ISO 13885-1:1998
(Main)Binders for paints and varnishes - Gel permeation chromatography (GPC) - Part 1: Tetrahydrofuran (THF) as eluent
Binders for paints and varnishes - Gel permeation chromatography (GPC) - Part 1: Tetrahydrofuran (THF) as eluent
Liants pour peintures et vernis — Chromatographie par perméation de gel (GPC) — Partie 1: Utilisation de tétrahydrofurane (THF) comme éluant
General Information
Relations
Frequently Asked Questions
ISO 13885-1:1998 is a standard published by the International Organization for Standardization (ISO). Its full title is "Binders for paints and varnishes - Gel permeation chromatography (GPC) - Part 1: Tetrahydrofuran (THF) as eluent". This standard covers: Binders for paints and varnishes - Gel permeation chromatography (GPC) - Part 1: Tetrahydrofuran (THF) as eluent
Binders for paints and varnishes - Gel permeation chromatography (GPC) - Part 1: Tetrahydrofuran (THF) as eluent
ISO 13885-1:1998 is classified under the following ICS (International Classification for Standards) categories: 87.060.20 - Binders. The ICS classification helps identify the subject area and facilitates finding related standards.
ISO 13885-1:1998 has the following relationships with other standards: It is inter standard links to ISO 13885-1:2008. Understanding these relationships helps ensure you are using the most current and applicable version of the standard.
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Standards Content (Sample)
INTERNATIONAL ISO
STANDARD 13885-1
First edition
1998-12-15
Binders for paints and varnishes — Gel
permeation chromatography (GPC) —
Part 1:
Tetrahydrofuran (THF) as eluent
Liants pour peintures et vernis — Chromatographie par perméation
de gel (GPC) —
Partie 1: Utilisation de tétrahydrofurane (THF) comme éluant
A
Reference number
Contents
1 Scope .1
2 Normative references .1
3 Definition .2
4 Principle.2
5 Apparatus .2
6 Eluent.5
7 Calibration of the apparatus .6
8 Sampling.8
9 Preparation for the test .8
10 Conditions of analysis .9
11 Data acquisition and evaluation.9
12 Precision.12
13 Test report .13
Annex A (informative) Further information.17
Annex B (informative) Bibliography .23
Annex C (informative) Example of a data sheet for a polymer standard .24
© ISO 1998
All rights reserved. Unless otherwise specified, no part of this publication may be reproduced or utilized in any form or by any means, electronic
or mechanical, including photocopying and microfilm, without permission in writing from the publisher.
International Organization for Standardization
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Internet iso@iso.ch
Printed in Switzerland
ii
© ISO
Foreword
ISO (the International Organization for Standardization) is a worldwide federation of national standards bodies (ISO
member bodies). The work of preparing International Standards is normally carried out through ISO technical
committees. Each member body interested in a subject for which a technical committee has been established has
the right to be represented on that committee. International organizations, governmental and non-governmental, in
liaison with ISO, also take part in the work. ISO collaborates closely with the International Electrotechnical
Commission (IEC) on all matters of electrotechnical standardization.
Draft International Standards adopted by the technical committees are circulated to the member bodies for voting.
Publication as an International Standard requires approval by at least 75 % of the member bodies casting a vote.
International Standard ISO 13885-1 was prepared by Technical Committee ISO/TC 35,
Paints and varnishes,
Subcommittee SC 10, Test methods for binders for paints and varnishes.
ISO 13885 will consist of the following parts, under the general title Binders for paints and varnishes — Gel
permeation chromatography:
Part 1: Tetrahydrofuran (TMF) as eluent
Part 2: N,N-dimethylacetamide (DMAC) as eluent
Part 3: Water as eluent
At the time of publication of this part of ISO 13885, parts 2 and 3 were still at the planning stage.
Annexes A to C of this part of ISO 13885 are for information only.
iii
INTERNATIONAL STANDARD © ISO ISO 13885-1:1998(E)
Binders for paints and varnishes — Gel permeation
chromatography (GPC) —
Part 1:
Tetrahydrofuran (THF) as eluent
WARNING — This part of ISO 13885 may involve hazardous materials, operations and equipment. It does
not purport to address all of the safety problems associated with its use. It is the responsibility of the user
of this part of ISO 13885 to establish appropriate safety and health practices and determine the applicability
of regulatory limitations prior to use. A specific hazard statement appears in clause 6.
1 Scope
This part of ISO 13885 is one of a series of standards dealing with the sampling and testing of paints, varnishes and
related products.
It describes conditions for the determination of the molecular-mass distribution, number-average molecular mass M
n
and mass-average molecular mass M of polymers that are soluble in THF (tetrahydrofuran) by gel permeation
w
1)
chromatography (GPC) .
It is possible that, in spite of the good repeatability obtained with this method, it cannot be used with certain polymer
types because of specific interactions, such as adsorption within the sample/eluent/column system.
The method is not an absolute one and requires calibration with commercially available unbranched-polystyrene
standards that have been characterized by absolute methods. The results for samples of polymers other than
polystyrene are therefore only comparable within groups of samples of the same type.
The conditions specified in this part of ISO 13885 are not suitable for the GPC analysis of polymer samples with M
w
values greater than 10 (see annex A).
No correction methods, e.g. for the elimination of peak broadening, are included in this part of ISO 13885. If
absolute molecular-mass values are required, an absolute method, e.g. membrane osmometry for M or light
n
scattering for M , must be used.
w
2 Normative references
The following standards contain provisions which, through reference in this text, constitute provisions of this part of
ISO 13885. At the time of publication, the editions indicated were valid. All standards are subject to revision, and
parties to agreements based on this part of ISO 13885 are encouraged to investigate the possibility of applying the
most recent editions of the standards indicated below. Members of IEC and ISO maintain registers of currently valid
International Standards.
ISO 1513:1992, Paints and varnishes — Examination and preparation of samples for testing.
ISO 5725-1:1994, Accuracy (trueness and precision) of measurement methods and results — Part 1: General
principles and definitions.
1) Also known as size exclusion chromatography (SEC).
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2)
ISO 15528:— , Paints and varnishes — Sampling.
ASTM D 3536-91, Test method for molecular weight averages and molecular weight distribution by liquid exclusion
chromatography (gel permeation chromatography — GPC).
ASTM D 5296-92, Test method for molecular weight averages and molecular weight distribution of polystyrene by
high performance size-exclusion chromatography.
3 Definition
For the purposes of this part of ISO 13885, the following definition applies.
3.1
gel permeation chromatography
a chromatographic method in which the completely dissolved molecules of a polymer sample are fractionated on a
porous column material, separation taking place according to the size of the molecule (or more precisely the size of
the polymer coil which forms in this elution solvent)
NOTE 1 Small molecules diffuse into the pores of the column material more frequently and are therefore retarded more than
large molecules. Thus large molecules are eluted earlier, small molecules later. Under the test conditions given, the retention
volume is solely a function of the size of the molecule.
NOTE 2 This is a special form of liquid chromatography.
4 Principle
The polymer content of a sample is determined, the sample is then diluted with eluent to give a concentration of less
than 5 g/l and an aliquot of the diluted sample is injected into the GPC system. The concentration of the molecules
eluted from the column is measured in order of decreasing coil size with a concentration-sensitive detector, typically
a differential refractometer. The molecular-mass distribution, the quantities M and M and the heterogeneity or
n w
polydispersity M /M are calculated from the resultant chromatogram with the aid of a calibration curve that has
w n
been determined for the particular GPC system.
5 Apparatus
The apparatus shall consist of the components shown in figure 1, which are described below.
It is essential that all components which come into contact with the eluent or the sample solution, are resistant to
them and do not exhibit adsorption or memory effects in any form. The individual components of the GPC
apparatus, which in this case uses THF as eluent, shall be linked with stainless-steel capillary tubes.
5.1 Eluent supply
The eluent reservoir shall provide the eluent with adequate protection against external influences such as the
atmosphere and light, if necessary by means of a blanket of inert gas over the surface of the liquid. The eluent
reservoir shall have sufficient capacity for the apparatus to be brought to the equilibrium between elution solvent
and the surface of the column material and for several analyses to be conducted.
The eluent shall be degassed, either before it is introduced into the reservoir or by use of a device fitted between
the reservoir and the pump, to prevent malfunctions of the pump or the formation of bubbles in the detector. The
method of degassing used, e.g. bubble trap, online purging with helium, or vacuum degassing, is open to choice but
shall be stated in the test report.
2) To be published. (Revision of ISO 842:1984 and ISO 1512:1991)
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5.2 Pump
The pump ensures that the eluent flow through the column is as smooth and pulse-free as possible. The flow rate
shall be 1 ml/min. To fulfil these requirements, the pump shall operate at optimum efficiency at this flow rate.
Either the pump shall be designed to ensure that the level of detector noise specified in 5.6 is maintained or a pulse
dampener shall be fitted immediately downstream of the pump.
The parameter which characterizes a polymer molecule of a particular size is the volume eluted between injection of
the sample solution and elution of the polymer. The reproducibility of measurement of this volume shall be better
than 0,3 %. If the retention volume is not measured by a flow meter whose design provides adequate accuracy, but
only indirectly from the elution time, the constancy of the pumping rate and the reproducibility of the pumps used are
more critical: the constancy and reproducibility of about 1 % that can currently be achieved over long operating
times is inadequate for the molecular-mass measurement reproducibility required. When the chromatograms are
evaluated on the basis of time, it is therefore necessary to check that the flow conditions during calibration and
analysis are the same, e.g. by using internal standards in the calibration and sample solutions, and, if the flow
conditions are not the same, making appropriate corrections. The internal standards used shall be stated in the test
report.
5.3 Injection system
The injection system serves to introduce a predetermined, precise amount of the sample solution into the eluent
stream in a rapid and smooth fashion.
When filling the sample loop with sample solution and subsequently introducing the sample solution into the eluent
stream, the volume of liquid used shall be great enough to ensure that, even if laminar-flow effects occur, the
sample loop is completely filled with the sample solution and subsequently completely flushed out.
Memory effects from the previous sample solution in the injection system shall be avoided by suitable design or by
adequate flushing.
5.4 Columns
The apparatus shall have one or more columns connected in series and packed with spherical porous material, the
diameter of the pores corresponding to the size of the polymer molecules being analysed.
The packing material typically consists of a styrene/divinylbenzene copolymer (S/DVB), produced by a special
polymerization process, which swells only slightly in the solvent and therefore does not deform under the pressure
developed at the flow rate of 1 ml/min.
In addition to these macroporous spherical S/DVB particles, packing materials based on other organic monomers or
on silicon dioxide (silica) are also used. The criterion for their use is that no adsorptive interaction shall occur
between their surface and the polymer molecules in the sample. Furthermore, the sample being analysed shall not
be changed, either chemically or structurally, within the chromatographic system.
Certain polymers can interact with the surface of the packing material, e.g. by adsorption, and other effects can
sometimes interfere with the GPC separation mechanism. Details of such effects and notes on possible remedies
are discussed in annex A. If it is intended to compare analyses by different laboratories of such polymers, the
laboratories shall agree on details of the test conditions that are not covered by this part of ISO 13885.
It is practically impossible to obtain two columns with the same pore radius distribution and quality of packing. To
meet the objective of this part of ISO 13885 of obtaining results that agree as well as possible in different
laboratories using different GPC apparatus with the same sample, it is necessary to adhere to the minimum
requirements specified below with regard to peak broadening (expressed in terms of a number of theoretical plates)
and separation performance. The values actually obtained shall be stated in the test report.
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a) Number of theoretical plates
The number of plates shall be determined, for the apparatus used, from the peak width at half height (see figure 2).
Inject 20 ml of a solution of ethylbenzene (concentration 1 g/l) on to the column and evaluate the chromatogram
obtained under the same conditions as are used for analysing polymers, according to equation (1):
V
e
Theoretical plate number N = 5,54 × × . . . (1)
L
W
1/2
where
V is the retention volume or time to the peak maximum;
e
W is the peak width at half height (see figure 2) — use the same units for V and W;
1/2 e
L is the length, in cm, of the column/column system.
Determine the peak width at half height either electronically from at least 30 data points per peak or manually on a
chromatogram where the peak is at least 2 cm wide at half height and at least 15 cm high at the peak maximum.
Express the result as the number of theoretical plates per metre of total column length. To meet the requirements of
this part of ISO 13885, a column system shall have at least 20 000 plates/m.
NOTE Please consult annex A with regard to tailing and fronting (asymmetry) of the peak used to calculate the plate count.
b) Separation performance
To ensure adequate resolution, the log M versus retention volume V calibration curve for the column system used
10 e
shall not exceed a specified gradient. This parameter shall be measured using a pair of polystyrene standards
which elute in the area of the peak maximum for the polymer sample under investigation or shall be obtained from
the calibration curve and evaluated as
VV−
eM, x
eM,()10×x
Separationperformance= > 6,0 . . . (2)
Column cross-sectional area
where
V is the retention volume for polystyrene of molecular mass M , in cm ;
e,Mx x
V is the retention volume for 10 times that molecular mass, in cm ;
e,(10 · Mx)
the column cross-sectional area is in cm .
Select M such that the peak maximum for the polymer sample under investigation lies approximately halfway
x
between these two retention volumes.
NOTE See annex A regarding the minimum resolution required by ASTM D 5296-92, clause 12, equation (3).
5.5 Column temperature control
Carry out the test at room temperature or at a temperature of up to 40 °C. The temperature of the column shall not
change by more than 1 °C during the analysis (see annex A). Conduct the calibration and sample analyses at the
same temperature. When analyses are to be carried out by different laboratories for comparison, the column
temperature shall be agreed upon.
5.6 Detector
Use a differential refractometer detector. The cell volume shall not exceed 0,010 ml.
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NOTE Concerning the restriction to a single detector type, see annex A.
If samples consisting of copolymers or polymer blends are to be analysed, ensure that all the components give a
similar response factor (ratio of detector signal to concentration of analyte in the eluate or, in the case of the
differential refractometer, specific refractive index increment n (usually expressed as dn/dc), i.e. mathematically:
k
i
0,2<< 5 . . . (3)
k
j
where
k and k are the response factors for components i and j, respectively;
i j
dn/dc is the change in the refrative index n related to the change in the concentration c.
If the ratio of the response factors does not fall within this range in the analysis of a set of samples, a different
detector or combination of detectors may be used. If it is intended to compare the results obtained by different
laboratories for such a set of samples, the type of detector shall be agreed upon. If a different detector is used, the
reasons for using it shall be stated in the test report. See annex A.
The detector response obtained using the sample loadings specified in this part of ISO 13885 should, at the lowest
setting for electronic damping, exhibit a noise level of less than 1 % of the maximum height of the polymer peak. As
the noise level is influenced by variations in pressure, temperature and flow rate, particularly in the differential
refractometer, suitable measures shall be taken to maintain a constant temperature and to damp out pulses.
5.7 Flowrate meter
As described in 5.2, the most important parameter in the elution of a certain size of molecule is the retention
volume. The type of flowrate meter used to measure this parameter shall be stated in the test report. If the retention
volume is determined indirectly, e.g. from the elution time, the assumptions made and the measurements carried
out shall also be explained in the test report.
5.8 Data acquisition
In the simplest setup, the signals from the detector are recorded by a chart recorder, though usually they will be
recorded by means of an electronic data system together with information on the retention volume (see clause 11
for details).
6 Eluent
The eluent shall consist of tetrahydrofuran (THF) with the following specification:
Assay > 99,5 %;
Water < 0,05 %;
Peroxides < 0,005 %.
It may be stabilized with max. 250 ppm of 2,6-di-tert-butyl-4-methylphenol to prevent the formation of peroxides.
The peroxide level in the tetrahydrofuran shall be checked before use, e.g. with test strips, and stated in the test
report.
WARNING — THF is highly flammable. The user of this part of ISO 13885 should refer to appropriate safe
handling procedures.
In exceptional cases, which shall be explained in the test report, it may be necessary to incorporate additives in the
THF eluent up to a maximum of 10 g/l, to avoid problems in the analysis of certain samples (see annex A for
details).
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Discard the eluent after using it to condition the column and for the actual analyses, and do not return it to the eluent
reservoir.
7 Calibration of the apparatus
Calibrate the GPC apparatus with a series of unbranched-polystyrene standards of narrow molecular-mass
distribution (see annex A) and whose molecular masses have been determined by independent, absolute methods.
The result is a calibration curve for the evaluation of GPC analyses of polystyrene samples. If this calibration curve
is used to analyse samples of other compositions, containing molecules with other structures, the results shall be
[1]
expressed as the "polystyrene-equivalent molecular mass" .
7.1 Specification for the calibration standard
The molecular-mass distribution of the standard shall be narrower than the limits given below as a function of the
peak-maximum molecular mass M :
p
M , 2 000 g/mol M /M < 1,20
p w n
2 000 g/mol < M , 10 g/mol M /M < 1,05
p w n
10 g/mol < M M /M < 1,20
p w n
The peak-asymmetry factor A/B for each chromatogram, calculated from the peak half-widths A and B at half height
before and after the perpendicular through the peak maximum shall lie in the range
A
= 1,00 0,15 . . . (4)
±
B
The half-widths A and B shall be determined either from electronically acquired data on peaks defined by at least
60 data points or manually on a peak with a width of at least 2 cm at half height and a height of at least 15 cm.
The following minimum requirements shall be fulfilled in the characterization of each individual polystyrene standard
used for calibration:
a) At least one average molecular-mass value M , M or M (see equations in 11.2) shall be determined by an
n w z
absolute method. The M -values are used for calibration, but there is no absolute method of determining M .
p p
Therefore the procedure for obtaining the M -values (e.g. calculation by M and M or iterative GPC
p n w
calibration, starting with the M -values associated with the peak maximum, and re-evaluation of M ) must be
w w
specified in the data sheet of the standard.
b) At least one method shall be used to determine the molecular-mass distribution.
c) All the parameters involved in these methods and used in the calculations shall be stated in the test report.
d) The results and data for each batch analysed shall be presented in a form that can be re-evaluated by the user.
NOTE An example of a data sheet of this type is given in annex C.
Should the calibration standards give a shoulder on either side of the peak, pre-peaks or a tailing peak, the area
represented by these anomalies shall be less than 2,0 % of the peak area, otherwise the calibration standard shall
be rejected.
Hexylbenzene (M = 162) shall be used as the standard with the lowest molecular mass on the calibration curve.
If the calibration standards in the low-molecular range are separated so well that the peaks of the individual
oligomers can be recognized, their actual molecular mass, including the terminal groups, shall be used in the
calculations.
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7.2 Preparation of the calibration solutions for injection
Shake the calibration standards in the eluent at room temperature as described in 9.1, and store at room
temperature.
Filter the solutions manually through a 0,2 mm to 0,5 mm membrane filter. If the filter shows signs of blocking, the
solution is unsuitable for calibration purposes.
The solutions shall be used within 48 h.
Several calibration standards may be injected and analysed at the same time, as long as all the peaks are
separated down to the baseline.
The concentration of the individual calibration standards in the injection solution, as a function of the peak-maximum
molecular mass, shall be
M , 50 000 g/mol 1,0 g/l
p
50 000 g/mol < M , 10 g/mol 0,5 g/l
p
10 g/mol < M 0,1 g/l
p
The quantities injected on to the column shall be matched to the capacity of the column by adjusting the injection
volume, and not the concentration. The injection volumes determined in accordance with the requirements of
clause 10 shall be used both in calibration runs and in sample analyses.
7.3 Conditions for calibration runs
The conditions for a calibration run shall, with the exception of the concentration of the injection solutions, be
identical to those for the sample analyses.
7.4 Measurement of retention volume/time
The retention volume or retention time shall be measured from the start of injection to the point on the baseline at
which the peak reaches its maximum height. In determining this point, a baseline drift of 5 % of the peak height,
measured from injection to after the impurity peaks, is acceptable. If the drift is greater or the baseline is unsteady in
the area of the peak, the analysis shall be repeated.
The repeatability of the analysis time shall be better than 0,3 %. When the retention time is measured rather than
the retention volume, it shall be checked against an internal standard of known retention time and, if necessary, a
correction made.
7.5 Plotting the calibration curve
The calibration curve shall be plotted with log M as the ordinate and the retention volume V or corrected
10 p e
retention time t as abscissa. At least two calibration points shall be measured per decade of molecular mass and
R
there shall be at least five calibration points altogether. In the low molecular mass range, the calibration curve shall
be extrapolated from the hexylbenzene peak to the impurity peaks. In the high molecular mass range, the peak of
the first calibration standard eluted shall lie before the high molecular mass limit of the sample, and the volume for
the exclusion column shall be determined.
The results of the calibration runs can be fed into a computer or recorded in the form of a table or in the form of one
or more regression curves. They shall be available at all times in the form of hard copy for direct checking. Since
the evaluation of the chromatograms involves their conversion into differential distribution curves in which the
reciprocal of the first derivative of the calibration curve is required (see 11.3), the following requirements shall be
met:
a) If the calibration curve is expressed as an equation of the form log M = f(V or t ), it shall be possible to
10 e R
differentiate the equation.
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b) In all other cases:
the calibration curve shall be described by at least 20 equidistantly spaced coordinate pairs per decade of
M, and the values in one of the sets of coordinates log M, V or t shall be equidistant;
10 e R
the first derivative shall be calculated by regression analyses over a maximum of five consecutive
coordinate pairs.
To check how well the calibration curve thus produced fits the measurements, the percentage deviation for each
calibration point, given by
−
MM
p,calibration value p,calculated
× 100 . . . (5)
M
p,calibration value
shall be plotted against V or t . From this graph, it should be posible to assess whether the positive or negative
e R
deviations are random along the V or t axis. Calibration-curve fits which exhibit trends in the deviation plot over
e R
particular elution ranges are unsuitable. If such distributions of residuals cannot be improved upon with the
regression models (see annex A) available in a laboratory, the results must be expected to contain greater errors
and this shall be stated in the test report.
The test for the distribution of residuals is not appropriate to calibration curves obtained by methods in which the
measured points and those on the calibration curve automatically coincide, as is the case with a connected series of
straight lines and with uncompensated spline algorithms. With these methods, other means must be used to ensure
that the calculated calibration curves contain no physically impossible areas, e.g. regions with a positive slope.
8 Sampling
Take a representative sample of the product to be tested, as described in ISO 15528.
Examine and prepare samples of paints and varnishes for testing, as described in ISO 1513.
9 Preparation for the test
9.1 Preparation of the injection solution
Weigh an aliquot of the polymer sample and dissolve in THF from the eluent reservoir of the chromatograph in
which it is to be analysed. Store the solution at room temperature. The concentration of the injection solution is not
an independent quantity. It depends on the total volume of the column used, and the injection volume. See
clause 10 for details.
Shake the solution at room temperature to ensure complete dissolution and homogenization; in the case of samples
with a mean molecular mass of less than 700 000 g/mol, a magnetic stirrer may be used. The use of ultrasonic
energy is not permitted because of the risk of degradation. The use of heat should preferably also be avoided.
Exceptions, e.g. for PVC, shall be justified in the test report.
As a rule, polymer samples shall be weighed free of solvent. If the sample contains solvent and if it is sensitive, the
original solution can be used at its original concentration, or it shall be concentrated carefully under vacuum at room
temperature before weighing. The polymer content of the original solution shall be determined separately; the
method used shall be stated in the test report. If such samples give overlapping solvent and polymer peaks, the
evaluation shall be restricted to the unaffected polymer area and the limit of the evaluation stated in the test report in
terms of molecular mass. When several samples are analysed and compared, the evaluation limit selected shall be
identical in each case.
Remove insoluble foreign matter, e.g. pigments, extender materials and high-impact components, from the injection
solution by suitable methods, e.g. ultracentrifugation, filtration or membrane filtration. Even if the solution appears
clear to the eye, filtration through membrane filters with a pore size between 2 mm and 0,2 mm is always
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recommended. These operations, as well as any precautions taken to ensure that the concentration of the injection
solution is maintained, shall be recorded in the test report.
If the sample contains insoluble polymer particles, e.g. microgel, the test report shall expressly point out that the
GPC results refer only to the soluble components. The appearance of such samples shall be described.
The injection solutions shall be used within 48 h.
9.2 Preparation of the apparatus
The apparatus shall be operated under the conditions given in clause 10. First, pump eluent through the entire
apparatus until the detector sensitivity required for the analysis falls below the noise level given in 5.6 and the
baseline conditions specified in 7.4 can be expected to be maintained. At this point, the analyses or, if necessary,
the control analyses can be carried out.
10 Conditions of analysis
The injection volume and the concentration of the sample solution shall be matched to the total empty volume of the
set of columns used.
As a guide, between 0,005 mg and 0,050 mg of polymer should be injected per ml of column volume.
The injection volume shall be about 40 ml to 100 ml for each 300 mm · 7,8 mm column; a total value of 250 ml shall
not be exceeded.
Taking this into account, the polymer concentration in the injection solution shall not exceed 5 mg/ml. With narrow
molecular-mass distributions and high molecular masses, the retention volume is very sensitive to the quantity of
polymer injected. If anomalous peak shapes are observed with a particular sample, the concentration of the
injection solution shall be repeatedly halved until the effective variation in the calculated M value has been
w
reduced to below 5 %.
If greater injection quantities are necessary for a particular polymer because of an unsuitable detector response
factor, this shall be mentioned in the test report.
Several injections shall be made with each sample. The number of injections made shall be stated in the test report.
The two last injections shall be evaluated individually and the results presented individually. Their position in the
sequence of injections shall be evident.
When analyses carried out by different laboratories are to be compared, injections shall be made from at least two
solutions that have been prepared separately.
Observations that indicate adsorptive interactions between the injected polymer and the column packing material as
described in 5.4 shall be noted in the test report.
11 Data acquisition and evaluation
The chromatogram shall be recorded by means of an electronic data-acquisition system. Data shall be stored
starting at a point before the exclusion limit for the column system being used and continuing until the curve returns
to the baseline after elution of the last impurity.
The number of measured points, which shall be equidistant, shall be at least 20 per molecular-mass decade of the
calibration curve used, and a peak that is to be evaluated shall include at least 25 such points.
The dynamic range of the detector signal between the smallest detectable value and the highest peak in the
chromatogram after subtraction of the baseline shall be at least 1 : 500.
The raw data from the sample and calibration analyses shall be stored for at least one year to permit re-evaluation if
necessary.
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11.1 Calculation of the net chromatogram from the raw data
11.1.1 Determination of the baseline
The zero signal of the detector (baseline) shall be taken as a straight line between the zone prior to the exclusion
limit and that after the last impurity peak, i.e. zones in which no elution will take place in an ideal GPC separation.
The baseline shall coincide with the detector signal in these zones for at least 10 % of the total analysis time,
otherwise the analysis shall be discarded as unsuitable. If deviations from the baseline determined can be seen in
this interval, the results shall also be rejected. The calculations themselves can be made at points along the
baseline that lie within this range on the baseline thus determined.
The plot of the difference between each original data point and the interpolated baseline point at the same time or
volume between the low and the high molar cutoff is referred to in the following dicussion as the net chromatogram.
11.1.2 Correction of the measured values and of the net chromatogram
An adjustment or correction of the raw data or of the net chromatogram, e.g. elimination of peak broadening,
correction for concentration shifts, etc., is not covered by this part of ISO 13885.
Only smoothing measures such as the averaging of not more than five adjacent points, as well as indirect
smoothing measures, such as are carried out in the interpolation of values for purposes of data compression or in
matching points and calibration-curve matrices, are permissible; the necessary compensatory calculations for a
point shall be restricted to an interval of less than 0,25log M units. All such manipulations of data shall be
recorded explicitly in the test report.
It is permissible to take the average of several results from repetitive analyses or to take the mean distribution
curves in addition to the data in 13.2 g), e.g. co-addition of the chromatograms or averaging of the molecular-mass
averages; the methods used shall be described in full and the standard deviations determined and stated.
11.1.3 Evaluation limit
All points on the net chromatogram less than 50 % of the detection limit of the A/D converter, which shall be defined
as 1 bit, and, in particular, negative values shall be taken as zero. Further threshold-value manipulations are not
permitted.
The columns and calibration points shall be selected such that the net chromatograms for all the samples start only
after the first calibration standard eluted and such that the exclusion limit is not reached.
The monomer peaks at the low molecular mass end shall be included in the evaluation. It is permissible to deviate
from this part of ISO 13885 if the monomer peaks are eluted only in the impurity- or solvent-peak area, or after the
peaks of low-molecular additives such as plasticizers, stabilizers, etc. In such cases, special mention shall be made
of the evaluation limit selected, and the corresponding molecular mass read off the calibration curve.
Chromatograms that exhibit tailing extending into the area of the impurity peaks cannot be evaluated in the way
specified in this part of ISO 13885 and shall be discarded.
11.2 Calculation of the average values
With the data points spaced at intervals as specified at the beginning of this clause, the integrations normally
required can be replaced by summations and the chromatogram curve can be represented as a series of slices.
The individual measured points shall be taken at the middle of each slice and the molecular mass determined from
th th
the calibration curve at the i measured point shall apply to the whole width of the i interval.
As the measured points are assumed to be equidistantly spaced, the interval width cancels out in all the calculations
th
shown below and the interval areas can be represented directly by the measured ordinates, e.g. as H for the i
i
interval.
© ISO
The average molecular masses shall be calculated using the following equations:
i = n
H
∑ i
i = 1
= . . . (6)
Number average M
n
i = n
H M
i i
∑
i = 1
i = n
×
HM
ii
∑
i = 1
= . . . (7)
Mass average M
w
i = n
H
i
∑
i = 1
i = n
×
HM
∑ i i
i = 1
= . . . (8)
z-average M
z
i = n
HM
ii×
∑
i =
i = n
×
H M
ii
∑
i = 1
= . . . (9)
(z + 1) - average M
z + 1
i = n
×
HM
i
∑ i
i = 1
The heterogeneity factor is defined as the ratio of M to M . As no correction is made for peak broadening, this
w n
value shall be designated by the subscript GPC, i.e.
(M /M )
w n GPC
to be able to distinguish it from values calculated from molecular masses measured by absolute methods.
M is defined as the molecular mass at the slice at which the height of the net chromatogram is the greatest.
p
The repeatability of these average values is expressed either as the standard deviations of repeated analyses or in
terms of values obtained in the past for the GPC apparatus used.
There is no point in calculating the viscosity average M using the equation
v
1/a
i = n
a
×
HM
i
∑ i
i = 1
= . . . (10)
M
v
i = n
H
i
∑
i = 1
unless the sample and calibration polymers have identical structures or unless the same Mark-Houwink exponent a
applies to both in the eluent used.
11.3 Calculation of the distribution curves
The cumulative % mass fraction distribution curve S(M) is obtained by summing the normalized interval areas. S(M)
shall be taken as the sum of all areas between the low molecular mass evaluation limit and the point of intersection
of the distribution curve and the abscissa M :
i
© ISO
j = i
()+/2
H H
∑ jj−1
j = 1
()= × 100 . . . (11)
S M
i
j = n
H
j
∑
j = 1
where j = 1 at the low molecular mass end of the curve and j = n at the high molecular mass end of the curve.
The form of the differential distribution curve W(M) depends on the abscissa chosen. This plot of relative frequency
of molecules W versus log M requires the use of the following equation to calculate W from the net chromatogram
with the abscissa V or t :
e R
or
dV
H
i e
W(log )= (−×1) × . . . (12)
M
i
10
j = n
dlog M
H i
j
∑
j = 1
dt
H
i R
= ()−×1 ×
. . . (13)
j = n
dlog M
H i
j
∑
j = 1
i.e. the normalized net chromatogram height is multiplied by the negative reciprocal of the first derivative of the
calibration curve (see ASTM D 5296-92, annex X2, equation X2.7 b).
12 Precision
The precision of this method has been determined in several round-robin experiments (see annex A for details).
If individual samples interact in a non-ideal manner with the surface of the stationary phase or column packing
material — as described in 5.4 — the standard deviations can increase to a multiple of the values given.
12.1 Repeatability
The repeatability is, according to ISO 5725-1, the precision of a set of test results obtained by a standardized
method carried out under conditions that are as constant as possible, i.e. at short intervals in the same place (in the
same laboratory) by the same person with the same equipment. The following repeatability standard deviations s
r
were determined as a percentage of the values measured:
for M 3 %
n
for M 2 %
w
for 3 %
M
z
for M /M 3 %
w n
for M 2 %
p
12.2 Reproducibility
The reproducibility is, according to ISO 5725-1, the precision of a set of test results obtained under comparable
conditions, i.e. on the same sample material in different laboratories by different persons with different apparatus
but using the same standardized method. The reproducibility standard deviations s for the parameters M , M ,
R n w
etc., referred to in 12.1 were on average five times greater than the repeatability standard deviations s given
r
above.
© ISO
The following values were obtained for the reproducibility standard deviations of the fraction sizes compared with
s
R
an averaged integral distribution curve divided into 5 % fractions (see annex A for details):
in the low-molecular range from 0 % to 10 %: s 50 %
R =
in the range from 10 % to 90 %: s = 11 %
R
in the high-molecular range from 90 % to 100 %: s = 38 %
R
NOTE The great difference between the repeatability standard deviations s shows that it would be possible to improve the
R
comparability between different laboratories by agreeing to standardize additional details not covered by this part of ISO 13885.
A serious source of differences between the individual laboratories proved to be their different assessment of the
high- and low-molecular components in chromatograms with a tailing peak. Special attention must therefore be paid
to 11.1.3, 1st paragraph, and 11.1.1, particularly in plotting the baseline and in determining the evalution limits on a
computer, either manually or automatically.
13 Test report
The test report shall contain a reference to this part of ISO 13885 plus the following data (it is necessary to give the
data in 13.1 only once per series of samples analysed under the same conditions):
13.1 General data on the equipment and settings
13.1.1 Data on the equipment used
a) Eluent reservoir, inert gas and degassing of the eluent, plus (if used) additives to the eluent and the peroxide
content in ppm.
b) Pump.
c) Pulsation damping (if used).
d) Injection systems.
e) Columns (manufacturer, packing material, pore size, separation range, number, dimensions and sequence of
columns used).
f) Number of theoretical plates/m of the column combination used, asymmetry of the plate-count peak, separation
performance as specified in 5.4 in the area of the peak maxima for the samples analysed.
g) Column temperature and means of maintaining this temperature.
h) Detector (measurement principle, type, cell size).
i) Flowrate meter (if used), including manufacturer and measurement principle.
j) Data-acquisition and evaluation hardware and software:
manufacturer, type, version number;
evaluation mode (by elution volume or by retention time).
13.1.2 Calibration
a) A full description of the method used for fitting the calibration curve to the measured values.
b) Typical precision-data characteristic of this fitting method, e.g. sum of the squares of the errors, correlation
coefficient, mean error in the individual measurements.
© ISO
c) Any
...
NORME ISO
INTERNATIONALE 13885-1
Première édition
1998-12-15
Liants pour peintures et vernis —
Chromatographie par perméation
de gel (GPC) —
Partie 1:
Utilisation de tétrahydrofurane (THF) comme
éluant
Binder for paints and varnishes — Gel permeation chromatography
(GPC) —
Part 1: Tetrahydrofuran (THF) as eluent
A
Numéro de référence
Sommaire
1 Domaine d'application.1
2 Références normatives .1
3 Définition .2
4 Principe.2
5 Appareillage .2
6 Éluant.5
7 Étalonnage de l'appareillage .6
8 Échantillonnage .8
9 Préparation de l'essai.9
10 Conditions d'analyse.9
11 Collecte et évaluation des données.10
12 Fidélité .13
13 Rapport d'essai .14
Annexe A (informative) Informations complémentaires.18
Annexe B (informative) Bibliographie .24
Annexe C (informative) Exemple de fiche de données pour un étalon de polymère .25
© ISO 1998
Droits de reproduction réservés. Sauf prescription différente, aucune partie de cette publication ne peut être reproduite ni utilisée sous quelque
forme que ce soit et par aucun procédé, électronique ou mécanique, y compris la photocopie et les microfilms, sans l'accord écrit de l'éditeur.
Organisation internationale de normalisation
Case postale 56 • CH-1211 Genève 20 • Suisse
Internet iso@iso.ch
Imprimé en Suisse
ii
© ISO
Avant-propos
L'ISO (Organisation internationale de normalisation) est une fédération mondiale d'organismes nationaux de
normalisation (comités membres de l'ISO). L'élaboration des Normes internationales est en général confiée aux
comités techniques de l'ISO. Chaque comité membre intéressé par une étude a le droit de faire partie du comité
technique créé à cet effet. Les organisations internationales, gouvernementales et non gouvernementales, en
liaison avec l'ISO participent également aux travaux. L'ISO collabore étroitement avec la Commission
électrotechnique internationale (CEI) en ce qui concerne la normalisation électrotechnique.
Les projets de Normes internationales adoptés par les comités techniques sont soumis aux comités membres pour
vote. Leur publication comme Normes internationales requiert l'approbation de 75 % au moins des comités
membres votants.
La Norme internationale ISO 13885-1 a été élaborée par le comité technique ISO /TC 35, Peintures et vernis, sous-
comité SC 10, Méthodes d'essai des liants pour peintures et vernis.
L'ISO 13885 comprendra les parties suivantes, présentées sous le titre général Liants pour peintures et vernis —
Chromatographie par perméation de gel (GPC):
Partie 1: Utilisation de tétrahydrofurane (THF) comme éluant
Partie 2: N,N-diméthylacétamide (DMAC) comme éluant
Partie 3: Eau comme éluant
Au moment de la publication de la présente partie de l’ISO 13885, les parties 2 et 3 étaient encore au stade
proposition.
Les annexes A à C de la présente partie de l’ISO 13885 sont données uniquement à titre d’information.
iii
NORME INTERNATIONALE © ISO ISO 13885-1:1998(F)
Liants pour peintures et vernis — Chromatographie
par perméation de gel (GPC) —
Partie 1:
Utilisation de tétrahydrofurane (THF) comme éluant
AVERTISSEMENT — La présente partie de l’ISO 13885 peut impliquer l'utilisation d'appareillages et de
matériaux dangereux, ainsi que la mise en œuvre de modes opératoires dangereux. Elle n’est pas censée
aborder tous les problèmes de sécurité liés à son utilisation. Il incombe à l'utilisateur de la présente partie
de l’ISO 13885 d'établir des pratiques appropriées en matière d'hygiène et de sécurité, et de déterminer
l'applicabilité des limitations réglementaires avant toute utilisation. Une déclaration de danger spécifique
figure dans l’article 6.
1 Domaine d'application
La présente partie de l’ISO 13885 fait partie d'une série de normes traitant de l'échantillonnage et des essais
des peintures, vernis et produits assimilés.
Elle décrit les conditions de détermination de la distribution de la masse moléculaire, de la masse moléculaire
moyenne en nombre M et de la masse moléculaire moyenne en masse M des polymères solubles dans le
n w
1)
tétrahydrofurane par chromatographie par perméation de gel .
Il se peut que, malgré la bonne répétabilité obtenue avec cette méthode, celle-ci ne puisse être utilisée avec
certains types de polymères à cause de certaines interactions spécifiques, comme l'adsorption au sein du système
échantillon/éluant/colonne.
Cette méthode n'est pas absolue et nécessite un étalonnage d'après des étalons de polystyrène disponibles dans le
commerce et caractérisés par des méthodes absolues. Les résultats concernant des échantillons de polymères
autres que le polystyrène ne sont donc comparables qu'au sein de groupes d'échantillons du même type.
Les conditions fixées dans la présente partie de l’ISO 13885 ne conviennent pas pour l'analyse par
chromatographie par perméation de gel d'échantillons de polymère dont les valeurs de M sont supérieures à 10
w
(voir annexe A).
La présente partie de l’ISO 13885 ne présente pas de méthodes de correction, par exemple pour l'élimination de
l'élargissement de pic. Si des valeurs de masse moléculaire absolue sont requises, il faut utiliser une méthode
absolue, par exemple par membrane osmométrique pour M ou par diffusion de la lumière pour M .
n w
2 Références normatives
Les normes suivantes contiennent des dispositions qui, par suite de la référence qui en est faite, constituent des
dispositions valables pour la présente partie de l’ISO 13885. Au moment de la publication, les éditions indiquées
étaient en vigueur. Toute norme est sujette à révision et les parties prenantes des accords fondés sur la présente
partie de l’ISO 13885 sont invitées à rechercher la possibilité d'appliquer les éditions les plus récentes des normes
indiquées ci-après. Les membres de la CEI et de l'ISO possèdent le registre des Normes internationales en vigueur
à un moment donné.
1) Également connue sous l’appellation «chromatographie d’exclusion par la taille».
© ISO
ISO 1513:1992,
Peintures et vernis — Examen et préparation des échantillons pour essais.
ISO 5725-1:1994, Exactitude (justesse et fidélité) des résultats et méthodes de mesure — Partie 1: Principes
généraux et définitions.
2)
ISO 15528:— , Peintures et vernis — Échantillonnage.
ASTM D 3536-91, Test method for molecular weight averages and molecular weight distribution by liquid exclusion
chromatography (Gel Permeation Chromatrographie — GPC).
ASTM D 5296-92, Test method for molecular weight averages and molecular weight distribution of polystyrene by
high performance size-exclusion chromatography.
3 Définition
Pour les besoins de la présente partie de l’ISO 3451, la définition suivante s'applique.
3.1
chromatographie par perméation de gel
méthode chromatographique selon laquelle les molécules complètement dissoutes d'un échantillon de polymère
sont fractionnées sur un matériau de colonne poreux, la séparation s'effectuant en fonction de la taille de la
molécule (ou plus précisément en fonction de la taille de la bobine de polymère qui se forme dans ce solvant
d'élution)
NOTE 1 Les petites molécules diffusent plus souvent dans les pores du matériau de la colonne et sont donc retardées par
rapport aux molécules de grande taille. Par conséquent, les grandes molécules sont éluées avant les petites. Dans les
conditions d'essai données, le volume de rétention est seulement fonction de la taille de la molécule.
NOTE 2 Il s'agit d'une forme spéciale de chromatographie en phase liquide.
4 Principe
La teneur en polymère d'un échantillon est déterminée, puis l'échantillon est dilué avec de l'éluant de façon à
obtenir une concentration de moins de 5 g/l, et une partie aliquote de l'échantillon dilué est injectée dans le système
de chromatographie par perméation de gel. La concentration des molécules éluées dans la colonne est mesurée
par ordre de taille décroissante, avec un détecteur sensible à la concentration, par exemple un réfractomètre
différentiel. La distribution de la masse moléculaire, les quantités M et M , ainsi que l'hétérogénéité ou la
n w
polydispersité M /M , sont calculées à partir du chromatogramme qui en résulte, à l'aide d'une courbe d'étalonnage
w n
qui a été déterminée pour ce système particulier de chromatographie par perméation de gel.
5 Appareillage
L'appareillage doit comporter les éléments représentés à la figure 1 et décrits ci-dessous.
Il est essentiel que tous les éléments qui sont en contact avec l'éluant ou la solution échantillon soient résistants à
ces produits et ne présentent ni adsorption ni effets mémoire d'aucune sorte. Les éléments de l'appareillage de
chromatographie par perméation de gel, qui dans ce cas utilise le tétrahydrofurane comme éluant, doivent être
reliés au moyen de tubes capillaires en acier inoxydable.
5.1 Alimentation en éluant
Le réservoir d'éluant doit protéger correctement l'éluant contre les influences extérieures, notamment l'atmosphère
et la lumière, si nécessaire au moyen d'une couche de gaz inerte recouvrant la surface du liquide. Le réservoir
2) À publier. (Révision de l’ISO 842:1984 et de l’ISO 1512:1991)
© ISO
d'éluant doit avoir une capacité suffisante pour que l'appareillage puisse atteindre l'équilibre entre le solvant
d'élution et la surface de matériau de la colonne, et pour que plusieurs analyses puissent être effectuées.
L'éluant doit être dégazé avant d'être introduit dans le réservoir, ou au moyen d'un dispositif installé entre le
réservoir et la pompe, pour empêcher toute défaillance de la pompe ou la formation de bulles dans le détecteur. Le
choix de la méthode de dégazage utilisée — piège à bulles, purge en ligne à l'hélium ou dégazage par le vide, par
exemple — est libre, mais la méthode choisie doit être mentionnée dans le rapport d'essai.
5.2 Pompe
La pompe permet d'obtenir un débit d'éluant dans la colonne aussi régulier que possible et égal à 1 ml/min. Pour
cela, la pompe doit fonctionner au rendement maximal à ce débit.
La pompe doit être conçue de façon à maintenir le niveau de bruit du détecteur comme spécifié en 5.6, ou un
amortisseur de pulsations doit être installé immédiatement en aval de la pompe.
Le paramètre qui caractérise une molécule de polymère d'une taille donnée est le volume élué entre l'injection de la
solution échantillon et l'élution du polymère. La reproductibilité du mesurage de ce volume doit être supérieure à
0,3 %. Si le volume de rétention n'est pas mesuré au moyen d'un débitmètre permettant d'obtenir l'exactitude
adéquate, mais seulement indirectement à partir du temps d'élution, la constance du débit de pompage et la
reproductibilité des pompes utilisées sont plus critiques: la constance et la reproductibilité d'environ 1 % que l'on
obtient actuellement sur de longues périodes de fonctionnement ne conviennent pas pour la reproductibilité requise
du mesurage de la masse moléculaire. Lorsque les chromatogrammes sont évalués sur la base de la durée, il est
donc nécessaire de vérifier que les conditions de débit pendant l'étalonnage et l'analyse sont identiques, en utilisant
par exemple des étalons internes dans la solution d'étalonnage et la solution échantillon, et, si les conditions de
débit ne sont pas identiques, en effectuant les corrections appropriées. Les étalons internes utilisés doivent être
mentionnés dans le rapport d'essai.
5.3 Système d'injection
Le système d'injection sert à introduire une quantité prédéterminée et précise de la solution échantillon dans le flux
d'éluant, de façon rapide et régulière.
Lorsque la solution échantillon est versée dans la boucle d'échantillonnage, puis introduite dans le flux d'éluant, le
volume de liquide utilisé doit être suffisant pour que, même s'il se produit des effets de flux laminaire, la boucle
d'échantillonnage soit complètement remplie de solution échantillon, puis rincée à grande eau.
Il faut éviter, par une conception appropriée ou un rinçage adéquat, tout effet mémoire induit par la solution
échantillon précédente dans le système d'injection.
5.4 Colonnes
L'appareillage doit comporter une ou plusieurs colonnes raccordées en série et remplies d'un matériau poreux
sphérique, le diamètre des pores correspondant à la taille des molécules de polymère faisant l'objet de l'analyse.
Le matériau de remplissage est en principe constitué d'un copolymère de styrène/divinylbenzène (S/DVB), produit
selon un procédé spécial de polymérisation, qui gonfle peu dans le solvant et ne se déforme donc pas sous la
pression appliquée au débit de 1 ml/min.
Outre ces particules de S/DVB sphériques macroporeuses, d'autres matériaux de remplissage sont également
utilisés, à base d'autres monomères organiques ou de dioxyde de silicium (silice). Le critère d'utilisation est
l'absence d'interaction d'adsorption entre leur surface et les molécules de polymère présentes dans l'échantillon. De
plus, l'échantillon faisant l'objet de l'analyse ne doit pas être modifié, ni chimiquement ni structurellement, au sein du
système de chromatographie.
Certains polymères peuvent réagir avec la surface du matériau de remplissage, par exemple par adsorption, et
d'autres effets peuvent parfois interférer avec le mécanisme de séparation par chromatographie par perméation de
gel. L'annexe A décrit ces effets et propose des solutions. S'il s'agit de comparer des analyses de ces polymères
effectuées par différents laboratoires, les laboratoires doivent convenir des détails des conditions d'essai non
prévues par la présente partie de l’ISO 13885.
© ISO
Il est pratiquement impossible d'obtenir deux colonnes ayant la même distribution de rayons des pores et la même
qualité de remplissage. Pour réaliser l'objectif de la présente norme, qui est d'obtenir des résultats le plus
concordants possible lors d'essais réalisés dans différents laboratoires, avec différents appareillages de
chromatographie par perméation de gel, sur un même échantillon, il est nécessaire de satisfaire aux prescriptions
minimales spécifiées ci-dessous en ce qui concerne l'élargissement de pic (exprimé en termes de nombre de
plateaux théoriques) et l'efficacité de séparation. Les valeurs obtenues doivent être mentionnées dans le rapport
d'essai.
a) Nombre de plateaux théoriques
Le nombre de plateaux doit être déterminé, pour l'appareillage utilisé, à partir de la largeur de pic à mi-hauteur (voir
figure 2). Injecter 20 μl d'une solution d'éthylbenzène (concentration 1 g/l) dans la colonne et évaluer le
chromatogramme obtenu dans les mêmes conditions que pour l'analyse des polymères, à l’aide de l'équation (1):
V
e
Nombre de plateaux théoriques N=×55, 4 × . . . (1)
WL
12/
où
V est le volume ou le temps de rétention jusqu'au maximum du pic;
e
W est la largeur de pic à mi-hauteur (voir figure 2); utiliser les mêmes unités pour V et W;
1/2 e
L est la longueur, en centimètres, de la colonne/du système de colonne.
Déterminer la largeur de pic à mi-hauteur soit électroniquement à partir d'au moins 30 points d'information par pic,
soit manuellement sur un chromatogramme où le pic mesure au moins 2 cm de largeur à mi-hauteur et au moins
15 cm de hauteur au maximum du pic.
Exprimer le résultat comme étant le nombre de plateaux théoriques par mètre de longueur totale de colonne. Pour
être conforme aux prescriptions de la présente partie de l’ISO 13885, un système de colonne doit comporter au
moins 20 000 plateaux/m.
NOTE Il est conseillé de consulter l'annexe A pour ce qui concerne la traînée et le front (asymétrie) du pic, permettant de
calculer le nombre de plateaux.
b) Efficacité de séparation
Pour obtenir une résolution adéquate, la courbe d'étalonnage ayant pour coordonnées log M en fonction du
volume de rétention V pour le système de colonne utilisé ne doit pas excéder une pente donnée. Ce paramètre
e
doit être mesuré au moyen d'une paire d'étalons de polystyrène qui éluent dans la zone du maximum du pic, pour
l'échantillon de polymère examiné, ou tiré de la courbe d'étalonnage et évalué à l’aide de l’équation (2):
VV−
,Mx
e e, 10× Mx
()
Efficacité de séparation = > 6,0 . . . (2)
Section de la colonne
où
est le volume de rétention pour le polystyrène de masse moléculaire , en centimètres cubes;
V M
e,Mx x
V est le volume de rétention pour 10 fois cette masse moléculaire, en centimètres cubes;
e,(10 · Mx)
la section de la colonne est exprimée en centimètres carrés.
Choisir M de sorte que le maximum du pic pour l'échantillon de polymère étudié se trouve à peu près à mi-chemin
x
entre ces deux volumes de rétention.
NOTE Voir annexe A pour la résolution minimale requise par la norme ASTM D 5296-92, article 12, équation (3).
© ISO
5.5 Contrôle de la température de colonne
Réaliser l'essai à température ambiante ou à une température n'excédant pas 40 °C. La température de la colonne
ne doit pas varier de plus de 1 °C au cours de l'analyse (voir annexe A). Effectuer l'étalonnage et les analyses
d'échantillons à la même température. Si les analyses doivent être effectuées par différents laboratoires à des fins
de comparaison, la température de la colonne doit faire l'objet d'un accord.
5.6 Détecteur
Utiliser un détecteur à réfractomètre différentiel. Le volume de la cellule ne doit pas excéder 0,010 ml.
NOTE Pour le cas d'une limitation à un détecteur de type simple, voir annexe A.
Si l'on doit analyser des échantillons constitués de copolymères ou de mélanges de polymères, s'assurer que tous
les composants donnent le même facteur de réponse (rapport du signal du détecteur à la concentration d'analyte
dans le produit élué, ou, dans le cas du réfractomètre différentiel, augmentation de l'indice de réfraction spécifique ν
(généralement exprimé par dn/dc), c'est-à-dire mathématiquement:
k
i
. . . (3)
02,<<5
k
j
où
k et k sont les facteurs de réponse pour les composants i et j, respectivement;
i j
dn/dc est le changement de l'indice de réfraction n lié au changement de la concentration c.
Si le rapport des facteurs de réponse n'entre pas dans cette plage lors de l'analyse d'une série d'échantillons, on
peut utiliser un détecteur différent, ou une autre combinaison de détecteurs. S'il s'agit de comparer les résultats
obtenus par différents laboratoires pour une telle série d'échantillons, le type de détecteur doit faire l'objet d'un
accord. Si un détecteur différent est utilisé, il faut en donner les raisons dans le rapport d'essai. Voir annexe A.
Il convient que la réponse du détecteur, obtenue en utilisant l'enregistrement de l'échantillon comme spécifié dans
la présente partie de l’ISO 13885, donne, pour le réglage minimal de l'amortissement électronique, un niveau de
bruit atteignant moins de 1 % de la hauteur maximale du pic de polymère. Les variations de pression, de
température et de débit influant sur le niveau de bruit, surtout dans le cas du réfractomètre différentiel, il faut
prendre les mesures adéquates pour maintenir une température constante et amortir les pulsations.
5.7 Débitmètre
Comme décrit en 5.2, le paramètre le plus important dans l'élution d'une certaine taille de molécules est le volume
de rétention. Le type de débitmètre utilisé pour mesurer ce paramètre doit être mentionné dans le rapport d'essai. Si
le volume de rétention est déterminé indirectement, par exemple à partir du temps d'élution, les hypothèses
formulées et les mesurages effectués doivent être expliqués dans le rapport d'essai.
5.8 Collecte des données
Dans le montage le plus simple, les signaux en provenance du détecteur sont enregistrés par un enregistreur de
diagrammes, mais en général ils sont enregistrés par un système électronique d'acquisition de données, avec les
informations sur le volume de rétention (pour tout détail, voir article 11).
6 Éluant
L'éluant doit être constitué de tétrahydrofurane (THF), répondant aux spécifications suivantes:
Pureté du produit > 99,5 %
Eau < 0,05 %
Peroxydes < 0,005 %
© ISO
Il peut être stabilisé avec au maximum 250 ppm de 2,6-di- -butyl-4-méthylphénol, pour empêcher la formation
tert
de peroxydes.
Le niveau de peroxyde dans le tétrahydrofurane doit être vérifié avant utilisation, par exemple au moyen de bandes
d'essai, et mentionné dans le rapport d'essai.
AVERTISSEMENT — Le tétrahydrofurane est très inflammable. Il convient que l'utilisateur de la présente
partie de l’ISO 13885 se réfère aux procédures de sécurité concernant la manutention.
Dans certains cas exceptionnels, qui doivent être expliqués dans le rapport d'essai, il peut être nécessaire
d'incorporer des additifs dans l'éluant de tétrahydrofurane, jusqu'à un maximum de 10 g/l, pour éviter des
problèmes lors de l'analyse de certains échantillons (pour tout détail, voir annexe A).
Une fois qu'il a servi au conditionnement de la colonne et aux analyses, jeter l'éluant; ne pas le remettre dans le
réservoir.
7 Étalonnage de l'appareillage
Étalonner l'appareillage de chromatographie par perméation de gel (GPC) avec une série d'étalons de polystyrène,
de distribution de masse moléculaire étroite (voir annexe A), dont les masses moléculaires ont été déterminées par
des méthodes indépendantes et absolues. Le résultat est une courbe d'étalonnage permettant d'évaluer les
analyses par GPC d'échantillons de polystyrène. Si cette courbe d'étalonnage est utilisée pour analyser des
échantillons d'autres compositions, contenant des molécules ayant d'autres structures, les résultats doivent être
[1]
exprimés en tant que «masse moléculaire équivalent-polystyrène» .
7.1 Spécifications relatives à l'étalon
La distribution de la masse moléculaire de l'étalon doit être plus étroite que les limites indiquées ci-dessous comme
fonction de la masse moléculaire maximale au pic, M :
p
M < 2 000 g/mol M /M < 1,20
p w n
2 000 g/mol < M < 10 g/mol M /M < 1,05
p w n
10 g/mol < M M /M < 1,20
p w n
Le facteur d'asymétrie du pic A/B pour chaque chromatogramme, calculé à partir des demi-largeurs de pic A et B,
à mi-hauteur, avant et après la perpendiculaire passant par le maximum du pic, doit se situer dans la plage
suivante:
A
=±10,,0 015 . . . (4)
B
Les demi-largeurs A et B doivent être déterminées soit à partir de données électroniques sur les pics, définies par
au moins 60 points d'information, soit manuellement sur un pic d'une largeur d'au moins 2 cm à mi-hauteur et d'une
hauteur d'au moins 15 cm.
Les prescriptions minimales suivantes doivent être respectées pour la caractérisation de chaque étalon de
polystyrène utilisé pour l'étalonnage:
a) Au moins une valeur de masse moléculaire moyenne, M , M ou M (voir équations en 11.2) doit être
n w
z
déterminée par une méthode absolue. Les valeurs M sont utilisées pour l'étalonnage, mais il n'existe pas de
p
méthode absolue permettant de déterminer M . Par conséquent, la méthode permettant d'obtenir les valeurs
p
M (par exemple calcul par M et M ou étalonnage itératif par GPC, en démarrant avec les valeurs M
p n w w
associées au maximum du pic et réévaluation de M ) doit être spécifiée dans la fiche technique de l'étalon.
w
b) Une méthode au moins doit être utilisée pour déterminer la distribution de la masse moléculaire.
© ISO
c) Tous les paramètres impliqués dans ces méthodes et utilisés pour les calculs doivent être mentionnés dans
le rapport d'essai.
d) Les résultats et les informations concernant chaque lot analysé doivent être présentés de façon à pouvoir être
réévalués par l'utilisateur.
NOTE L'annexe C montre un exemple de fiche technique de ce type.
Si les étalons donnent un épaulement de chaque côté du pic, des fronts de pics ou des traînées du pic, la surface
occupée par ces anomalies doit être inférieure à 2,0 % de la surface de pic; dans le cas contraire, l'étalon servant à
l'étalonnage doit être rejeté.
L'hexylbenzène (M = 162 g/mol) doit servir d'étalon de masse moléculaire la plus faible sur la courbe d'étalonnage.
Si les étalons dans la gamme de faible masse moléculaire sont si bien séparés que les pics de chaque oligomère
sont reconnaissables, leur masse moléculaire réelle, avec les groupes terminaux, doit être utilisée dans les calculs.
7.2 Préparation des solutions d'étalonnage pour injection
Agiter les étalons dans l'éluant, à température ambiante, comme décrit en 9.1, et les conserver à température
ambiante.
Filtrer les solutions manuellement à travers une membrane filtrante de 0,2 μm à 0,5 μm. Si le filtre montre des
signes de blocage, la solution ne convient pas pour l'étalonnage.
Les solutions doivent être utilisées dans les 48 h.
Plusieurs étalons peuvent être injectés et analysés en même temps, dans la mesure où tous les pics sont séparés
jusqu'à la ligne de base.
La concentration de chaque étalon dans la solution d'injection, étant fonction de la masse moléculaire du maximum
du pic, doit être la suivante:
M < 50 000 g/mol 1,0 g/l
p
50 000 g/mol < M < 10 g/mol 0,5 g/l
p
10 g/mol < M 0,1 g/l
p
Adapter les quantités injectées dans la colonne à la capacité de la colonne en réglant le volume d'injection, et non la
concentration. Les volumes d'injection déterminés conformément aux prescriptions énoncées à l'article 10 doivent
être utilisés à la fois pour les étalonnages et pour les analyses d'échantillons.
7.3 Conditions de réalisation des étalonnages
Les conditions de l'étalonnage doivent, à l'exception de la concentration des solutions d'injection, être identiques à
celles des analyses d'échantillons.
7.4 Mesurage du volume/temps de rétention
Le volume de rétention ou le temps de rétention doit être mesuré à partir du début de l'injection jusqu'au point de la
ligne de base où le pic atteint sa hauteur maximale. Pour déterminer ce point, une dérive, au niveau de la ligne de
base, de 5 % de la hauteur de pic est admise, la mesure étant effectuée entre l'injection et la zone située après les
pics d'impureté. Si la dérive est plus importante ou si la ligne de base est instable dans la zone du pic, l'analyse doit
être répétée.
La répétabilité du temps d'analyse doit être meilleure que 0,3 %. Si l'on mesure le temps de rétention plutôt que le
volume de rétention, il faut le contrôler par rapport à un étalon interne dont on connaît le temps de rétention, et le
corriger si nécessaire.
© ISO
7.5 Traçage de la courbe d'étalonnage
La courbe d'étalonnage doit comporter log en ordonnée et le volume de rétention ou le temps de rétention
M V
10 p e
corrigé t en abscisse. Au moins deux points d'étalonnage doivent être mesurés par puissance de 10 de la masse
R
moléculaire, et il doit y avoir au moins cinq points d'étalonnage en tout. Dans la plage de masse moléculaire faible,
la courbe d'étalonnage doit être extrapolée du pic d'hexylbenzène aux pics d'impureté. Dans la plage de masse
moléculaire élevée, le pic du premier étalon élué doit se trouver avant la limite de masse moléculaire élevée de
l'échantillon, et le volume d'exclusion de la colonne doit être déterminé.
Les résultats des étalonnages peuvent être mis sur ordinateur ou enregistrés sous forme de tableau ou d'une ou
plusieurs courbes de régression. Ils doivent être disponibles à tout moment sur support papier, pour contrôle direct.
L'évaluation des chromatogrammes impliquant leur conversion en courbes de distribution différentielles où la
réciproque de la dérivée première de la courbe d'étalonnage est requise (voir 11.3), les prescriptions suivantes
doivent être respectées:
a) Si la courbe d'étalonnage s'exprime par une équation de la forme log M = f(V ou t ), il doit être possible de
10 e R
calculer la différentielle de l'équation.
b) Dans tous les autres cas
la courbe d'étalonnage doit être décrite par au moins 20 paires de coordonnées par puissance de 10 de M,
situées à égale distance les unes des autres, et les valeurs dans l'une des séries de coordonnées,
log M, V ou t , doivent être équidistantes;
e R
la première dérivée doit être calculée par des analyses de régression sur un maximum de cinq paires
de coordonnées consécutives.
Pour vérifier dans quelle mesure la courbe d'étalonnage ainsi produite correspond aux mesurages, le pourcentage
d'écart pour chaque point d'étalonnage
MM−
p, valeur d'étalonnage p, calculée
× 100 . . . (5)
M
p, valeur d'étalonnage
doit être tracé par rapport à V ou à t . Il doit être possible, à partir de ce graphe, d'évaluer si les écarts positifs ou
e R
négatifs sont aléatoires le long de l'axe V ou t . Les ajustements de courbe d'étalonnage qui montrent des
e R
tendances du graphique de la déviation dans des gammes d'élution particulières ne conviennent pas. Si le résiduel
de la distribution ne peut pas être amélioré par les modèles de régression (voir annexe A) disponibles en
laboratoire, il faut s'attendre à ce que les résultats contiennent des erreurs plus importantes, et cela doit être
mentionné dans le rapport d'essai.
L'essai de résiduel de la distribution n’est pas approprié aux courbes d'étalonnage obtenues par des méthodes où
les points mesurés et ceux de la courbe d'étalonnage coïncident automatiquement, comme c'est le cas avec une
série reliée de lignes droites et avec des algorithmes spline non compensés. Avec ces méthodes, d'autres moyens
doivent être utilisés pour s'assurer que les courbes d'étalonnage calculées ne comportent pas de zones
physiquement impossibles, par exemple des régions à pente positive.
8 Échantillonnage
Prélever un échantillon représentatif du produit à essayer, selon l'ISO 15528.
Examiner et préparer chaque échantillon de peintures et vernis pour l'essai, selon l'ISO 1513.
© ISO
9 Préparation de l'essai
9.1 Préparation de la solution d'injection
Peser une partie aliquote de l'échantillon de polymère et la dissoudre dans du tétrahydrofurane provenant du
réservoir à éluant du chromatographe dans lequel il doit être analysé. Conserver la solution à température
ambiante. La concentration de la solution d'injection n'est pas une quantité indépendante. Elle dépend du volume
total de la colonne utilisée et du volume d'injection. (Pour tout détail, voir article 10.)
Agiter la solution à température ambiante pour obtenir une dissolution et une homogénéisation complètes; dans le
cas d'échantillons dont la masse moléculaire moyenne est inférieure à 700 000 g/mol, un agitateur magnétique peut
être utilisé. L'utilisation d'ultrasons n'est pas admise à cause du risque de dégradation. Il convient également
d'éviter de recourir à la chaleur. Les exceptions, concernant notamment le PVC, doivent être justifiées dans le
rapport d'essai.
En règle générale, les échantillons de polymère doivent être pesés en l'absence de solvant. Si l'échantillon contient
un solvant et s'il est sensible, la solution d'origine peut être utilisée à sa concentration d'origine, ou bien elle doit être
concentrée soigneusement sous vide, à température ambiante, avant pesage. La teneur en polymère de la solution
d'origine doit être déterminée séparément; la méthode utilisée doit être mentionnée dans le rapport d'essai. Si ces
échantillons donnent des pics de solvant et de polymère qui se chevauchent, l'évaluation doit être limitée à la zone
de polymère non affectée, et la limite de l'évaluation doit être mentionnée dans le rapport d'essai en termes de
masse moléculaire. Lorsque plusieurs échantillons sont analysés et comparés, la limite d'évaluation choisie doit être
la même dans chaque cas.
Éliminer de la solution d'injection les corps étrangers insolubles, comme les pigments, matières de charge et
composants à impact élevé par des méthodes appropriées, comme l'ultracentrifugation, la filtration ou la filtration
sur membrane. Même si la solution apparaît claire à l'œil nu, il est toujours recommandé de la filtrer à travers des
membranes de filtration de taille de pores comprise entre 2 μm et 0,2 μm. Ces opérations, ainsi que toutes les
précautions prises pour s'assurer que la concentration de la solution d'injection est maintenue, doivent être
mentionnées dans le rapport d'essai.
Si l'échantillon contient des particules de polymère insolubles, par exemple un microgel, le rapport d'essai doit
expressément souligner que les résultats de la chromatographie par perméation de gel se réfèrent seulement aux
composants solubles. L'aspect de ces échantillons doit être décrit.
Les solutions d'injection doivent être utilisées dans les 48 h.
9.2 Préparation de l'appareillage
L'appareillage doit fonctionner dans les conditions indiquées à l'article 10. Commencer par pomper l'éluant pour le
faire passer dans l'ensemble de l'appareillage, jusqu'à ce que la sensibilité du détecteur requise pour l'analyse
tombe au-dessous du niveau de bruit indiqué en 5.6, et jusqu'à ce que les conditions concernant la ligne de base,
spécifiées en 7.4, puissent en principe se maintenir. Les analyses, ou, si nécessaire, les analyses de contrôle,
peuvent alors être effectuées.
10 Conditions d'analyse
Le volume d'injection et la concentration de la solution échantillon doivent être adaptés au volume vide total de la
série de colonnes utilisées.
À titre indicatif, il convient d'injecter entre 0,005 mg et 0,050 mg de polymère par millilitre de volume de colonne.
Le volume d'injection doit être d'environ 40 μl à 100 μl pour chaque colonne de 300 mm × 7,8 mm; ne pas dépasser
une valeur totale de 250 μl.
Compte tenu de cela, la concentration de polymère dans la solution d'injection ne doit pas dépasser 5 mg/ml. Avec
des distributions de masse moléculaire étroites et des masses moléculaires élevées, le volume de rétention est très
sensible à la quantité de polymère injecté. Si l'on observe des formes de pic anormales avec un échantillon
© ISO
particulier, la concentration de la solution d'injection doit être divisée par deux à plusieurs reprises, jusqu'à ce que la
variation effective de la valeur calculée M soit tombée au-dessous de 5 %.
w
Si des quantités d'injection plus importantes sont nécessaires pour un polymère donné en raison d'un facteur de
réponse incorrect du détecteur, cela doit être mentionné dans le rapport d'essai.
Plusieurs injections doivent être effectuées avec chaque échantillon. Le nombre d'injections effectuées doit figurer
dans le rapport d'essai. Les deux dernières injections doivent être évaluées individuellement, et les résultats
présentés individuellement. Leur rang dans la séquence d'injections doit être évident.
Lorsque des analyses effectuées par différents laboratoires doivent être comparées, les injections doivent être
réalisées à partir d'au moins deux solutions préparées séparément.
Toutes les observations indiquant des interactions d'adsorption entre le polymère injecté et le matériau de
remplissage de la colonne, tel qu'il est décrit en 5.4, doivent être mentionnées dans le rapport d’essai.
11 Collecte et évaluation des données
Le chromatogramme doit être enregistré au moyen d'un système électronique d'acquisition de données. Les
données doivent être enregistrées à partir d'un point se trouvant avant la limite d'exclusion pour le système de
colonne utilisé, et allant jusqu'à ce que la courbe revienne à la ligne de base, après élution de la dernière impureté.
Le nombre de points mesurés, ces points étant équidistants, doit être d'au moins 20 par puissance de 10 de masse
moléculaire sur la courbe d'étalonnage utilisée, et un pic à évaluer doit comporter au moins 25 de ces points.
La plage dynamique du signal du détecteur, entre la plus petite valeur détectable et le plus haut pic du
chromatogramme après soustraction de la ligne de base, doit être d'au moins 1 : 500.
Les données brutes provenant de l'échantillon et des analyses d'étalonnage doivent être conservées au moins un
an, pour permettre une réévaluation si nécessaire.
11.1 Calcul du chromatogramme net à partir des données brutes
11.1.1 Détermination de la ligne de base
Le signal zéro du détecteur (ligne de base) doit être pris comme une ligne droite entre la zone située avant la limite
d'exclusion et celle située après le dernier pic d'impureté, c'est-à-dire les zones où il ne se produira pas d'élution
lors d'une séparation idéale par chromatographie par perméation de gel.
La ligne de base doit coïncider avec le signal du détecteur dans ces zones, pour au moins 10 % du temps total
d'analyse; dans le cas contraire, l'analyse ne doit pas être retenue. Si des écarts par rapport à la ligne de base
déterminée sont constatés dans cet intervalle, les résultats ne doivent pas non plus être retenus. Les calculs eux-
mêmes peuvent être effectués en des points situés le long de la ligne de base et entrant dans la plage ainsi
déterminée.
Le tracé de la différence entre chaque point d'information d'origine et le point interpolé de la ligne de base, au
même moment ou pour le même volume, entre la coupe moléculaire basse et haute, est désigné ci-après
«chromatogramme net».
11.1.2 Correction des valeurs de mesure et du chromatogramme net
La présente partie de l’ISO 13885 ne traite pas du réglage ou de la correction des données brutes ou du
chromatogramme net, par exemple par élimination de l'élargissement du pic, correction des déplacements de
concentration, etc.
Seules sont admises des mesures de lissage, en faisant par exemple la moyenne de cinq points adjacents au
maximum, de même que des mesures de lissage indirectes, comme pour l'interpolation de valeurs à des fins de
compression de données ou encore pour faire correspondre des points et des matrices de courbe d'étalonnage; les
calculs de compensation nécessaires pour un point doivent se limiter à un intervalle de moins de
© ISO
0,25 log unités. Toutes ces manipulations de données doivent être mentionnées explicitement dans le rapport
M
d'essai.
Il est admis de prendre la moyenne de plusieurs résultats d'analyses répétitives, ou de prendre les courbes de
distribution moyennes, en plus des données de 13.2 g), en additionnant par exemple les chromatogrammes ou en
faisant la moyenne des moyennes de masses moléculaires; les méthodes utilisées doivent être soigneusement
décrites et les écarts-types déterminés et mentionnés dans le rapport d’essai.
11.1.3 Limite d'évaluation
Tous les points du chromatogramme net inférieurs à 50 % de la limite de détection du convertisseur
analogique/numérique, qui doit être définie comme étant de 1 bit, et en particulier les valeurs négatives, doivent
constituer le zéro. D'autres manipulations des valeurs de seuil ne sont pas admises.
Les colonnes et les points d'étalonnage doivent être choisis de sorte que les chromatogrammes nets pour tous les
échantillons ne commencent qu'après l'élution du premier étalon, et de sorte que la limite d'exclusion ne soit pas
atteinte.
Les pics de monomère doivent être intégrés et inclus dans l'évaluation. Il est admis de dévier par rapport à cet
étalon, si les pics de monomère sont élués seulement dans la zone des pic d'impureté ou la zone de pic du solvant,
ou après les pics d'additifs de faible masse moléculaire, comme les plastifiants, stabilisateurs, etc. Dans ce cas, il
faut préciser la limite d'évaluation choisie, et lire la masse moléculaire correspondante sur la courbe d'étalonnage.
Les chromatogrammes qui présentent une traînée du pic s'étendant dans la zone des pics d'impureté ne peuvent
pas être évalués comme spécifié dans la présente partie de l’ISO 13885, et doivent être rejetés.
11.2 Calcul des valeurs moyennes
Avec les points d'information espacés selon des intervalles spécifiés au début du présent article, les intégrations
normalement requises peuvent être remplacées par des sommes, et la courbe du chromatogramme peut être
représentée comme une série de tranches. Les points de mesure individuels doivent être situés au milieu de
ième
chaque tranche, et la masse moléculaire déterminée à partir de la courbe d'étalonnage au i point de mesure
ième
doit s'appliquer à la largeur totale du i intervalle.
Les points de mesure étant supposés équidistants, la largeur de l'intervalle s'annule dans tous les calculs
ci-dessous, et les intervalles peuvent être représentés directement par les ordonnées mesurées, par exemple H
i
ième
pour le i intervalle. Les masses moléculaires moyennes doivent être calculées à l’aide des équations suivantes:
in=
H
∑ i
i=1
Masse moléculaire moyenne en nombre M = . . . (6)
n
in=
HM
ii
∑
i=1
in=
HM×
∑ii
i=1
Masse moléculaire en masse M = . . . (7)
w
in=
H
i
∑
i=1
in=
HM×
∑ i
i
i=1
Moyenne en z M = . . . (8)
z
in=
HM×
i i
∑
i=1
© ISO
in=
HM×
∑ i i
i=1
Moyenne en (z + 1) M = . . . (9)
z+1
in=
HM×
i i
∑
i=1
Le facteur d'hétérogénéité est défini comme étant le rapport de M à M . En l'absence de correction tenant compte
w n
de l'élargissement de pic, cette valeur doit être assortie de l'indice GPC, comme suit:
(M /M )
w n GPC
pour qu'on la distingue des valeurs calculées à partir des masses moléculaires mesurées selon des méthodes
absolues.
M est défini comme étant la masse moléculaire au niveau de la tranche où le chromatogramme net est le plus
p
haut.
La répétabilité de ces valeurs moyennes est exprimée soit comme étant les écarts-types d'analyses répétées, soit
en termes de valeurs obtenues dans le passé pour l'appareillage de chromatographie par perméation de gel utilisé.
Il n'y a pas lieu de calculer la viscosité moyenne M à l'aide de l'équation
v
1a
in=
a
HM×
i
∑
i=1
M = . . . (10)
v
in=
H
∑ i
i=1
sauf si l'échantillon et les polymères d'étalonnage ont des structures identiques, ou si le même exposant de Mark-
Houwink α s'applique aux deux dans l'éluant utilisé.
11.3 Calcul des courbes de distribution
La courbe d'intégration des pourcentages en masse S(M) est obtenue par addition des intervalles normalisés. S(M)
doit être considéré comme la somme de toutes les surfaces entre la limite d'évaluation de masse moléculaire faible
et le point d'intersection de la courbe de distribution avec l'abscisse M :
i
ji=
HH+ 2
()jj−1
∑
i=1
SM = . . . (11)
()
i
ji=
H
∑ j
j=1
où j = 1 à l'extrémité de la courbe correspondant à une masse moléculaire
...










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