de ne
pas avoir identifié de tels droits de propriété et averti de leur existence.
L'ISO 22032 a été élaborée par le comité technique ISO/TC 147, Qualité de l'eau, sous-comité SC 2,
Méthodes physiques, chimiques et biochimiques.
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Introduction
Il convient d'informer l'utilisateur que des problèmes particuliers peuvent imposer de spécifier d'autres
conditions limites.
NORME INTERNATIONALE ISO 22032:2006(F)

Qualité de l'eau — Dosage d'une sélection d'éthers
diphényliques polybromés dans des sédiments et des boues
d'épuration — Méthode par extraction et chromatographie en
phase gazeuse/spectrométrie de masse
AVERTISSEMENT — Il convient que l'utilisateur de la présente Norme internationale connaisse bien
les pratiques courantes de laboratoire. La présente Norme internationale n'a pas pour but de traiter
tous les problèmes de sécurité qui sont, le cas échéant, liés à son utilisation. Il incombe à l'utilisateur
de la présente Norme internationale d'établir des pratiques appropriées en matière d'hygiène et de
sécurité, et de s'assurer de la conformité à la réglementation nationale en vigueur.
IMPORTANT — Il est absolument essentiel que les essais conduits conformément à la présente
Norme internationale soient exécutés par du personnel ayant reçu une formation appropriée.
1 Domaine d'application
La présente Norme Internationale spécifie une méthode de détermination d'une sélection d'éthers
diphényliques polybromés (PBDE) (voir Figure 1 et Tableau 1) dans les sédiments et les boues, par
chromatographie en phase gazeuse/spectrométrie de masse (CG/SM) avec ionisation par impact électronique
(EI) ou ionisation chimique négative (NCI).
Dans le cas de la CG-EI-SM, la méthode s'applique à des échantillons contenant de 0,05 µg/kg à 25 µg/kg de
congénères tétrabromés à octabromés et de 0,3 µg/kg à 100 µg/kg d'éther diphénylique décabromé
(BDE-209), respectivement. Avec la CG-NCI-SM, il est possible de quantifier des concentrations
approximativement dix fois inférieures. Le risque de mauvaise interprétation des substances interférentes est
moindre avec l'ionisation par impact électronique en raison de sa plus grande spécificité. La présente Norme
internationale peut être utilisée pour analyser d'autres éthers diphényliques bromés mais son applicabilité doit
être vérifiée dans chaque cas.

Figure 1 — Formule chimique des éthers diphényliques polybromés
Tableau 1 — Congénères de PBDE déterminés par cette méthode
a
N° Congénère Formule Abréviation Masse molaire
g/mol
1 2,2',4,4'-Tétrabromodiphényléther C H BrO BDE-47 485,795 0
12 6 4
2 2,2',4,4',5-Pentabromodiphényléther C H BrO BDE-99 564,691 1
12 5 5
3 2,2',4,4',6-Pentabromodiphényléther C H BrO BDE-100 564,691 1
12 5 5
4 2,2',4,4',5,6'-Hexabromodiphényléther C H BrO BDE-154 643,587 2
12 4 6
5 2,2',4,4',5,5'-Hexabromodiphényléther C H BrO BDE-153 643,587 2
12 4 6
6 2,2',3,4,4',5',6-Heptabromodiphényléther C H BrO BDE-183 722,483 2
12 3 7
7 Décabromodiphényléther C BrO BDE-209 959,171 4
12 10
a
Numérotation analogue à la nomenclature IUPAC du PCB.
2 Références normatives
Les documents de référence suivants sont indispensables pour l'application du présent document. Pour les
références datées, seule l'édition citée s'applique. Pour les références non datées, la dernière édition du
document de référence s'applique (y compris les éventuels amendements).
ISO 5667-13, Qualité de l'eau — Échantillonnage — Partie 13: Guide pour l'échantillonnage de boues
provenant d'installations de traitement de l'eau et des eaux usées
ISO 8466-1, Qualité de l'eau — Étalonnage et évaluation des méthodes d'analyse et estimation des
caractères de performance — Partie 1: Évaluation statistique de la fonction linéaire d'étalonnage
3 Principe
Extraction des éthers diphényliques bromés de l'échantillon séché avec un solvant organique. Purification de
l'extrait par chromatographie sur colonne de gel de silice multicouche. Après concentration, séparation des
éthers diphényliques bromés par chromatographie en phase gazeuse sur colonne capillaire et détection par
spectrométrie de masse en mode scrutation d'ion spécifique soit par impact électronique (EI), soit en
ionisation chimique négative (NCI). Pour déterminer la concentration dans l'échantillon, la technique de
l'étalon interne est utilisée sur la totalité du mode opératoire.
4 Interférences
Lorsqu'on applique la CG-NCI-SM, le 2,2',4,4',5,5'-hexabromobiphényle (BB-153) et le tétrabromobisphénol A
peuvent coéluer avec le BDE-154 et le BDE-153, respectivement, en cas d'utilisation de colonnes capillaires
non polaires et peuvent donc interférer avec la détermination des congénères correspondants du BDE lors de
la scrutation des ions bromures avec m/z = 79 et m/z = 81. De plus, des composés bromés produits
naturellement tels que les bipyrroles halogénés et les phénoxyanisoles bromés peuvent être considérés
comme des interférants potentiels.
Les sources de contamination sont les suivantes: éthers diphényliques bromés utilisés comme ignifugeants
dans les polymères organiques. Il y a lieu, par conséquent, d'éviter tout contact entre l'échantillon ou les
réactifs et ces polymères organiques. Les voies de contamination incluent les poussières aériennes, les
bouchons de flacons, les raccords de pipettes Pasteur et le papier recyclé.
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5 Réactifs et étalons
Utiliser uniquement des réactifs ayant des concentrations négligeables en éthers diphényliques bromés, en
comparaison avec la concentration à déterminer, et procéder à des vérifications en effectuant des essais à
blanc. Pour empêcher toute dégradation, stocker les étalons à l'abri de la lumière aux températures
recommandées par le fabricant (de préférence approximativement −18 °C pour les solutions d'étalonnage).
5.1 Solvants pour l'extraction, la purification et la préparation des solutions mères.
Différents solvants peuvent être utilisés en fonction de la matrice de l'échantillon à analyser et de la
disponibilité dans le commerce d'une solution étalon, par exemple du toluène (C H ), ou de l'acétone
7 8
(propanone-2, C H O), ou un mélange d'acétone (propanone-2, C H O) et d'hexane (C H ), ou de
3 6 3 6 6 14
l'heptane (C H ), ou de l'iso-octane (triméthyl 2,2,4-pentane, C H ), ou bien du nonane (C H ), ou encore
7 16 8 18 9 20
du dichlorométhane (CH Cl ) pour analyse de résidus.
2 2
5.2 Substances de référence.
Voir Tableau 1. Des solutions des substances de référence sont disponibles commercialement.
5.3 Étalons internes.
Il existe dans le commerce des solutions des substances de référence destinées à être utilisées comme
étalons internes pour l'ionisation par impact électronique (Tableau 2, substances 1 à 5) et pour l'ionisation
chimique négative (Tableau 2, substances 6, 7 et 8).
Tableau 2 — Exemples d'étalons internes
N° Nom Formule Abréviation Masse molaire
g/mol
Étalons internes pour CGSM avec ionisation par impact électronique
13 13 13
1 Tétrabromo[ C ] 2,2',4,4' – diphényléther C H Br O C-BDE-47 497,703 5
12 12 6 4
13 13 13
2 Pentabromo[ C ] 2,2',4,4',5 – diphényléther C H Br O C-BDE-99 576,599 5
12 12 5 5
13 13 13
3 Hexabromo[ C ] 2,2',4,4',5,5' – diphényléther C H Br O C-BDE-153 655,495 5
12 12 4 6
13 13 13
4 Heptabromo[ C ] 2,2',3,4,4',5',6 – diphényléther C H Br O C-BDE-183 734,391 6
12 12 3 7
13 13 13
5 Décabromo[ C ] diphényléther C Br O C-BDE-209 971,079 7
12 12 10
a
Étalons internes pour CGSM par ionisation chimique négative

6 Tétrabromo 3,3',4,4' – diphényléther C H Br O BDE-77 485,795 0
12 6 4
7 Heptabromo 2,2',3,4,4',5,6 – diphényléther C H Br O BDE-181 722,483 2
12 3 7
13 13 13
8 Décabromo[ C ]diphényléther C Br O C-BDE-209 971,079 7
12 12 10
a
En cas d'utilisation d'un PBDE non référencé comme étalon interne, vérifier l'existence éventuelle d'interférences.
D'autres congénères de BDE peuvent être utilisés comme étalons internes, par exemple BDE-140.
5.4 Sulfate de sodium, anhydre, Na SO , en poudre.
2 4
5.5 Gaz de laboratoire, pour chromatographie en phase gazeuse/spectrométrie de masse, de haute
pureté et conformes aux spécifications du fabricant.
5.6 Azote, de haute pureté, ayant une fraction volumique d'au moins 99,999 %, pour le séchage et la
concentration par évaporation.
5.7 Solutions de substances de référence individuelles/étalons internes.
Utiliser des solutions disponibles dans le commerce (éventuellement dans du nonane, du toluène ou de l'iso-
octane) ou préparer des solutions mères, par exemple par dissolution de 10 mg de chacune des substances
de référence (5.2, 5.3) dans du toluène (5.1) dans une fiole jaugée ambrée de 10 ml, puis ajuster le volume
(concentration: 1 mg/ml). Conserver à l'abri de la lumière à −18 °C environ.
5.8 Solution mère multiélément des substances de référence.
Transvaser exactement une quantité comprise entre 100 µl et 500 µl de chaque solution étalon
individuelle (5.7) dans une fiole jaugée ambrée de 10 ml et ajuster le volume avec le solvant approprié, par
exemple du toluène, du nonane ou de l'iso-octane (5.1) (pour chaque substance, les concentrations sont
comprises entre 10 µg/ml et 50 µg/ml).
5.9 Solutions d'étalonnage pour étalonnage multiélément-multiniveau.
Préparer, par exemple, sept solutions d'étalonnage ayant des concentrations compatibles avec la gamme de
détection du spectromètre de masse. Combiner les solutions mères multiélément des substances de
référence (5.8), les étalons internes (5.10) et, si nécessaire, l'étalon d'injection (5.12) de façon à obtenir les
solutions (par exemple indiquées dans le Tableau 5) par dilution appropriée avec le solvant approprié, par
exemple du toluène, du nonane ou de l'iso-octane (5.1).
Pour éviter une éventuelle photodégradation, conserver les solutions à l'abri de la lumière. Vérifier la
concentration des solutions d'étalonnage avant utilisation.
Utiliser l'une des solutions d'étalonnage pour optimiser le système de CG-SM et pour déterminer les temps de
rétention. Il est également possible de déterminer et d'utiliser les temps de rétention relatifs.
5.10 Solution mère d'étalons internes.
Préparer une solution mère des étalons internes à une concentration appropriée dans du toluène ou de
l'iso-octane (triméthyl 2,2,4-pentane) par exemple. Diluer cette solution mère. Voir le Tableau 5 pour obtenir
les concentrations suggérées pour les solutions d'étalonnage et les extraits de l'échantillon.
5.11 Matériau de purification.
Voir l'Annexe A.
5.12 Étalon d'injection.
Utiliser un étalon d'injection tel que le dibromooctafluorobiphényle (C Br F ), pour déterminer les taux de
12 2 8
récupération de l'étalon interne dans chaque échantillon.
5.13 Sable chauffé.
Chauffer du sable à 400 °C pendant au moins 8 h.
6 Appareillage
Nettoyer toute la verrerie en la rinçant à l'acétone (propanone) (5.1). Le chauffage de la verrerie à 400 °C
permet de réduire les valeurs observées lors de l'analyse de blancs. Réétalonner tout accessoire
volumétrique avant utilisation s'il a été chauffé.
6.1 Flacon à col large, d'une capacité de 1 000 ml à 5 000 ml, pour les sédiments humides ou les boues.
6.2 Lyophilisateur.
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6.3 Congélateur.
6.4 Mortier et pilon, ou broyeur.
6.5 Étuves, permettant de maintenir des températures dans la plage de 100 °C à 400 °C, pour chauffer et
conserver les matériaux de purification, pour chauffer la verrerie et pour déterminer la teneur en matière
sèche des échantillons.
6.6 Tamis vibrant ayant une ouverture de mailles appropriée, par exemple de 2 mm.
6.7 Dessiccateur.
6.8 Extracteur Soxhlet, composé de ballons à fond rond (par exemple de 250 ml), extracteurs Soxhlet et
cartouches à extraction Soxhlet (par exemple de 27 mm × 100 mm), réfrigérants verticaux (par exemple de
300 mm) et appareil de chauffage.
6.9 Évaporateur, par exemple évaporateur rotatif, turbo-évaporateur ou dispositif de concentration sous
vide.
6.10 Colonnes en verre, pour purification par chromatographie.
6.11 Éprouvettes graduées, de 250 ml et 500 ml.
6.12 Fioles jaugées, de 1 ml, 2 ml, 10 ml et 25 ml.
6.13 Pipettes Pasteur, de 2 ml par exemple.
6.14 Microseringues, de 2 µl, 5 µl, 10 µl et 50 µl, ayant une incertitude volumétrique de ± 2 %.
6.15 Flacons à échantillons.
Des flacons en verre ambré à bouchon à vis revêtu de polymère fluoré conviennent très bien.
6.16 Chromatographe pour phase gazeuse, avec soit un injecteur de type à débit non divisé («splitless»),
soit un injecteur de type sur colonne («on column»), couplé à un spectromètre de masse (CG-SM) avec
ionisation chimique ou ionisation par impact électronique et un gaz réactant approprié (par exemple CH4).
6.17 Colonne analytique.
Colonne de silice fondue avec phase séparatrice non polaire, à faible traînée (voir des exemples dans
l'Annexe B), par exemple de diamètre intérieur < 0,25 mm, de longueur entre 15 m et 30 m au maximum
(colonnes plus courtes pour les congénères à teneur en brome plus élevée). Un film d'épaisseur 0,1 µm est
recommandé.
7 Échantillonnage et prétraitement de l'échantillon
Prélever les échantillons comme spécifié dans l'ISO 5667-13 et les introduire dans un flacon (6.1). Conserver
et transporter à l'abri de la lumière à environ 4 °C. Prétraiter les échantillons immédiatement au laboratoire
par homogénéisation et lyophilisation. Broyer les échantillons au moyen de l'appareil (6.4) et les tamiser à
l'aide du dispositif choisi (6.6) en fonction de l'analyse.
8 Mode opératoire
8.1 Extraction
Transférer une masse appropriée, par exemple entre 5 g et 10 g, d'échantillon sec prétraité dans une
cartouche de Soxhlet. En fonction de la concentration attendue dans l'échantillon, ajouter dans la cartouche
entre 100 µl et 1 000 µl de la solution d'étalon interne (5.10). Mettre en place la cartouche dans l'extracteur
Soxhlet. Les différents solvants indiqués en 5.1 conduisent à des rendements d'extraction similaires, après
une durée d'extraction de 16 h en Soxhlet. Certaines matrices d'échantillon peuvent nécessiter un solvant
plus polaire pour extraire efficacement les congénères de PDBE, par exemple un mélange d'acétone
(propanone) et d'hexane ou du dichlorométhane.
Il est possible de mettre en œuvre d'autres techniques d'extraction, par exemple une extraction accélérée au
solvant, et d'utiliser des durées d'extraction plus courtes si elles sont validées par un test de comparaison
avec l'extraction de Soxhlet sur une durée de 16 h.
Remplir le ballon à fond rond avec, par exemple, 100 ml de solvant (5.1) et le raccorder à l'extracteur Soxhlet.
L'ajout de régulateurs d'ébullition est souhaitable. Introduire le ballon dans le dispositif de chauffage. Régler la
température du dispositif de chauffage jusqu'à ce que le solvant porté à reflux atteigne la partie inférieure du
réfrigérant vertical. Effectuer l'extraction de l'échantillon sur une durée de 16 h.
Une fois l'extraction terminée, concentrer l'extrait jusqu'à quasi-siccité en utilisant un évaporateur
approprié (6.9).
Bien protéger les échantillons et les extraits de la lumière du soleil pour éviter toute photodégradation de
l'éther diphénylique décabromé (C Br O).
12 10
L'extraction du BDE-209 requiert une attention particulière et, parfois, des durées d'extraction plus longues
que pour d'autres congénères de PBDE. Utiliser du toluène comme solvant d'extraction pour extraire
le BDE-209. Pendant la concentration, utiliser du toluène afin d'éviter les pertes par entraînement.
8.2 Purification
Selon les différentes matrices d'échantillon rencontrées, plusieurs procédures de purification de l'extrait de
l'échantillon sont utilisables. L'Annexe A en donne quelques exemples. Le taux de récupération de tous les
étalons internes (voir également 9.3 et 9.5) doit être supérieur ou égal à 60 %. Dans la plupart des cas, la
mise en œuvre d'une purification sur colonne telle que décrite en A.1, suivie de l'application du mode
opératoire A.2, permet d'obtenir un résultat satisfaisant.
8.3 Mesurage
Optimiser les conditions opératoires du système de CG-SM en se conformant, par exemple, aux instructions
du fabricant. Des exemples de conditions chromatographiques sont donnés dans l'Annexe B.
Avant l'analyse, établir ces conditions opératoires et vérifier les performances du système de CG-SM ainsi
que l'étalonnage pour toutes les substances à analyser et leurs étalons internes en procédant à l'analyse d'un
étalon de référence.
Ajouter l'étalon d'injection (5.12), si nécessaire, et analyser l'échantillon par CG-SM.
Pour l'analyse du BDE-209 en particulier, limiter autant que possible l'exposition des échantillons aux
températures très élevées pendant de longues durées, lors des étapes d'injection et de séparation, en raison
de la dégradation thermique du BDE-209 aux températures supérieures à 300 °C. Optimiser l'étape d'injection
en accordant une attention particulière au maximum du pic du BDE-209.
8.4 Dosage à blanc
Analyser une cartouche de Soxhlet propre en tant que blanc exactement de la même façon que l'échantillon
mais en remplaçant ce dernier par la quantité appropriée de sable chauffé (5.13). Il convient que la
concentration de PBDE dans le blanc soit négligeable, en comparaison des concentrations de PBDE à
déterminer.
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8.5 Identification
La substance recherchée est considérée comme identifiée si
⎯ le temps de rétention de la substance recherchée dans le chromatogramme de l'échantillon est le même
que celui de la substance de référence dans le chromatogramme de la solution de l'étalon de référence,
le mesurage étant conduit dans des conditions expérimentales identiques (l'écart doit être inférieur à 1 %
et ne doit pas excéder 12 s), et si
⎯ le rapport de l'ion de qualification à l'ion de quantification est égal à ± 10 % au rapport isotopique
théorique du brome.
Voir le Tableau 3 pour les ions types lorsqu'on utilise la détection par ionisation chimique négative.
Tableau 3 — Ions pour détection par ionisation chimique par ions négatifs
Composé Ions de quantification Ions de qualification
BDE-47 79 81
BDE-99 79 81
BDE-100 79 81
BDE-154 79 81
BDE-153 79 81
BDE-183 79 81
a
BDE-209 486,7 484,7
Étalons internes
BDE-77 79 81
BDE-181 79 81
C-BDE-209 494,7 496,7
a
Ne pas utiliser l'ion 488,7 en raison de l'interférence avec un ion fragment du
C-BDE-209.
Les ions suivants (Tableau 4) sont proposés pour la détection par ionisation par impact électronique. Les
valeurs entre parenthèses représentent le rapport en pourcentage entre l'ion de qualification le plus intense et
le second ion de qualification. Utiliser deux masses représentatives ayant un profil «brome» reconnaissable
pour identifier chaque composé. Il est également possible d'utiliser plusieurs ions de quantification.
Tableau 4 — Ions pour la détection par ionisation par impact électronique
Composé Ions de quantification Ions de qualification
BDE-47 325,9 483,7 (69,5), 485,7 (100)
BDE-99 405,7 563,6 (100), 565,6 (98)
BDE-100 405,7 563,6 (100), 565,6 (98)
BDE-153 485,7 641,5 (100), 643,5 (73,4)
BDE-154 485,7 641,5 (100), 643,5 (73,4)
BDE-183 563,6 721,4 (100), 723,4 (93,6)
BDE-209 799,3 (100) 959,1 (25), 797,3 (81)
C-BDE-47 339,9 495,7 (69.5), 497,7 (100)
C-BDE-99 417,7 575,6 (100), 577,6 (98)
C-BDE-153 497,7 653,5 (100), 655,5 (73,4)
C-BDE-209 811,3 (100) 971,1 (25), 809,3 (81)
Vérifier que les ions utilisés sont exempts de signaux d'interférences dus aux constituants de la matrice.
Voir l'Annexe C pour les autres ions susceptibles d'être utilisés et pour les fenêtres de temps suggérées.
9 Étalonnage
9.1 Généralités
Les systèmes modernes de détection par spectrométrie de masse permettent d'obtenir des corrélations
linéaires entre les concentrations des substances individuelles et les réponses correspondantes sur plusieurs
décades de concentration, d'où l'obtention d'un étalonnage efficace. Il est nécessaire de procéder aux étapes
suivantes.
9.2 Étapes du mode opératoire
9.2.1 Évaluation du domaine de linéarité
Se reporter au Tableau 5 qui donne des exemples de concentrations (5.9) permettant d'évaluer un domaine
de linéarité sur plusieurs décades. Il convient qu'une relation linéaire de type concentration-réponse soit
assurée telle qu'elle est décrite lors de l'étalonnage interne (voir 9.3). À titre d'exemple, représenter
graphiquement le rapport de valeurs y /y (aires de pics, hauteurs de pics ou unités d'intégration) pour
i
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